كشف في وقت واحد ج-فو التنشيط من مواقع مكافأة Mesolimbic والقشري المتوسطي الدوبامين بعد ساذج السكر والدهون الابتلاع في الجرذان
Summary
الهدف من هذه الدراسة هو تحديد شبكات الدماغ وزعت المتعلقة مكافأة من قبل ترسيم تقنية immunohistological موثوقة باستخدام الخلوي تفعيل ج منظمات المزارعين لقياس التغيرات في وقت واحد في مسارات الدوبامين ومواقع المحطة بعد تناول الرواية من الدهون والسكر في الفئران.
Abstract
تستخدم هذه الدراسة الخلوية تفعيل ج مكتب الإحصاء الاتحادي لتقييم الآثار المترتبة على تناول الرواية من الدهون والسكر على الدوبامين في الدماغ (DA) مسارات في الفئران. وتوسط مآخذ من السكريات والدهون والمعالم السياحية التي الفطرية وكذلك تفضيلات المستفادة. الدوبامين في الدماغ، وخاصة المتوسط والحوفي والتوقعات والمتوسط القشرية من المنطقة الجوفية السقيفية (VTA)، وقد تورط في كل من هذه الردود امي وتعلمت. مفهوم شبكات الدماغ وزعت، حيث العديد من المواقع ونظم الارسال / الببتيد تتفاعل، وقد اقترح التوسط تناول الطعام مستساغا، ولكن هناك أدلة محدودة مما يدل تجريبيا مثل هذه الأعمال. وهكذا، وتناول السكر يتسبب DA إطلاق والزيادات ج-فو-لمثل مناعية (FLI) من مناطق الإسقاط VTA DA الفردية بما في ذلك النواة المتكئة (بريدا)، اللوزة (AMY) وسطي قشرة الفص الجبهي (mPFC) وكذلك المخطط الظهرية. وعلاوة على ذلك، الإدارة المركزية للانتقائية مستقبلات DA في هذه الموقعق تفاضلي لحد من اكتساب والتعبير عن تفضيلات نكهة مكيفة التي تسببها السكريات أو الدهون. نهج واحد التي يمكن من خلالها تحديد ما إذا كانت هذه المواقع تفاعلت كشبكة الدماغ توزيعها ردا على السكر أو الدهون سيكون لمتزامنة تقييم ما إذا كانت VTA والمناطق الرئيسية في mesotelencephalic DA الإسقاط (الحوف وinfralimbic mPFC، الأساسية وقذيفة من حلف شمال الأطلسي، basolateral ووسط-القشرة-وسطي AMY)، فضلا عن أن المخطط الظهري العرض تنسيق وتفعيل FLI في وقت واحد بعد عن طريق الفم، وتناول غير المشروط من زيت الذرة (3.5٪)، والجلوكوز (8٪) وسكر الفواكه (8٪) والسكرين (0.2 ٪) الحلول. هذا النهج هو خطوة أولى ناجحة في تحديد جدوى استخدام الخلوي تفعيل ج مكتب الإحصاء الاتحادي في وقت واحد عبر مواقع الدماغ ذات الصلة لدراسة التعلم ذات الصلة مكافأة في تناول الطعام مستساغا في القوارض.
Introduction
وقد تورط الدوبامين في الدماغ (DA) في استجابات المركزية لتناول السكريات مستساغة من خلال المقترح على أساس المتعة 1،2 و 3 و عادة على أساس 4،5 آليات العمل المتعلقة الجهد. مسار DA الأساسي المتورطين في هذه الآثار ينشأ في منطقة السقيفية البطنية (VTA)، ومشاريع لالمتكئة (بريدا) الأساسية وشركة شل، واللوزة basolateral والقشرة المركزية-وسطي (AMY)، ونواة والحوف وسطي infralimbic قشرة الفص الجبهي (mPFC) (انظر ملاحظات 6،7). وقد تورط في VTA في تناول السكروز 8،9، ويلاحظ إطلاق DA تناول السكر التالية في NAC 10-15، AMY 16،17 وmPFC 18-20. يحفز الدهون أيضا DA NAC الافراج عن 21، ومنطقة الإسقاط DA-غنية أخرى إلى المخطط الظهري (المذنبة-putamen) ارتبط أيضا مع DA-بوساطة تغذية 22،23. اقترح كيلي 24-27 أن هذه المشاريع متعددةشكلت مناطق أيون من هذا النظام بوساطة DA-شبكة الدماغ توزيع متكاملة وتفاعلية من خلال الترابط واسعة وحميمة 28-34.
