Summary

免疫応答の生体内多光子イメージングのためのマウスの耳の皮膚に虚血再灌流傷害を誘導します

Published: December 22, 2016
doi:

Summary

このプロトコルは、磁石クランプを使用して、マウスの耳の皮膚上の虚血再灌流(IR)モデルの誘導を説明します。カスタム構築された生体イメージングモデルを使用して、我々は、in vivo炎症反応後の再灌流留学します。この技術の開発の背後にある理論的根拠は、白血球が皮膚のIR傷害に応答する方法の理解を拡張することです。

Abstract

Ischemia-reperfusion injury (IRI) occurs when there is transient hypoxia due to the obstruction of blood flow (ischemia) followed by a subsequent re-oxygenation of the tissues (reperfusion). In the skin, ischemia-reperfusion (IR) is the main contributing factor to the pathophysiology of pressure ulcers. While the cascade of events leading up to the inflammatory response has been well studied, the spatial and temporal responses of the different subsets of immune cells to an IR injury are not well understood. Existing models of IR using the clamping technique on the skin flank are highly invasive and unsuitable for studying immune responses to injury, while similar non-invasive magnet clamping studies in the skin flank are less-than-ideal for intravital imaging studies. In this protocol, we describe a robust model of non-invasive IR developed on mouse ear skin, where we aim to visualize in real-time the cellular response of immune cells after reperfusion via multiphoton intravital imaging (MP-IVM).

Introduction

虚血再灌流障害(IRI)一過性低酸素症が原因で組織(再灌流)のその後の再酸素化に続いて血流(虚血)の障害物に存在する場合に発生します。皮膚では、虚血再灌流(IR)は、長時間の安静が負傷で長期入院患者を素因褥瘡の病態生理に貢献する要因の一つであると考えられています。これらの患者では、皮膚およびその下の筋肉の両方が絶えず、放置すれば、壊死1になることがあり、ローカライズ負傷で、その結果、骨隆起の領域の上に加わる重量圧力にさらされています。

IRIに関係する被害が2つある。虚血の間、血管の閉塞は、組織への酸素供給の大幅な低下をもたらします。これは、細胞の代謝に関与するATPアーゼを不活性化ATPおよびpHの低下をもたらします。ターンでは、細胞内カルシウムレベルは、スパイク、と強調またはcを損傷しましたellsは、アポトーシスまたは壊死2を受けます。細胞内の内容や損傷関連分子パターン(DAMP)のリリースは、HMGB1のように、炎症反応3に貢献しています。第二の侮辱は、再灌流の間に発生します。酸素およびpHレベルは、再灌流時に復元されているが、これは、細胞内の脂質、DNA、及びタンパク質の酸化をもたらす、反応性酸素種(ROS)の生成をもたらします。その結果、前炎症性メディエーターは、炎症部位2への免疫細胞の動員を伴う二次的炎症反応をオフ設定する、活性化されます。炎症反応に至る生化学的事象のカスケードが十分に説明されたが、免疫細胞の活動の空間的及び時間的調節は、十分に理解されていません。

ここでは、簡単なマグネットクランプを使用して、マウスの耳の皮膚に堅牢なIRモデルについて説明します。我々は、多光子生体イメージング(MP-IVM)と相まって再灌流が行われた後に発生するin vivoでの炎症反応を研究するためのモデルを確立しました。この技術の開発と利用の背後にある論理的根拠は、間質および浸潤細胞の両方をリアルタイムでIRへの対応方法を理解しようとすることです。

彼らはそれらをより少なくより理想的な免疫学的研究4のための作り、皮膚の側腹部に鋼板の外科的移植を必要とする皮膚の脇腹にクランプ技術を用いて、IRの既存のモデルは、非常に侵襲的です。同様の非侵襲的なクランプ技術は、マウス皮膚フランク5,6に記載されています。それは、呼吸による動きを回避し、7,8を画像化する時の安定性を提供していますようにしかし、この方法では生体イメージングコンポーネントを組み込むのは、代わりに、対象となるIRサイトとして耳の皮膚を選びました。また、間質にまたがる白血球サブセットはあるが、耳の皮膚と皮膚フランク間で同一であります数字と割合はわずか9を異なる場合があります。したがって、耳の皮膚は、理想的な撮像部位を表します。

また、これらのIRIモデルから取り出され、ほとんどのデータは、巨視的評価(潰瘍のグレーディング)とエンドポイントの炎症の指標10の顕微鏡分析に限定されています。このモデルを用いて、蛍光レポーターマウスの皮膚における再灌流後の好中球の細胞応答のリアルタイム可視化が有効になっています。以前に公開された生体内耳イメージングモデルは、追加の修飾( 図1、図2)を用いて8に使用されます。

