Summary

Innsikt i de Samhandling av aminosyrer og peptider med uorganiske materialer Bruke Single-Molecule Force spektroskopi

Published: March 06, 2017
doi:

Summary

Her presenterer vi en protokoll for å måle kraften av interaksjoner mellom en veldefinert uorganisk overflate og enten peptider eller aminosyrer ved én-molekyl kraft spektroskopi-målinger ved hjelp av en atommikroskop (AFM). Oppnådd fra målingen informasjonen er viktig for bedre å forstå den peptid-uorganisk materiale interfase.

Abstract

Interaksjonene mellom proteiner eller peptider og uorganiske materialer fører til flere interessante prosesser. For eksempel, ved å kombinere proteiner med mineraler fører til dannelse av komposittmaterialer med spesielle egenskaper. I tillegg er det uønskede fremgangs biobegroing initiert ved adsorpsjon av biomolekyler, hovedsakelig proteiner, på overflater. Det organiske laget er et klebesjikt for bakterier og gjør det mulig for dem å kommunisere med overflaten. Forstå de grunnleggende kreftene som styrer samhandlingen på organisk-uorganisk grensesnitt er derfor viktig for mange forskningsområder og kan føre til utformingen av nye materialer for optiske, mekaniske og biomedisinske applikasjoner. Dette papir viser en enkelt-molekyl kraft spektroskopi teknikk som benytter en AFM for å måle adhesjonskraften mellom enten peptider eller aminosyrer og veldefinerte uorganiske overflater. Denne teknikk innebærer en protokoll for å feste biomolekyl til AFMtips gjennom en kovalent fleksibel linker og single-molekyl kraft spektroskopi målinger av atommikroskop. I tillegg er en analyse av disse målingene er inkludert.

Introduction

Samspillet mellom proteiner og uorganiske mineraler fører til bygging av komposittmaterialer med karakteristiske egenskaper. Dette inkluderer materialer med høy mekanisk styrke eller spesielle optiske egenskaper. 1, 2 kan for eksempel kombinasjonen av proteinet collagen med mineral hydroksyapatitt genererer enten bløte eller harde bein for forskjellige funksjoner. 3 korte peptider kan også binde uorganiske materialer med høy spesifisitet. 4, og 5, 6 Spesifisiteten av disse peptidene er brukt for å designe nye magnetiske og elektroniske materialer, 7, 8, 9 tilvirkning av nanostrukturerte materialer, vokser krystaller, 10 og syntetisere nanopartikler. 11 Forstå mekanismen bak interaksjoner mellom peptider eller proteiner og uorganiske materialer vil derfor tillate oss å designe nye komposittmaterialer med forbedrede adsorberende egenskaper. I tillegg, siden den interfase av implantater med en immunrespons blir mediert av proteiner, bedre forståelse interaksjonene mellom proteiner med uorganiske materialer som vil forbedre evnen til å utforme implantater. Et annet viktig område som innebærer proteiner i samspill med uorganiske overflater er fabrikasjon av bunnstoff materialer. 12, 13, 14, er 15 Begroing en uønsket prosess hvor organismene fester seg til en overflate. Det har mange uheldige konsekvenser for våre liv. For eksempel, begroing av bakterier på medisinsk utstyr fører til sykehusinfeksjoner. Begroing av marine organismer på båter og store skip øker forbruk av drivstoff. 12, 16, 17, 18

