Summary

Expresión recombinante de celulasa de Cel5A<em> Trichoderma reesei</em> En plantas de tabaco

Published: June 13, 2014
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Summary

Las plantas de tabaco se usaron para producir una celulasa fúngica, TrCel5A, a través de un sistema de expresión transitorio. La expresión podría ser monitoreado usando una proteína de fusión fluorescente, y la actividad de la proteína se caracterizó después de la expresión.

Abstract

Enzimas degradantes de celulosa, celulasas, son objeto de la investigación y los intereses industriales. La preponderancia de estas enzimas en los organismos difíciles-a la cultura, como los hongos de fomento de hifas y bacterias anaerobias, ha acelerado el uso de tecnologías recombinantes en este campo. Métodos de expresión vegetales son un sistema conveniente para la producción a gran escala de enzimas y otras proteínas industrialmente útiles. En la presente memoria, se demuestran los métodos para la expresión transitoria de una endoglucanasa fúngica, Trichoderma reesei Cel5A, en Nicotiana tabacum. El éxito de expresión de la proteína se muestra, supervisado por fluorescencia utilizando una proteína de fusión mCherry-enzima. Además, una serie de pruebas básicas se utilizan para examinar la actividad de T. transitoriamente expresó reesei Cel5A, incluyendo SDS-PAGE, transferencia Western, zimografía, así como la fluorescencia y ensayos de degradación del sustrato con base de tinte. El sistema aquí descrito se puede utilizar para producir una célula activaULASE en un corto período de tiempo, a fin de evaluar el potencial de la producción en plantas a través de sistemas de expresión constitutivos o inducibles.

Introduction

La degradación de la biomasa lignocelulósica y su conversión en combustible líquido ha sido concebido como un método para reducir la dependencia de los combustibles fósiles. Un obstáculo importante en el establecimiento de sistemas de procesamiento de biomasa económicamente viables es en la degradación enzimática de la celulosa y la hemicelulosa 1. Sistemas de expresión de la planta muestran un gran potencial para la producción de enzimas a escala industrial. Los sistemas agrícolas a las plantas de cosecha económica y en el volumen ya están establecidos, como lo han sido durante miles de años. La producción de celulasas en las plantas es deseable debido a factores como la facilidad de autohidrólisis 2, y el potencial para maximizar el uso de niveles más bajos de la enzima mediante el aumento de la digestibilidad de paredes celulares de las plantas 1. Finalmente, los sistemas de la planta permiten la focalización de proteínas recombinantes a áreas específicas de las células vegetales y son capaces de modificar posttranslationally enzimas cuando sea necesario 3.

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Nicotiana tabacum (tabaco) es muy utilizado como organismo modelo para estudios de expresión de proteínas heterólogas en las plantas, debido a sus características de crecimiento y biomasa rápida acumulación 4. La expresión transitoria de las proteínas recombinantes es una técnica que permite la producción de proteínas en períodos de tiempo cortos 5, manteniendo al mismo tiempo la flexibilidad en cuanto a la localización y por lo tanto las modificaciones postraduccionales de las proteínas seleccionadas, es decir, celulasas. Esto permite la producción de la celulasa (s) para el análisis básico, y al mismo tiempo sentar las bases de nuevas estrategias de expresión en plantas. Usando una estrategia de expresión transitoria tal, una endoglucanasa de la familia de glicosil hidrolasa 5, Cel5A, derivado de la fúngica huésped de Trichoderma reesei (Hypocrea jecorina) 6 se produce (en lo sucesivo referido como TrCel5A). TrCel5A es una proteína de 42 kDa que está glicosilado de forma nativa y es altamente activo en HYDroylzing cadenas de celulosa 7.

La técnica de la expresión transitoria descrito aquí se basa en un sistema relativamente utilizado comúnmente, infiltrándose en las hojas de plantas con Agrobacteria lleva el gen de interés en un vector de expresión apropiado. Para permitir un análisis rápido de éxito la expresión in planta, TrCel5A también se puede expresar como una proteína de fusión con mCherry, una proteína fluorescente monomérico derivado originalmente de Discosoma sp. Proteína DsRed 8, con un adicional de seis residuos de histidina (His-tag) fusionado a el C-terminal (TrCel5A-mCherry). La expresión de la proteína de fusión heteróloga, TrCel5A-mCherry, por tanto, se puede controlar en el cultivo de plantas mediante el uso de la luz verde para examinar mCherry dispersión. Si se desea, las secciones delgadas de material de la planta pueden ser examinados bajo luz verde al microscopio para determinar la localización específica de la proteína. Para este trabajo, la señal y la transentarse péptidos fueron incorporados en la construcción, para localizar la exportación de proteínas heterólogas a la retículo endoplásmico 9.

