Summary

Insikter Interaktioner av aminosyror och peptider med oorganiska material med hjälp av enda molekyl Force spektroskopi

Published: March 06, 2017
doi:

Summary

Här presenterar vi ett protokoll för att mäta kraften för interaktioner mellan en väldefinierad oorganisk yta och antingen peptider eller aminosyror genom en enda molekyl kraft spektroskopimätningar med hjälp av ett atomkraftsmikroskop (AFM). Den information som erhålls från mätningen är viktigt att bättre förstå den peptid-oorganiskt material interfasen.

Abstract

Interaktionen mellan proteiner eller peptider och oorganiska material leda till flera intressanta processer. Till exempel kombinera proteiner med mineraler leder till bildningen av kompositmaterial med unika egenskaper. Dessutom är den icke önskvärda processen för biobeväxning initieras genom adsorption av biomolekyler, främst proteiner, på ytor. Detta organiska skikt är ett vidhäftningsskikt för bakterier och ger dem möjlighet att interagera med ytan. Att förstå de fundamentala krafter som styr samspelet på organiska-oorganiska gränssnitt är därför viktigt för många forskningsområden och kan leda till design av nya material för optiska, mekaniska och biomedicinska tillämpningar. Detta papper uppvisar en enda molekyl force spektroskopi teknik som utnyttjar en AFM för att mäta vidhäftningskraften mellan antingen peptider eller aminosyror och väldefinierade oorganiska ytor. Denna teknik inbegriper ett protokoll för att fästa biomolekylen till AFMtippa genom en kovalent flexibel linker och enda molekyl kraft spektroskopimätningar av atomkraftsmikroskop. Dessutom är en analys av dessa mätningar ingår.

Introduction

Samspelet mellan proteiner och oorganiska mineraler leder till byggandet av kompositmaterial med särskiljande egenskaper. Detta inkluderar material med hög mekanisk hållfasthet eller unika optiska egenskaper. 1, 2 exempelvis kombinationen av proteinet kollagen med mineral hydroxiapatit genererar antingen mjuka eller hårda ben för olika funktionaliteter. 3 Korta peptider kan också binda oorganiska material med hög specificitet. 4, har fem, sex Specificiteten av dessa peptider använts för att utforma nya magnetiska och elektroniska material, 7, 8, 9 tillverka nanostrukturerade material, växande kristaller, 10 och syntetisera nanopartiklar. 11 förstå mekanismen bakom växelverkan mellan peptider eller proteiner och oorganiska material kommer därför att göra det möjligt för oss att utforma nya kompositmaterial med förbättrade adsorptiva egenskaper. Dessutom, eftersom mellanfasen av implantat med ett immunsvar medieras av proteiner, bättre förstå de interaktioner mellan proteiner med oorganiska material kommer att förbättra vår förmåga att utforma implantat. Ett annat viktigt område som involverar proteiner interagerar med oorganiska ytor är tillverkningen av båtbotten material. 12, 13, 14, är 15 Biofouling en oönskad process där organismer fästa på en yta. Det har många skadliga konsekvenser för våra liv. Till exempel, påväxt av bakterier på medicintekniska produkter leder till sjukhusförvärvade infektioner. Biologisk påväxt av marina organismer på båtar och stora fartyg ökar förbrukning av bränsle. 12, 16, 17, 18

Enda molekyl force spektroskopi (SMF), med användning av en AFM, kan direkt mäta interaktioner mellan en aminosyra eller en peptid med ett substrat. 19, 20, 21, 22, 23, 24, 25, 26 Andra metoder såsom fagdisplay, 27, 28 kvartskristallmikrovåg (QCM) 29 eller ytplasmonresonans (SPR) 29, 30, 31, 32,ref "> 33 åtgärd växelverkan av peptider och proteiner till oorganiska ytor i bulk. 34, 35, 36 Detta betyder att de resultat som erhållits med dessa metoder avser ensembler av molekyler eller aggregat. I SMF, är ett eller mycket få molekyler fäst AFM spets och deras interaktioner med det önskade substratet mäts. kan utökas detta tillvägagångssätt för att studera proteinveckning genom att dra i proteinet från ytan. Dessutom kan den användas för att mäta interaktioner mellan celler och proteiner och bindningen av antikroppar till deras ligander. 37, 38, 39, 40 Detta dokument beskriver i detalj hur man bifoga antingen peptider eller aminosyror till AFM spets med hjälp av silanol kemi. Dessutom förklarar papper hur man utför kraftmätningar och hur man analyserarresultat.