Enkelt-molekyl kraft spektroskopi (SMFS), ved hjelp av en AFM, kan direkte måle interaksjonen mellom en aminosyre eller et peptid med et substrat. 19, 20, 21, 22, 23, 24, 25, 26 Andre metoder så som fag-display, 27, 28 kvartskrystall mikrovekt (QCM) 29 eller overflate-plasmonresonans (SPR) 29, 30, 31, 32,ref "> 33 mål interaksjoner av peptider og proteiner til uorganiske overflater i bulk. 34, 35, 36 Dette betyr at de resultater som oppnås ved disse metodene er knyttet til ensembler av molekyler eller aggregater. I SMFS, er en eller svært få molekyler festet til AFM spissen og deres samspill med ønsket underlaget er målt. Denne fremgangsmåten kan utvides til å studere proteinfolding ved å trekke protein fra overflaten. I tillegg, kan den brukes til å måle interaksjoner mellom celler og proteiner og bindingen av antistoffer til deres ligander. 37, 38, 39, 40 Dette notatet beskriver i detalj hvordan du fester enten peptider eller aminosyrer til AFM spissen hjelp silanol kjemi. I tillegg forklarer papir hvordan du utfører styrkemålinger og hvordan å analysereresultater.

Protocol

1. Tips Modification Kjøps silisiumnitrid (Si 3 N 4) AFM bommene med silisium tips (nominell cantilever radius på ~ 2 nm). Rengjør hver AFM cantilever ved å dyppe i vannfri etanol i 20 min. Tørk ved romtemperatur. Deretter behandle bommene ved å utsette dem for O to plasma i 5 min. Suspendere de rene tips ovennevnte (3 cm) en oppløsning inneholdende metyltrietoksysilan og 3- (aminopropyl) triethoxysilane i et forhold på 15: 1 (v / v) i en desikkator…

Representative Results

Figur 1 viser tuppen modifikasjon prosedyre. I det første trinnet, vil en plasmabehandling på overflaten av silisiumnitrid tips. Spissen presenterer OH-grupper. Disse gruppene vil da reagere med silaner. Ved slutten av dette trinn, vil overflaten på spissen dekket av frie NH2-grupper. Disse frie aminer vil da reagere med Fmoc -PEG-NHS, en kovalent linker. Fmoc-gruppen av PEG-linkeren fjernes ved pipyridine, et avbeskyttende reagens. Til slutt blir undersøk…

Discussion

Trinn 1.3, 1.4 og 1.7 i protokollen bør utføres med omfattende omsorg og i en meget skånsom måte. I trinn 1.3, bør spissen ikke være i kontakt med silan blandingen og den silanisering prosess bør utføres i en inert atmosfære (fuktighetsfri). 45 Dette er gjort for å forhindre flerlags formasjon og fordi silan-molekyler lett undergå hydrolyse i nærvær av fuktighet. 45

I trinn 1.4, bør temperaturen og tiden holdes på riktig måte. F…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

This work was supported by the Marie Curie International Reintegration Grant (EP7). P. D. acknowledges the support of the Israel Council for Higher Education.

Materials

Silicon nitride (Si3N4) AFM cantilevers with silicon tips Bruker (Camarilo, CA, USA) MSNL10, nominal cantilevers radius ~2 nm 
Methyltriethoxysilane  Acros Organics (New Jersey, USA) For Silaylation of the AFM tip 
3-(Aminopropyl) triethoxysilane Sigma-Aldrich (Jerusalem, Israel) Used for tip modification 
Triisopropylsilane Sigma-Aldrich (Jerusalem, Israel) Used for tip modification
N-Ethyldiisopropylamine Alfa-Aesar (Lancashire, UK) Used for tip modification
Triethylamine Alfa-Aesar (Lancashire, UK) Used for tip modification
Piperidine Alfa-Aesar (Lancashire, UK) Used for tip modification
Fluorenylmethyloxycarbonyl-PEG-N-hydroxysuccinimide  (Fmoc-PEG-NHS) Iris Biotech GmbH (Deutschland, Germany) Used as the covalent flexible linker  (MW = 5000 Da)
2-(1H-benzotriazol-1-yl)-1,1,3,3,-tetramethyluronium hexafluorophosphate (HBTU) Alfa Aser (Heysham, England) Used as a coupling reagent. 
N-methyl-2-pyrrolidone (NMP) Acros Organics (New Jersey, USA) Used as Solvent in Tip modification procedure
DMF (dimethylformamide) Merck (Darmstadt, Germany) Used as Solvent in Tip modification procedure
Trifluoro acetic acid (TFA) Merck (Darmstadt, Germany)
Acetic anhydride Merck (Darmstadt, Germany)
Peptides GL Biochem (Shanghai, China).
Phenylalanine and Tyrosine  Biochem (Darmstadt, Germany) 
30% TiO2 dispersion in the mixture of solvent 2-(2-Methoxyethoxy) ethanol (DEGME) and Ethyl 3-Ethoxypropionate (EEP) Applied Vision Laboratories (Jerusalem, Israel) (30%) in the mixture of solvent 2-(2 Methoxyethoxy) ethanol (DEGME) and Ethyl 3-Ethoxypropionate (EEP)
Mica substrates TED PELLA, INC. (Redding, California, USA) 9.9 mm diameter