بالإضافة إلى قدرة DA D1 و D2 مستقبلات للحد من تناول السكريات والدهون 35-37 38-40، كما تورطت DA الإشارات في التوسط في قدرة السكريات والدهون لإنتاج تفضيلات نكهة مكيفة (CFP) 41- 46. إبر دقيقة جدا من مستقبلات DA D1 في حلف شمال الأطلسي، AMY أو mPFC 47-49 القضاء على اكتساب CFP التي تسببها الجلوكوز المعدي. في حين إبر دقيقة جدا إما DA D1 أو D2 مستقبلات في mPFC يزيل اكتساب الفركتوز CFP 50، يتم حظر اقتناء والتعبير من الفركتوز CFP تفاضلي قبل الخصوم DA في حلف شمال الأطلسي وAMY 51،52.
وقد استخدمت هذه التقنية 53،54-ج منظمات المزارعين للتحقيق activatio العصبيالناجم ن قبل تناول قبولا وتفعيل العصبي. مصطلح "تفعيل ج فو" سوف تستخدم في جميع أنحاء مخطوطة، ويعرف من الناحية التشغيلية من زيادة النسخ من ج-فو خلال الاستقطاب الخلايا العصبية. زيادة تناول السكروز مكتب الإحصاء الاتحادي مثل مناعية (FLI) في النواة AMY المركزية وVTA فضلا عن قذيفة، ولكن ليس الأساسية، من NAC 55-57. في حين أن تناول السكروز في الجرذان الرضاعة صورية زيادة كبيرة FLI في AMY وحلف شمال الأطلسي، ولكن ليس VTA 58، داخل المعدة السكروز أو الغلوكوز ضخ زيادة كبيرة FLI في حلف شمال الأطلسي ونوى المركزية وbasolateral من AMY 59،60. بالإضافة المتكررة من السكروز إلى الوصول تشاو المقرر زادت FLI في mPFC فضلا عن قذيفة NAC والأساسية 61. وكشف السكروز تركيز بالاستعداد النموذج أن أكبر الزيادات FLI وقعت في AMY basolateral وحلف شمال الأطلسي، ولكن ليس VTA 62. بعد تكييف، انقراض ريوا الطبيعي ذات الصلة السكرزادت السلوكيات الثالثة FLI في AMY basolateral وNAC 63. وعلاوة على ذلك، أدى الاقتران توافر السكر لهجة في لهجة زيادة في وقت لاحق مستويات FLI في AMY basolateral 64. كما زادت كمية عالية من الدهون FLI في مواقع NAC وmPFC 65-67.
معظم الدراسات المذكورة سابقا فحص السكر وآثار الدهون على تفعيل ج منظمات المزارعين في مواقع واحدة التي لا توفر المعلومات حول تحديد شبكات الدماغ وزعت ذات الصلة مكافأة 24-27. وعلاوة على ذلك، فإن العديد من الدراسات أيضا لم تحدد المساهمات النسبية للمناطق الفرعية لحلف شمال الأطلسي (الأساسية وقذيفة)، AMY (basolateral والقشرة-وسطي المركزي) وmPFC (الحوف وinfralimbic) التي يمكن أن يتم دراستها من قبل ميزة ممتازة المكاني، قرار وحيد الخلية في رسم الخرائط ج-فو 68. مختبرنا 69 استخدمت مؤخرا ج فو تفعيل والتعديلات قياسها في وقت واحد في مسار VTA DA والمؤيدمناطق jection (NAC، AMY وmPFC) بعد تناول الرواية من الدهون والسكريات في الفئران. تصف الدراسة الحالية الخطوات الإجرائية والمنهجية لتحليل في وقت واحد ما إذا كان التعرض الحاد لستة حلول مختلفة (زيت الذرة، الجلوكوز، الفركتوز، والسكرين والمياه والتحكم مستحلب الدهون) من شأنها تفعيل تفاضلي FLI في المناطق الفرعية لحلف شمال الأطلسي، AMY، mPFC فضلا عن المخطط الظهرية. هذا الكشف في وقت واحد من الاختلافات يسمح تأكيد آثار كبيرة على FLI في كل موقع، وتحديد ما إذا كانت التغييرات في موقع واحد معين يرتبط مع التغييرات في المواقع ذات الصلة، وبالتالي توفير الدعم لشبكة الدماغ وزعت 24-27. هذه الإجراءات اختبار ما إذا كان VTA، والحوف وinfralimbic mPFC، جوهر وقذيفة من حلف شمال الأطلسي، وAMY basolateral والقشرة المركزية-وسطي)، وكذلك المخطط الظهري أن العرض تنسيق وتفعيل FLI في وقت واحد بعد عن طريق الفم، وتناول الغير مشروط من الجلوكوز (8٪) وسكر الفواكه (8٪) وزيت الذرة (3.5٪) والحلول السكرين (0.2٪).