Protocol

1. Tips Ändring Köp kiselnitrid (Si 3 N 4) AFM utliggare med kisel tips (nominellt fribärande radie ~ 2 nm). Rengöra varje AFM fribärande genom doppning i vattenfri etanol under 20 min. Torka vid rumstemperatur. Behandla Sedan konsolerna genom att utsätta dem för O 2 plasma under 5 minuter. Suspendera de rena tipsen ovan (3 cm) en lösning innehållande metyltrietoxisilan och 3- (aminopropyl) trietoxisilan i ett förhållande av 15: 1 (volym / volym)…

Representative Results

Figur 1 uppvisar förfarandet spetsen modifiering. I det första steget, ändrar en plasmabehandling på ytan av kiselnitriden spetsen. Spetsen presenteras OH-grupper. Dessa grupper kommer sedan att reagera med silaner. Vid slutet av detta steg, kommer ytan av spetsen täckas av fria -NH2-grupper. Dessa fria aminer kommer sedan att reagera med Fmoc -PEG-NHS, en kovalent linker. Fmoc-gruppen av PEG linker avlägsnas genom pipyridine, ett avblockeringsreagens. S…

Discussion

Steg 1,3, 1,4 och 1,7 i protokollet bör utföras med stor omsorg och i ett mycket skonsamt sätt. I steg 1,3, bör spetsen inte vara i kontakt med silanblandningen och silaniseringen processen bör utföras i en inert atmosfär (fuktfri). 45 Detta görs för att förhindra flerskiktsbildning och eftersom silanmolekyler undergår lätt hydrolys i närvaro av fukt. 45

I steg 1,4, bör temperaturen och tiden hållas korrekt. Före start steg 1,5,…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

This work was supported by the Marie Curie International Reintegration Grant (EP7). P. D. acknowledges the support of the Israel Council for Higher Education.

Materials

Silicon nitride (Si3N4) AFM cantilevers with silicon tips Bruker (Camarilo, CA, USA) MSNL10, nominal cantilevers radius ~2 nm 
Methyltriethoxysilane  Acros Organics (New Jersey, USA) For Silaylation of the AFM tip 
3-(Aminopropyl) triethoxysilane Sigma-Aldrich (Jerusalem, Israel) Used for tip modification 
Triisopropylsilane Sigma-Aldrich (Jerusalem, Israel) Used for tip modification
N-Ethyldiisopropylamine Alfa-Aesar (Lancashire, UK) Used for tip modification
Triethylamine Alfa-Aesar (Lancashire, UK) Used for tip modification
Piperidine Alfa-Aesar (Lancashire, UK) Used for tip modification
Fluorenylmethyloxycarbonyl-PEG-N-hydroxysuccinimide  (Fmoc-PEG-NHS) Iris Biotech GmbH (Deutschland, Germany) Used as the covalent flexible linker  (MW = 5000 Da)
2-(1H-benzotriazol-1-yl)-1,1,3,3,-tetramethyluronium hexafluorophosphate (HBTU) Alfa Aser (Heysham, England) Used as a coupling reagent. 
N-methyl-2-pyrrolidone (NMP) Acros Organics (New Jersey, USA) Used as Solvent in Tip modification procedure
DMF (dimethylformamide) Merck (Darmstadt, Germany) Used as Solvent in Tip modification procedure
Trifluoro acetic acid (TFA) Merck (Darmstadt, Germany)
Acetic anhydride Merck (Darmstadt, Germany)
Peptides GL Biochem (Shanghai, China).
Phenylalanine and Tyrosine  Biochem (Darmstadt, Germany) 
30% TiO2 dispersion in the mixture of solvent 2-(2-Methoxyethoxy) ethanol (DEGME) and Ethyl 3-Ethoxypropionate (EEP) Applied Vision Laboratories (Jerusalem, Israel) (30%) in the mixture of solvent 2-(2 Methoxyethoxy) ethanol (DEGME) and Ethyl 3-Ethoxypropionate (EEP)
Mica substrates TED PELLA, INC. (Redding, California, USA) 9.9 mm diameter