Protocol

生きた動物を扱うすべての実験は、関連するすべての動物の使用およびケアガイドラインと規則に基づいて行われました。 蛍光レポーターマウスの1選択 6〜12週齢のLysM-EGFP 11マウス(男性または女性のいずれかについて問わない)を使用します。 注:様々な細胞特異的蛍光レポーターマウスの使用は、in vivoで異なる免疫細胞の可視化を可能に?…

Representative Results

図1に示すように、このプロトコルは、特注の耳の皮膚画像化プラットフォームを使用します。このプラットフォームのいくつかの特徴は、特に、生理学的設定を維持しながら、撮像を容易にするように設計されています。加熱された真鍮製のプラットフォーム上で耳を配置すると、35℃の生理的温度で耳を維持するが、それはまた、呼吸のために避けら?…

Discussion

意義

IRは、皮膚褥瘡の主要な原因の一つです。 (下層の皮下組織と筋肉と比較して)褥瘡の初期段階(IおよびII)は、ヒトの皮膚の状態を記述する。しかしながら、免疫学的病因の理解がまだ不足しています。ここでは、このギャップに対処するために、マウスの耳の皮膚上で簡単かつ堅牢なIRモデルを提示します。我々は2つの磁石と、その後磁石の除去(再灌流)の後?…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

We thank Thomas Graf for providing us with the LysM-eGFP mice.

Materials

Mice strains
Lysozyme-GFP C57BL/6 Thomas Graf, Center for Genomic Regulation
C57BL/6-C2J Jackson Laboratories 000058 To be crossed with Lysozyme-GFP to generate albino Lysozyme-GFP for skin imaging
Name Company Catalog Number Comments
Reagents
PBS
Viaflex 0.9% (wt/vol) saline Baxter Healthcare F8B1323
Ketamine (100 mg ml−1 ketamine hydrochloride Parnell Ketamine is a controlled drug and all relevant local regulations should be followed
Ilium Xylazil-20 (20 mg ml−1 xylazine hydrochloride) Troy Laboratories Xylazil-20 is a controlled drug and all relevant local regulations should be followed.
Evans blue (10 mg ml−1 in PBS or saline) Sigma-Aldrich 46160
Ultrapurified water
Name Company Catalog Number Comments
Equipment
Insulin syringe with needle BD 328838
Transfer pipettes Biologix Research Company 30-0135
3M paper masking tape 3M 2214
Deckglaser microscope cover glass (22 mm × 32 mm) Paul Marienfeld 101112
Curved splinter forceps Aesculap, B. Braun Melsungen BD312R
Veet hair removal cream Reckitt Benckiser
Medical cotton-tipped applicators Puritan Medical Products Company 806-WC
C-fold towels Kimberly-Clark 20311
Kimwipes delicate task wipes Kimtech Science 34155
Gold-plated, N42-grade neodymium magnets, 12mm in diameter and 2mm thick  first4magnets F656S
Plastic guide, 10cm by 1.5cm (polyvinyl chloride material) fold in half lengthwise, bind with masking tape and slot magnet in
High vacuum grease Dow Corning
Name Company Catalog Number Comments
Microscope
TriM Scope II single-beam two-photon microscope LaVision BioTec
Tunable (680–1,080 nm) Coherent Chameleon Ultra II One Box Ti:sapphire laser (≥3.3 W at 800 nm; pulse length of 140 fs, 80 MHz repetition rate) Coherent
Water-dipping objectives (20×, NA = 1.0) Olympus XLUMPLFLN20xW
Name Company Catalog Number Comments
Miscroscope filter and mirror sets (for imaging GFP, SHG, Evans Blue)
495 long-pass Chroma T495LPXR
560 lomg-pass Chroma T560LPXR
475/42 band-pass Semrock FF01-475/42-25
525/50 band-pass Chroma ET525/50m
655/40 band-pass Chroma NC028647
Name Company Catalog Number Comments
Skin-imaging stage platform (refer to diagram for assembly)
A metal base plate (126 mm × 126 mm × 1 mm)
A brass platform for the ear (79 mm × 19 mm; 1 mm thickness at side, 0.5 mm thickness in the middle; Fig. 1) with slit (1.7 mm × 1 mm; 1.5 mm away from long edge)
Two plastic blocks (10 mm in height)—for heat insulation
Curved holder, for positioning the control thermistor on the ear platform
Interface cable CC-28 with DIN connector and thermistors, one for the temperature control and the other for the temperature monitor (Warner Instruments (Harvard Apparatus) 640106 connect the interface cable to both resistive heater blocks set at 35°C
Resistive heater blocks RH-2 (Warner Instruments (Harvard Apparatus) 640274 Resistive heater blocks can heat the brass ear platform up to over 100 °C within minutes. Ensure that the control thermistor has been properly secured in the holder in order to avoid overheating.
Temperature controller TC-344B for the ear platform (Warner Instruments (Harvard Apparatus) 640101
Temperature controller TR-200 for mouse heating pad Fine Science Tools 21052-00 Unit is no longer for sale. Ask manufacturer for alternatives
Power supply for TR-200 Fine Science Tools 21051-00 Unit is no longer for sale. Ask manufacturer for alternatives
Heating pad Fine Science Tools 21060-00 Unit is no longer for sale. Ask manufacturer for alternatives. 
Animal rectal probe  Fine Science Tools 21060-01 Unit is no longer for sale. Ask manufacturer for alternatives. After connecting the rectal probe and heating pad to the temperature controller TR-200, set the temperature to 37 °C
Name Company Catalog Number Comments
Coverslip holder
2 plastic rods, 1 cm in diameter, 10 cm in length
1 plastic adaptor with holes drilled to accommodate rods (refer to diagram)
3 plastic tightening screws for keeping plastic rods in place
1 metal plate, 6 cm x 2.5 cm, with a 2 cm square cut at 1 end, 2 mm edge away from short edge
1 pair of nut and bolt for attaching metal plate to plastic rod
1 acrylic base (4 cm x 5 cm x 1.5 cm) with magnet to hold coverslip holder on skin-imaging stage platform. 1 rod is permanently fixed onto base.
Name Company Catalog Number Comments
Imaging analysis software
Imaris v8.1.2 Bitplane