Protocol
Representative Results
Discussion
وكان الهدف من هذه الدراسة هو تحديد ما إذا كان المصدر (VTA) والدماغ الأمامي أهداف الإسقاط (NAC، AMY، mPFC) من الخلايا العصبية ذات الصلة مكافأة DA تم تفعيلها في وقت واحد بعد تناول الرواية من الدهون والسكر في الفئران باستخدام الخلايا تقنية ج فو . الدراسة الحالية هي عبارة عن وصف مف…
Declarações
The authors have nothing to disclose.
Acknowledgements
بفضل ديانا إيكاثا-Culaki، كريستال سامبسون وTheologia Karagiorgis على عملهم الشاق في هذا المشروع.
Materials
| Equipment | |||
| Sprague-Dawley rats | Charles River Laboratories | CD-1 | |
| Wire Mesh Cages | Lab Products, Seaford, DE | 30-Cage rack | |
| Rat Chow | PMI Nutrition International | 5001 | |
| Taut Metal Spring | Lab Products, Seaford, DE | n/a | |
| Rat Weighing Scale | Fisher Scientific Company | n/a | |
| Nalgene Centrifuge Tubes | Lab Products, Seaford, DE | 10-0501 | |
| Rubber Stopper | Lab Products, Seaford, DE | n/a | |
| Metal Sippers | Lab Products, Seaford, DE | n/a | |
| Saccharin | Sigma Chemical Co | 82385-42-0 | |
| Kool-Aid, Cherry | Kool-Aid | Commerical | |
| Kool-Aid, Grape | Kool-Aid | Commercial | |
| Fructose | Sigma Chemical Co | F0127 | |
| Glucose | Sigma Chemical Co | G8270 | |
| Corn Oil | Mazzola | Commerical | |
| Xanthan Gum | Sigma Chemical Co | 11138-66-2 | |
| Sliding Microtome | Microm International | n/a | |
| Neurolucida Camera | MBF Bioscience | Software application | |
| Gelatin-coated Slides | Fisher Scientific Company | 12-550-343 | |
| Cover glass | Fisher Scientific Company | 12-545-M | |
| Golden Nylon Brushes | Loew-Cornell | 2037 | |
| Natural Hair Sable | Loew-Cornell | 2022 | |
| 24 Well Plates | Fisher Scientific | 3527 | |
| 6 Well Plates | Fisher Scientific | 3506 | |
| 1L Pyrex bottles | Fisher Scientific | 1395-1L | |
| Tissue insert (tissue strainer) | Fisher Scientific | 7200214 | |
| Eagle pipettes | World Precision Instruments | E10 for 1-10ul | |
| Eagle pipettes | World Precision Instruments | E100 for 20-100ul | |
| Eagle pipettes | World Precision Instruments | E200 for 50-200ul | |
| Eagle pipettes | World Precision Instruments | E1000 for 100-1000ul | |
| Eagle pipettes | World Precision Instruments | E5000 for 1000-5000ul | |
| Universal Tips .1-10ul | World Precision Instruments | 500192 | |
| Universal Tips 5-200ul | World Precision Instruments | 500194 | |
| Universal Tips 500-5000ul | World Precision Instruments | 500198 | |
| Blade Vibroslice 100 | World Precision Instruments | BLADE | |
| DPX Mounting Medium | Electron Microscopy | 13510 | |
| 15mL centrifuge tubes | Biologix Research Co. | 10-0501 | |
| Slide Boxes | Biologix Research Co. | 41-6100 | |
| Orbital Shaker | Madell Corporation | ZD-9556 | |
| weigh boats | Fisher Scientific | 02-202-100 | |
| 5mL disposable pipettes | Fisher Scientific | 13-711-5AM | |
| Stereo Investigator Software | Micro Bright Field | Software application | |
| Name | Company | Catalog number | Comments |
| Reagents | |||
| Paraformaldehyde Granular | Fisher Scientific | 19210 | |
| NaCl | Fisher Scientific | S271-1 | |
| Sodium Phophate Monobasic | Fisher Scientific | S468-500 | |
| Sodium Phosphate Diphasic | Fisher Scientific | BP332-500 | |