Para analizar la actividad de celulasas expresadas de plantas, incluyendo TrCel5A, una serie de pruebas de actividad de celulasa se puede ejecutar. Después de la extracción de las proteínas solubles totales de la planta, TrCel5A puede purificarse parcialmente usando una técnica de incubación térmica. El tamaño de la proteína se estableció utilizando SDS-PAGE seguido por transferencia Western. La zimografía puede ser utilizado para analizar la actividad contra los sustratos, por ejemplo, de celulosa que ha sido carboxi-metilado (haciendo carboximetilcelulosa: CMC) para la solubilidad 10. Actividad de la celulasa y glucosidasa se puede controlar utilizando el fluoróforo 4-metilumbeliferil (4-MU) asociado con β-D-celobiósido (combinado: 4-MUC). Otro método para evaluar la actividad endoglucanasa implica el análisis de espectrometría de CMC que se ha asociado con un azo-dye (Remazolbrilliant Blue R) 11. Además, la actividad de proteína de ambos endoglucanasas y una gama de celulasas se puede controlar por el uso de una prueba de análisis de azúcares, tales como la hidrazida p-hidroxi benzoico (PAHBAH) de ensayo 12. Estas técnicas se pueden utilizar para elucidar y cuantificar la actividad de la celulasa de interés expresada.

Protocol

1. Crecimiento de tipo salvaje de N. tabacum plantas Para crecer N. tabacum L. cv. Plantas Petit Havana SR1 en suelo, coloque las semillas de tabaco en macetas llenas de tierra apropiadas para macetas normales para la germinación. Después de 2 semanas, la transferencia de las plantas de semillero a macetas individuales. Incubar las plantas en un invernadero con constante de 22 ° C (periodo de oscuridad) o 25 ° C (punto de luz) y 70% de humedad relativa del aire. Proporcionar iluminación…

Representative Results

TrCel5A y TrCel5A-mCherry se expresaron con éxito en plantas de tabaco usando el sistema de expresión transitoria (Figuras 1A y 1B). El examen del patrón de expresión de la proteína de fusión TrCel5A-mCherry reveló hojas sanas (Figura 1C), que mostró que la expresión de proteínas generalizada con luz verde (Figura 1D). La extracción de las proteínas solubles totales se realizó en plantas de tabaco que tenían ho…

Discussion

La expresión recombinante de celulasas es un campo de gran interés, debido al deseo de los sistemas de producción de biocombustibles más eficientes 1. Las plantas ofrecen muchas posibilidades para la producción de celulasas éxito, con características tales como las técnicas de aprovechamiento económico y métodos autohidrólisis son propiedades muy deseables para la producción de biocombustibles a gran escala. Además, el uso de diferentes localizaciones para la producción de proteínas permite, en…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Este trabajo fue apoyado por el BMBF Forschungsinitiative "BioEnergie 2021 – Forschung für die Nutzung von Biomasse" y el Cluster de Excelencia "combustibles hechos a medida a partir de biomasa", que se financian a través de la Iniciativa de Excelencia por los gobiernos federal y estatales alemanas para promover la ciencia y la investigación en las universidades alemanas.

Materials

4-methylumbelliferyl β-D-cellobioside SIGMA-ALDRICH M6018
Acetic acid ROTH 3738
Acetosyringon (concentrated) ROTH 6003
Antibiotic – kanamycin ROTH T832
Antibiotic – rifampicin ROTH 4163
Antibiotic – carbenicillin ROTH 6344
Antibody – rabbit anti His(6) pAb ROCKLAND 600-401-382
Antibody – goat anti rabbit AP, FC pAb DIANOVA 111-055-008
Azo-carboxymethyl cellulose MEGAZYME S-ACMC
β-cyclodextrin SIGMA-ALDRICH C4805
Calcium chloride dihydrate SIGMA-ALDRICH C5080
Carboxymethyl cellulose ROTH 3333.1
Cellulase from Trichoderma reesei ATCC 26921 SIGMA-ALDRICH C2730
Congo red SIGMA-ALDRICH 75768
Coomasie brilliant blue G 250 ROTH 9598.2
D(+)-glucose ROTH 8337
Ethanol ROTH K928
Filter paper – Rotilabo blotting paper ROTH CL67
NBT/BCIP SIGMA-ALDRICH 72091
MES buffer ROTH 4256
Methanol ROTH 8388
Sodium citrate ROTH 3580
Sodium dodecylsulfate SERVA 20765
Sodium hydroxide ROTH 6771
Soil, Einheitserde classic  PATZER GMBH
Spectrometer – Infinite M200 TECAN
Sucrose SIGMA-ALDRICH S-5390
4-Hydroxy benzhydrazide  SIGMA-ALDRICH H9882
Phosphate buffered saline ROTH 1058
UV light source – BLAK RAY UVP
Vibratome – VT1000S Leica