Referências

  1. Black, J., et al. National Pressure Ulcer Advisory Panel’s updated pressure ulcer staging system. Adv Skin Wound Care. 20, 269-274 (2007).
  2. Kalogeris, T., Baines, C. P., Krenz, M., Korthuis, R. J. Cell biology of ischemia/reperfusion injury. Int Rev Cell Mol Biol. 298, 229-317 (2012).
  3. Huebener, P., et al. The HMGB1/RAGE axis triggers neutrophil-mediated injury amplification following necrosis. J Clin Invest. 125, 539-550 (2015).
  4. Wassermann, E., et al. A chronic pressure ulcer model in the nude mouse. Wound Repair Regen. 17, 480-484 (2009).
  5. Stadler, I., Zhang, R. Y., Oskoui, P., Whittaker, M. S., Lanzafame, R. J. Development of a simple, noninvasive, clinically relevant model of pressure ulcers in the mouse. J Invest Surg. 17, 221-227 (2004).
  6. Tsuji, S., Ichioka, S., Sekiya, N., Nakatsuka, T. Analysis of ischemia-reperfusion injury in a microcirculatory model of pressure ulcers. Wound Repair Regen. 13, 209-215 (2005).
  7. Ng, L. G., et al. Visualizing the neutrophil response to sterile tissue injury in mouse dermis reveals a three-phase cascade of events. J Invest Dermatol. 131, 2058-2068 (2011).
  8. Li, J. L., et al. Intravital multiphoton imaging of immune responses in the mouse ear skin. Nat Protoc. 7, 221-234 (2012).
  9. Tong, P. L., et al. The skin immune atlas: three-dimensional analysis of cutaneous leukocyte subsets by multiphoton microscopy. J Invest Dermatol. 135, 84-93 (2015).
  10. Saito, Y., et al. The loss of MCP-1 attenuates cutaneous ischemia-reperfusion injury in a mouse model of pressure ulcer. J Invest Dermatol. 128, 1838-1851 (2008).
  11. Faust, N., Varas, F., Kelly, L. M., Heck, S., Graf, T. Insertion of enhanced green fluorescent protein into the lysozyme gene creates mice with green fluorescent granulocytes and macrophages. Blood. 96, 719-726 (2000).
  12. Roediger, B., Ng, L. G., Smith, A. L., Fazekasde de St Groth, B., Weninger, W. Visualizing dendritic cell migration within the skin. Histochem Cell Biol. 130, 1131-1146 (2008).
  13. Kikushima, K., Kita, S., Higuchi, H. A non-invasive imaging for the in vivo tracking of high-speed vesicle transport in mouse neutrophils. Sci Rep. 3, 1913 (2013).
  14. Ng, L. G., et al. Migratory dermal dendritic cells act as rapid sensors of protozoan parasites. PLoS Pathog. 4, e1000222 (2008).
  15. Soohoo, A. L., Bowersox, S. L., Puthenveedu, M. A. Visualizing clathrin-mediated endocytosis of G protein-coupled receptors at single-event resolution via TIRF microscopy. J Vis Exp. , e51805 (2014).
  16. Beltman, J. B., Maree, A. F., de Boer, R. J. Analysing immune cell migration. Nat Rev Immunol. 9, 789-798 (2009).

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Citar este artigo
Goh, C. C., Li, J. L., Becker, D., Weninger, W., Angeli, V., Ng, L. G. Inducing Ischemia-reperfusion Injury in the Mouse Ear Skin for Intravital Multiphoton Imaging of Immune Responses. J. Vis. Exp. (118), e54956, doi:10.3791/54956 (2016).

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