| Hydrogen Peroxide | Fisher Scientific | H324-500 | |
| SafeClear II | Fisher Scientific | 23-044-192 | |
| Methanol | Fisher Scientific | A412-1 | |
| Normal Goat Serum | Vector | S-1000 | |
| Biotinylated Anti-Rabbit IgG (H+L) | Vector | BA-1000 | |
| ABC Kit Peroxidase Standard | Vector | PK-4000 | |
| Anti-cFos (Ab-5) Rabbit | EMD chem/Cal Biochem | PC38 | |
| Triton X 100 | SigmaAldrich | X-100 | |
| 3,3' diaminobenzidine tetra hydrochloride | SigmaAldrich | D5905 | |
| Sodium Hydroxide | SigmaAldrich | 5881 | |
| Primary TH anti body | EMD Millipore | AB152 | |
| Euthosol | Virbac AH | ||
Referências
- Koob, G. F. Neural mechanisms of drug reinforcement. Ann. N.Y. Acad. Sci. 654, 171-191 (1992).
- Wise, R. A. Role of brain dopamine in food reward and reinforcement. Philos. Trans. R. Soc. Lond. B. Biol. Sci. 361, 1149-1158 (2006).
- Salamone, J. D., & Correa, M. The mysterious motivational functions of mesolimbic dopamine. Neuron., 76, 470-485 (2012).
- Horvitz, J. C., Choi, W. Y., Morvan, C., Eyny, Y., & Balsam, P.D. A "good parent" function of dopamine: transient modulation of learning and performance during early stages of training. Ann. N.Y. Acad. Sci. 1104, 270-288 (2007).
- Wickens, J. R., Horvitz, J. C., Costa, R. M., & Killcross, S. Dopaminergic mechanisms in actions and habits. J. Neurosci. 27, 8181-8183 (2007).
- Bjorklund, A., & Dunnett, S. B. Dopamine neuron systems in the brain: an update. Trends Neurosci. 30, 194-202 (2007).
- Swanson, L. W. The projections of the ventral tegmental area and adjacent regions: a combined fluorescent retrograde tracer and immunofluorescence study in the rat. Brain Res. Bull. 9, 321-353 (1982).
- Cacciapaglia, F., Wrightman, R. M., & Careli, R. M. Rapid dopamine signaling differentially modulates distinct microcircuits within the nucleus accumbens during sucrose-directed behavior. J. Neurosci. 31, 13860-13869 (2011).
- Martinez-Hernandez, J., Lanuza, E., & Martinez-Garcia, F. Selective dopaminergic lesions of the ventral tegmental area impair preference for sucrose but not for male sex pheromones in female mice. Eur. J. Neurosci. 24, 885-893 (2006).
- Bassareo, V., & Di Chiara, G. Differential influence of associative and nonassociative learning mechanisms on the responsiveness of prefrontal and accumbal dopamine transmission to food stimuli in rats fed ad libitum. J. Neurosci. 17, 851-861 (1997).
- Bassareo, V., & Di Chiara, G. Differential responsiveness of dopamine transmission to food-stimuli in nucleus accumbens shell/core compartments. Neurosci. 89, 637-641, (1999).
- Cheng, J, & Feenstra, M.G. Individual differences in dopamine efflux in nucleus accumbens shell and core during instrumental conditioning. Learn. Mem. 13, 168-177 (2006).
- Genn, R.F., Ahn, S., & Phillips, A.G. Attenuated dopamine efflux in the rat nucleus accumbens during successive negative contrast. Behav. Neurosci. 118, 869-873 (2004).
- Hajnal, A., & Norgren, R. Accumbens dopamine mechanisms in sucrose intake. Brain Res. 904, 76-84 (2001).
- Hajnal, A., Smith, G.P., & Norgren, R. Oral sucrose stimulation increases accumbens dopamine in the rat. Am. J. Physiol. 286 R31-R37 (2003).