Referências

  1. Addadi, L., Weiner, S. Control and design principles in biological mineralization. Angew. Chem., Int. Ed. 31 (2), 153-169 (1992).
  2. Meyers, M. A., Chen, P. Y., Lin, A. Y. M., Seki, Y. Biological materials: Structure and mechanical properties. Prog. Mater. Sci. 53 (1), 1-206 (2008).
  3. Villee, C. A. J. Book Review. Engl. J. Med. 309 (4), 247-248 (1983).
  4. Vallee, A., Humblot, V., Pradier, C. -. M. Peptide interactions with metal and oxide surfaces. Acc. Chem. Res. 43 (10), 1297-1306 (2010).
  5. Peelle, B. R., Krauland, E. M., Wittrup, K. D., Belcher, A. M. Design criteria for engineering inorganic material-specific peptides. Langmuir. 21 (15), 6929-6933 (2005).
  6. Gabryelczyk, B., Szilvay, G. R., Linder, M. B. The structural basis for function in diamond-like carbon binding peptides. Langmuir. 30 (29), 8798-8802 (2014).
  7. Sarikaya, M., Tamerler, C., Jen, A. K. Y., Schulten, K., Baneyx, F. Molecular biomimetics: Nanotechnology through biology. Nat. Mater. 2 (9), 577-585 (2003).
  8. Tamerler, C., Sarikaya, M. Molecular biomimetics: Utilizing nature’s molecular ways in practical engineering. Acta Biomater. 3 (3), 289-299 (2007).
  9. Seker, U. O. S., Demir, H. V. Material binding peptides for nanotechnology. Molecules. 16 (2), 1426-1451 (2011).
  10. Green, J. J., et al. Electrostatic ligand coatings of nanoparticles enable ligand-specific gene delivery to human primary cells. Nano Lett. 7 (4), 874-879 (2007).
  11. Grohe, B., et al. Control of calcium oxalate crystal growth by face-specific adsorption of an osteopontin phosphopeptide. J. Am. Chem. Soc. 129 (48), 14946-14951 (2007).
  12. Maity, S., Nir, S., Zada, T., Reches, M. Self-assembly of a tripeptide into a functional coating that resists fouling. Chem. Commun. 50 (76), 11154-11157 (2014).
  13. Das, P., Yuran, S., Yan, J., Lee, P. S., Reches, M. Sticky tubes and magnetic hydrogels co-assembled by a short peptide and melanin-like nanoparticles. Chem. Commun. 51 (25), 5432-5435 (2015).
  14. Burg, K. J. L., Porter, S., Kellam, J. F. Biomaterial developments for bone tissue engineering. Biomaterials. 21 (23), 2347-2359 (2000).
  15. Weiger, M. C., et al. Quantification of the binding affinity of a specific hydroxyapatite binding peptide. Biomaterials. 31 (11), 2955-2963 (2010).
  16. Pettitt, M. E., Henry, S. L., Callow, M. E., Callow, J. A., Clare, A. S. Activity of commercial enzymes on settlement and adhesion of cypris larvae of the barnacle Balanus amphitrite, spores of the green alga Ulva linza, and the diatom Navicula perminuta. Biofouling. 20 (6), 299-311 (2004).
  17. Schultz, M. P., Finlay, J. A., Callow, M. E., Callow, J. A. Three models to relate detachment of low form fouling at laboratory and ship scale. Biofouling. 19, 17-26 (2003).
  18. Cao, S., Wang, J., Chen, H., Chen, D. Progress of marine biofouling and antifouling technologies. Chinese Science Bulletin. 56 (7), 598-612 (2010).