Referências

  1. Garvey, M., Klose, H., Fischer, R., Lambertz, C., Commandeur, U. Cellulases for biomass degradation: comparing recombinant cellulase expression platforms. Trends in Biotechnology. 31, 581-593 (2013).
  2. Klose, H., Günl, M., Usadel, B., Fischer, R., Commandeur, U. Ethanol inducible expression of a mesophilic cellulase avoids adverse effects on plant development. Biotechnology for Biofuels. 6, 53 (2013).
  3. Klose, H., Röder, J., Girfoglio, M., Fischer, R., Commandeur, U. Hyperthermophilic endoglucanase for in planta lignocellulose conversion. Biotechnology for Biofuels. 5, 63 (2012).
  4. Sharma, A. K., Sharma, M. K. Plants as bioreactors: recent developments and emerging opportunities. Biotechnology Advances. 27 (6), 811-832 (2009).
  5. Tremblay, R., Wang, D., Jevnikar, A. M., Ma, S. Tobacco, a highly efficient green bioreactor for production of therapeutic proteins. Biotechnology Advances. 28 (2), 214-221 (2010).
  6. Lee, T. M., Farrow, M. F., Arnold, F. H., Mayo, S. L. A structural study of Hypocrea jecorina Cel5A. Protein Science. 20, 1935-1940 (2011).
  7. Saloheimo, M., et al. EGIII, a new endoglucanase from Trichoderma reesei: the characterization of both gene and enzyme. Gene. 63, 11-21 (1988).
  8. Davidson, M. W., Campbell, R. E. Engineered fluorescent proteins: innovations and applications. Nature Methods. 6, 713-717 (2009).
  9. Pelham, H. R. The retention signal for soluble proteins of the endoplasmic reticulum. Trends in Biochemical Sciences. 15, 483-486 (1990).
  10. Béguin, P. Detection of cellulase activity in polyacrylamide gels using Congo red-stained agar replicas. Analytical Biochemistry. 131, 333-336 (1983).
  11. Jørgensen, H., Mørkeberg, A., Krogh, K. B. R., Olsson, L. Growth and enzyme production by three Penicillium species on monosaccharides. Journal of Biotechnology. 109, 295-299 (2004).
  12. Lever, M. A new reaction for colorimetric determination of carbohydrates. Analytical Biochemistry. 47, 273-279 (1972).
  13. Maclean, J., et al. Optimization of human papillomavirus type 16 (HPV-16) L1 expression in plants: comparison of the suitability of different HPV-16 L1 gene variants and different cell-compartment localization. Journal of General Virology. 88, 1460-1469 (2007).
  14. Munro, S., Pelham, H. R. A C-terminal signal prevents secretion of luminal ER proteins. Cell. 48, 899-907 (1987).
  15. Laemmli, U. K. Cleavage of structural proteins during the assembly of the head of bacteriophage T4. Nature. 227, 680-685 (1970).
  16. Burnette, W. N. “Western Blotting”: Electrophoretic transfer of proteins from sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gels to unmodified nitrocellulose and radiographic detection with antibody and radioiodinated protein A. Analytical Biochemistry. 112, 195-203 (1981).
  17. Towbin, H., Staehelin, T., Gordon, J. Elelctrophoretic transfer of proteins from polyacrylamide gels to nitrocellulose sheets – procedure and some applications. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 76, 4350-4354 (1979).
  18. Blake, M. S., Johnston, K. H., Russell-Jones, G. J., Gotschlich, E. C. A rapid, sensitive method for detection of alkaline phosphatase-conjugated anti-antibody on Western blots. Analytical Biochemistry. 136, 175-179 (1984).
  19. Yamamoto, E., Yamaguchi, S., Nagamune, T. Effect of β-cyclodextrin on the renaturation of enzymes after sodium dodecyl sulfate–polyacrylamide gel electrophoresis. Analytical Biochemistry. 381, 273-275 (2008).
  20. Fischer, R., Vaquero-Martin, C., Sack, M., Drossard, J., Emans, N., Commandeur, U. Towards molecular farming in the future: transient protein expression in plants. Biotechnology and Applied Biochemistry. 30 (2), 113-116 (1999).
  21. Sammond, D. W., et al. Cellulase linkers are optimized based on domain type and function: Insights from sequence analysis, biophysical measurements, and molecular simulation. PLoS One. 7, (2012).
  22. Boonvitthya, N., Bozonnet, S., Burapatana, V., O’Donohue, M. J., Chulalaksananukul, W. Comparison of the heterologous expression of Trichoderma reesei endoglucanase II and cellobiohydrolase II in the yeasts Pichia pastoris and Yarrowia lipolytica. Molecular Biotechnology. 54, 158-169 (2013).
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Citar este artigo
Garvey, M., Klinger, J., Klose, H., Fischer, R., Commandeur, U. Expression of Recombinant Cellulase Cel5A from Trichoderma reesei in Tobacco Plants. J. Vis. Exp. (88), e51711, doi:10.3791/51711 (2014).

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