- Bassareo, V., & Di Chiara, G. Modulation of feeding-induced activation of mesolimbic dopamine transmission by appetitive stimuli and its relation to motivational state. Eur. J. Neurosci. 11, 4389-4397 (1999).
- Hajnal, A., & Lenard, L. Feeding-related dopamine in the amygdala of freely moving rats. Neuroreport. 8, 2817-2820 (1997).
- Bassareo, V., De Luca, M.A., & Di Chiara, G. Differential expression of motivational stimulus properties by dopamine in nucleus accumbens shell versus core and prefrontal cortex. J. Neurosci. 22, 4709-4719 (2002).
- Feenstra, M., & Botterblom, M. Rapid sampling of extracellular dopamine in the rat prefrontal cortex during food consumption, handling, and exposure to novelty. Brain Res. 742, 17-24 (1996).
- Hernandez, L., & Hoebel, B.G. Feeding can enhance dopamine turnover in the prefrontal cortex. Brain Res. Bull. 25, 975-979 (1990).
- Liang, N. C., Hajnal, A., & Norgren, R. Sham feeding corn oil increases accumbens dopamine in the rat. Am. J. Physiol. Regul. Integr. Comp. Physiol. 291, R1236-1239 (2006).
- Dunnett, S. B., & Iversen, S. D. Regulatory impairments following selective kainic acid lesions of the neostriatum. Behav. Brain Res. 1, 497-506 (1980).
- Salamone, J. D., Zigmond, M. J., & Stricker, E. M. Characterization of the impaired feeding behavior in rats given haloperidol or dopamine-depleting brain lesions. Neurosci. 39, 17-24 (1990).
- Kelley, A. E. Ventral striatal control of appetitive motivation: role in ingestive behavior and reward-related learning. Neurosci. Biobehav. Rev. 27, 765-776 (2004).
- Kelley, A.E. Memory and addiction: shared neural circuitry and molecular mechanisms. Neuron. 44, 161-179 (2004).
- Kelley, A.E., Baldo, B.A., & Pratt, W.E. A proposed hypothalamic-thalamic-striatal axis for the integration of energy balance, arousal and food reward. J. Comp. Neurol. 493, 72-85 (2005).
- Kelley, A. E., Baldo, B. A., Pratt, W. E., & Will, M. J. Corticostriatal-hypothalamic circuitry and food motivation: integration of energy, action and reward. Physiol. Behav. 86, 773-795 (2005).
- Berendse, H.W., Galis-de-Graaf, Y., & Groenewegen, H.J. Topographical organization and relationship with ventral striatal compartments of prefrontal corticostriatal projections in the rat. J. Comp. Neurol. 316, 314-347 (1992).
- Brog, J.S., Salyapongse, A., Deutch, A.Y., & Zahm, D.S. The patterns of afferent innervation of the core and shell in the "accumbens" part of rat ventral striatum: immunohistochemical detection of retrogradely transported fluoro-gold. J. Comp. Neurol. 338, 255-278 (1993).
- McDonald, A.J. Organization of amygdaloid projections to the prefrontal cortex and associated stritum in the rat. Neurosci. 44, 1-14 (1991).
- McGeorge, A.J., & Faull, R.L. The organization of the projection from the cerebral cortex to the striatum in the rat. Neurosci. 29, 503-537 (1989).
- Sesack, S.R., Deutch, A.Y., Roth, R.H., & Bunney, B.S. Topographical organization of the efferent projections of the medial prefrontal cortex in the rat: an anterograde tract-tracing study with Phaseolus vulgaris leucoagglutinin. J. Comp. Neurol. 290, 213-242 (1989).
- Wright, C.I., Beijer, A.V., & Groenewegen, H.J. Basal amygdaloid complex afferents to the rat nucleus accumbens are compartmentally organized. J. Neurosci. 16, 1877-1893 (1996).
- Wright, C.I., & Groenewegen, H.J. Patterns of convergence and segregation in the medial nucleus accumbens of the rat: relationships of prefrontal cortical, midline thalamic and basal amygdaloid afferents. J. Comp. Neurol. 361, 383-403 (1995).
- Geary, N., & Smith, G.P. Pimozide decreases the positive reinforcing effect of sham fed sucrose in the rat. Pharmacol. Biochem. Behav. 22, 787-790 (1985).