  19. Wei, Y., Latour, R. A. Correlation between desorption force measured by Atomic Force Microscopy and adsorption free energy measured by surface plasmon resonance spectroscopy for peptide-surface interactions. Langmuir. 26 (24), 18852-18861 (2010).
  20. Li, Q., et al. AFM-based force spectroscopy for bioimaging and biosensing. RSC Advances. 6, 12893-12912 (2016).
  21. Meibner, R. H., Wei, G., Ciacchi, L. C. Estimation of the free energy of adsorption of a polypeptide on amorphous SiO2 from molecular dynamics simulations and force spectroscopy experiments. Soft Matter. 11 (31), 6254-6265 (2015).
  22. Xue, Y., Li, X., Li, H., Zhang, W. Quantifying thiol-gold interactions towards the efficient strength control. Nat. Commun. 5, 4348 (2014).
  23. Razvag, Y., Gutkin, V., Reches, M. Probing the interaction of individual amino acids with inorganic surfaces using atomic force spectroscopy. Langmuir. 29, 10102-10109 (2013).
  24. Das, P., Reches, M. Revealing the role of catechol moieties in the interactions between peptides and inorganic surfaces. Nanoscale. 8, 15309-15316 (2016).
  25. Das, P., Reches, M. Review insights into the interactions of amino acids and peptides with inorganic materials using single molecule force spectroscopy. Bioploymers-Pept. Sci. 104, 480-494 (2015).
  26. Maity, S., et al. Elucidating the mechanism of interaction between peptides and inorganic surfaces. Phys. Chem. Chem. Phys. 17 (23), 15305-15315 (2015).
  27. Whaley, S. R., English, D. S., Hu, E. L., Barbara, P. F., Belcher, A. M. Selection of peptides with semiconductor binding specificity for directed nanocrystal assembly. Nature. 405 (6787), 665-668 (2000).
  28. Tamerler, C., Oren, E. E., Duman, M., Venkatasubramanian, E., Sarikaya, M. Adsorption Kinetics of an engineered gold binding peptide by surface plasmon resonance spectroscopy and a quartz crystal microbalance. Langmuir. 22 (18), 7712-7718 (2006).
  29. Santos, O., Kosoric, J., Hector, M. P., Anderson, P., Lindh, L. Adsorption behavior of statherin and a statherin peptide onto hydroxyapatite and silica surfaces by in situ ellipsometry. J. Colloid Interface Sci. 318 (2), 175-182 (2008).
  30. Evans, E., Ritchie, K. Dynamic strength of molecular adhesion bonds. Biophys. J. 72 (4), 1541-1555 (1997).
  31. Micksch, T., Liebelt, N., Scharnweber, D., Schwenzer, B. Investigation of the peptide adsorption on ZrO2, TiZr, and TiO2 surfaces as a method for surface modification. ACS Appl. Mater. Interfaces. 6 (10), 7408-7416 (2014).
  32. Patwardhan, S. V., et al. Chemistry of aqueous silica nanoparticle surfaces and the mechanism of selective peptide adsorption. J. Am. Chem. Soc. 134 (14), 6244-6256 (2012).
  33. Thyparambil, A. A., Wei, Y., Latour, R. A. Determination of peptide-surface adsorption free energy for material surfaces not conducive to SPR or QCM using AFM. Langmuir. 28 (13), 5687-5694 (2012).
  34. Hnilova, M., et al. Effect of molecular conformations on the adsorption behavior of gold-binding peptides. Langmuir. 24 (21), 12440-12445 (2008).