- Muscat, R., & Willner, P. Effects of selective dopamine receptor antagonists on sucrose consumption and preference. Psychopharmacol. 99, 98-102 (1989).
- Schneider, L.H., Gibbs, J., & Smith, G.P. D-2 selective receptor antagonists suppress sucrose sham feeding in the rat. Brain Res. Bull. 17, 605-611 (1986).
- Baker, R.W., Osman, J., & Bodnar, R.J. Differential actions of dopamine receptor antagonism in rats upon food intake elicited by mercaptoacetate or exposure to a palatable high-fat diet. Pharmacol. Biochem. Behav. 69, 201-208 (2001).
- Rao, R.E., Wojnicki, F.H., Coupland, J., Ghosh, S., & Corwin, R.L. Baclofen, raclopride and naltrexone differentially reduce solid fat emulsion intake under limited access conditions. Pharmacol. Biochem. Behav. 89, 581-590 (2008).
- Weatherford, S.C., Smith, G.P., & Melville, L.D. D-1 and D-2 receptor antagonists decrease corn oil sham feeding in rats. Physiol. Behav. 44, 569-572 (1988).
- Azzara, A. V., Bodnar, R. J., Delamater, A. R., & Sclafani, A. D1 but not D2 dopamine receptor antagonism blocks the acquisition of a flavor preference conditioned by intragastric carbohydrate infusions. Pharmacol. Biochem. Behav. 68, 709-720 (2001).
- Baker, R. M., Shah, M. J., Sclafani, A., & Bodnar, R. J. Dopamine D1 and D2 antagonists reduce the acquisition and expression of flavor-preferences conditioned by fructose in rats. Pharmacol. Biochem. Behav. 75, 55-65 (2003).
- Dela Cruz, J.A., Coke, T., Icaza-Cukali, D., Khalifa, N., & Bodnar, R. J. Roles of NMDA and dopamine D1 and D2 receptors in the acquisition and expression of flavor preferences conditioned by oral glucose in rats. Neurobiol. Learn. Mem. 114, 223-230 (2014).
- Dela Cruz, J. A, et al. Roles of dopamine D1 and D2 receptors in the acquisition and expression of fat-conditioned flavor preferences in rats. Neurobiol. Learn. Mem. 97, 332-337 (2012).
- Yu, W.Z., Silva, R.M., Sclafani, A., Delamater, A.R., & Bodnar, R.J. Pharmacology of flavor preference conditioning in sham-feeding rats: effects of dopamine receptor antagonists. Pharmacol. Biochem. Behav. 65, 635-647 (2000).
- Yu, W. Z., Silva, R. M., Sclafani, A., Delamater, A. R., & Bodnar, R. J. Role of D(1) and D(2) dopamine receptors in the acquisition and expression of flavor-preference conditioning in sham-feeding rats. Pharmacol. Biochem. Behav. 67, 537-544 (2000).
- Touzani, K., Bodnar, R. J, & Sclafani, A. Activation of dopamine D1-like receptors in nucleus accumbens is critical for the acquisition, but not the expression, of nutrient-conditioned flavor preferences in rats. Eur. J. Neurosci. 27, 1525-1533 (2008).
- Touzani, K., Bodnar, R. J., & Sclafani, A. Dopamine D1-like receptor antagonism in amygdala impairs the acquisition of glucose-conditioned flavor preference in rats. Eur. J. Neurosci. 30, 289-298 (2009).
- Touzani, K., Bodnar, R. J., & Sclafani, A. Acquisition of glucose-conditioned flavor preference requires the activation of dopamine D1-like receptors within the medial prefrontal cortex in rats. Neurobiol. Learn. Mem. 94, 214-219 (2010).
- Malkusz, D. C., et al. Dopamine signaling in the medial prefrontal cortex and amygdala is required for the acquisition of fructose-conditioned flavor preferences in rats. Behav. Brain Res. 233, 500-507 (2012).
- Bernal, S. Y., et al. Role of dopamine D1 and D2 receptors in the nucleus accumbens shell on the acquisition and expression of fructose-conditioned flavor-flavor preferences in rats. Behav. Brain Res. 190, 59-66 (2008).
- Bernal, S. Y.,et al. Role of amygdala dopamine D1 and D2 receptors in the acquisition and expression of fructose-conditioned flavor preferences in rats. Behav. Brain Res. 205, 183-190 (2009).