  35. Sano, K., Sasaki, H., Shiba, K. Utilization of the pleiotropy of a peptidic aptamer to fabricate heterogeneous nanodot-containing multilayer nanostructures. J. Am. Chem. Soc. 128 (5), 1717-1722 (2006).
  36. Chen, H., Su, X., Neoh, K. -. G., Choe, W. -. S. Context-dependent adsorption behavior of cyclic and linear peptides on metal oxide surfaces. Langmuir. 25 (3), 1588-1593 (2008).
  37. Zlatanova, J., Lindsay, S. M., Leuba, S. H. Single molecule force spectroscopy in biology using the atomic force microscope. Prog. Biophys. Mol. Biol. 74 (1-2), 37-61 (2000).
  38. Wang, C. Z., Yadavalli, V. K. Investigating biomolecular recognition at the cell surface using atomic force microscopy. Micron. 60, 5-17 (2014).
  39. Galler, K., Brautigam, K., Grobe, C., Popp, J., Neugebauer, U. Making a big thing of a small cell – recent advances in single cell analysis. Analyst. 139 (6), 1237-1273 (2014).
  40. Carvalho, F. A., Martins, I. C., Santos, N. C. Atomic force microscopy and force spectroscopy on the assessment of protein folding and functionality. Arch. Biochem. Biophys. 531 (1-2), 116-127 (2013).
  41. Azoubel, S., Magdassi, S. Controlling adhesion properties of SWCNT-PET films prepared by wet deposition. ACS Appl. Mater. Interfaces. 6 (12), 9265-9271 (2014).
  42. Jaschke, M., Butt, H. J. Height calibration of optical-lever atomic-force microscopes by simple laser interferometry. Rev. Sci. Instrum. 66 (2), 1258-1259 (1995).
  43. Evans, E., Kinoshita, K., Simon, S., Leung, A. Long-lived, high-strength states of ICAM-1 bonds to beta(2) integrin, I: Lifetimes of bonds to recombinant alpha(L) beta(2) under force. Biophys. J. 98 (8), 1458-1466 (2010).
  44. Bouchiat, C., et al. Estimating the persistence length of a Worm-Like Chain molecule from force-extension measurements. Biophys. J. 76 (1), 409-413 (1999).
  45. Pick, C., Argento, C., Drazer, G., Frechette, J. Micropatterned Charge Heterogeneities via Vapor Deposition of Aminosilanes. Langmuir. 31 (39), 10725-10733 (2015).
  46. Berquand, A., et al. Antigen binding forces of single antilysozyme Fv fragments explored by atomic force microscopy. Langmuir. 21, 5517-5523 (2005).
  47. Kienberger, F., et al. Recognition Force Spectroscopy Studies of the NTA-His6 Bond. Single Molecules. 1, 59-65 (2000).
  48. Tong, Z., Mikheikin, A., Krasnoslobodtsev, A., Lv, Z., Lyubchenko, Y. L. Novel polymer linkers for single molecule AFM force spectroscopy. Methods. 60, 161-168 (2013).
  49. Ulman, A. Formation and Structure of Self-Assembled Monolayers. Chem. Rev. 96, 1533-1554 (1996).
  50. Andolfi, L., Bizzarri, A. R., Cannistraro, S. Electron tunneling in a metal-protein-metal junction investigated by scanning tunneling and conductive atomic force spectroscopies. Appl. Phys. Lett. 89, 183125 (2006).
check_url/pt/54975?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Das, P., Duanias-Assaf, T., Reches, M. Insights into the Interactions of Amino Acids and Peptides with Inorganic Materials Using Single-Molecule Force Spectroscopy. J. Vis. Exp. (121), e54975, doi:10.3791/54975 (2017).

View Video