- Dragunow, M., & Faull, R. The use of c-fos as a metabolic marker in neuronal pathway tracing. J. Neurosci. Methods. 29, 261-265 (1989).
- VanElzakker, M., Fevurly, R. D., Breindel, T., & Spencer, R. L. Environmental novelty is associated with a selective increase in Fos expression in the output elements of the hippocampal formation and the perirhinal cortex. Learn. Mem. 15, 899-908 (2008).
- Norgren, R., Hajnal, A., & Mungarndee, S. S. Gustatory reward and the nucleus accumbens. Physiol. Behav. 89, 531-535 (2006).
- Park, T. H., & Carr, K. D. Neuroanatomical patterns of fos-like immunoreactivity induced by a palatable meal and meal-paired environment in saline- and naltrexone-treated rats. Brain Res. 805, 169-180 (1998).
- Zhao, X. L., Yan, J. Q., Chen, K., Yang, X. J., Li, J. R., & Zhang, Y. Glutaminergic neurons expressing c-Fos in the brainstem and amygdala participate in signal transmission and integration of sweet taste. Nan.Fang Yi.Ke.Da.Xue.Xue.Bao. 31,1138-1142 (2011).
- Mungarndee, S. S., Lundy, R. F., Jr., & Norgren, R. Expression of Fos during sham sucrose intake in rats with central gustatory lesions. Am. J. Physiol. Regul. Integr. Comp. Physiol. 295, R751-R763 (2008).
- Otsubo, H., Kondoh, T., Shibata, M., Torii, K., & Ueta, Y. Induction of Fos expression in the rat forebrain after intragastric administration of monosodium L-glutamate, glucose and NaCl. Neurosci. 196, 97-103 (2011).
- Yamamoto, T., Sako, N., Sakai, N., & Iwafune, A. Gustatory and visceral inputs to the amygdala of the rat: conditioned taste aversion and induction of c-fos-like immunoreactivity. Neurosci. Lett. 226, 127-130 (1997).
- Mitra, A., Lenglos, C., Martin, J., Mbende, N., Gagne, A., & Timofeeva, E. Sucrose modifies c-fos mRNA expression in the brain of rats maintained on feeding schedules. Neurosci. 192, 459-474 (2011).
- Pecoraro, N., & Dallman, M. F. c-Fos after incentive shifts: expectancy, incredulity, and recovery. Behav. Neurosci. 119, 366-387 (2005).
- Hamlin, A. S., Blatchford, K. E., & McNally, G. P. Renewal of an extinguished instrumental response: Neural correlates and the role of D1 dopamine receptors. Neurosci. 143,.25-38 (2006).
- Kerfoot, E. C., Agarwal, I., Lee, H. J., & Holland, P. C. Control of appetitive and aversive taste-reactivity responses by an auditory conditioned stimulus in a devaluation task: A FOS and behavioral analysis. Learn. Mem. 14, 581-589 (2007).
- Zhang, M., & Kelley, A.E. Enhanced intake of high-fat food following striatal mu-opioid stimulation: microinjection mapping and fos expression. Neurosci. 99, 267-277 (2000).
- Teegarden, S.L., Scott, A.N., & Bale, T.L. Early life exposure to a high fat diet promotes long-term changes in dietary preferences and central reward signaling. Neurosci. 162, 924-932 (2009).
- Del Rio, D., et al. Involvement of the dorsomedial prefrontal cortex in high-fat food conditioning in adolescent mice. Behav. Brain Res. 283, 227-232 (2015).
- Knapska, E., Radwanska, K., Werka, T., & Kaczmarek, L. Functional internal complexity of amygdala: focus on gene activity mapping after behavioral training and drugs of abuse. Physiol. Rev. 87, 1113-1173 (2007).
- Dela Cruz, J.A.D.,et al. c-Fos induction in mesotelencephalic dopamine pathway projection targets and dorsal striatum following oral intake of sugars and fats in rats. Brain Res. Bull. 111, 9-19 (2015).
- Paxinos, G., & Watson, C. The rat brain in stereotaxic coordinates. Elsevier (2006).
- Ranaldi, R., et al. The effects of VTA NMDA receptor antagonism on reward-related learning and associated c-fos expression in forebrain. Behav. Brain Res. 216, 424-432 (2011).