Referências

  1. Addadi, L., Weiner, S. Control and design principles in biological mineralization. Angew. Chem., Int. Ed. 31 (2), 153-169 (1992).
  2. Meyers, M. A., Chen, P. Y., Lin, A. Y. M., Seki, Y. Biological materials: Structure and mechanical properties. Prog. Mater. Sci. 53 (1), 1-206 (2008).
  3. Villee, C. A. J. Book Review. Engl. J. Med. 309 (4), 247-248 (1983).
  4. Vallee, A., Humblot, V., Pradier, C. -. M. Peptide interactions with metal and oxide surfaces. Acc. Chem. Res. 43 (10), 1297-1306 (2010).
  5. Peelle, B. R., Krauland, E. M., Wittrup, K. D., Belcher, A. M. Design criteria for engineering inorganic material-specific peptides. Langmuir. 21 (15), 6929-6933 (2005).
  6. Gabryelczyk, B., Szilvay, G. R., Linder, M. B. The structural basis for function in diamond-like carbon binding peptides. Langmuir. 30 (29), 8798-8802 (2014).
  7. Sarikaya, M., Tamerler, C., Jen, A. K. Y., Schulten, K., Baneyx, F. Molecular biomimetics: Nanotechnology through biology. Nat. Mater. 2 (9), 577-585 (2003).
  8. Tamerler, C., Sarikaya, M. Molecular biomimetics: Utilizing nature’s molecular ways in practical engineering. Acta Biomater. 3 (3), 289-299 (2007).
  9. Seker, U. O. S., Demir, H. V. Material binding peptides for nanotechnology. Molecules. 16 (2), 1426-1451 (2011).
  10. Green, J. J., et al. Electrostatic ligand coatings of nanoparticles enable ligand-specific gene delivery to human primary cells. Nano Lett. 7 (4), 874-879 (2007).
  11. Grohe, B., et al. Control of calcium oxalate crystal growth by face-specific adsorption of an osteopontin phosphopeptide. J. Am. Chem. Soc. 129 (48), 14946-14951 (2007).
  12. Maity, S., Nir, S., Zada, T., Reches, M. Self-assembly of a tripeptide into a functional coating that resists fouling. Chem. Commun. 50 (76), 11154-11157 (2014).
  13. Das, P., Yuran, S., Yan, J., Lee, P. S., Reches, M. Sticky tubes and magnetic hydrogels co-assembled by a short peptide and melanin-like nanoparticles. Chem. Commun. 51 (25), 5432-5435 (2015).
  14. Burg, K. J. L., Porter, S., Kellam, J. F. Biomaterial developments for bone tissue engineering. Biomaterials. 21 (23), 2347-2359 (2000).
  15. Weiger, M. C., et al. Quantification of the binding affinity of a specific hydroxyapatite binding peptide. Biomaterials. 31 (11), 2955-2963 (2010).
  16. Pettitt, M. E., Henry, S. L., Callow, M. E., Callow, J. A., Clare, A. S. Activity of commercial enzymes on settlement and adhesion of cypris larvae of the barnacle Balanus amphitrite, spores of the green alga Ulva linza, and the diatom Navicula perminuta. Biofouling. 20 (6), 299-311 (2004).
  17. Schultz, M. P., Finlay, J. A., Callow, M. E., Callow, J. A. Three models to relate detachment of low form fouling at laboratory and ship scale. Biofouling. 19, 17-26 (2003).
  18. Cao, S., Wang, J., Chen, H., Chen, D. Progress of marine biofouling and antifouling technologies. Chinese Science Bulletin. 56 (7), 598-612 (2010).
  19. Wei, Y., Latour, R. A. Correlation between desorption force measured by Atomic Force Microscopy and adsorption free energy measured by surface plasmon resonance spectroscopy for peptide-surface interactions. Langmuir. 26 (24), 18852-18861 (2010).
  20. Li, Q., et al. AFM-based force spectroscopy for bioimaging and biosensing. RSC Advances. 6, 12893-12912 (2016).
  21. Meibner, R. H., Wei, G., Ciacchi, L. C. Estimation of the free energy of adsorption of a polypeptide on amorphous SiO2 from molecular dynamics simulations and force spectroscopy experiments. Soft Matter. 11 (31), 6254-6265 (2015).
  22. Xue, Y., Li, X., Li, H., Zhang, W. Quantifying thiol-gold interactions towards the efficient strength control. Nat. Commun. 5, 4348 (2014).
  23. Razvag, Y., Gutkin, V., Reches, M. Probing the interaction of individual amino acids with inorganic surfaces using atomic force spectroscopy. Langmuir. 29, 10102-10109 (2013).
  24. Das, P., Reches, M. Revealing the role of catechol moieties in the interactions between peptides and inorganic surfaces. Nanoscale. 8, 15309-15316 (2016).
  25. Das, P., Reches, M. Review insights into the interactions of amino acids and peptides with inorganic materials using single molecule force spectroscopy. Bioploymers-Pept. Sci. 104, 480-494 (2015).
  26. Maity, S., et al. Elucidating the mechanism of interaction between peptides and inorganic surfaces. Phys. Chem. Chem. Phys. 17 (23), 15305-15315 (2015).
  27. Whaley, S. R., English, D. S., Hu, E. L., Barbara, P. F., Belcher, A. M. Selection of peptides with semiconductor binding specificity for directed nanocrystal assembly. Nature. 405 (6787), 665-668 (2000).
  28. Tamerler, C., Oren, E. E., Duman, M., Venkatasubramanian, E., Sarikaya, M. Adsorption Kinetics of an engineered gold binding peptide by surface plasmon resonance spectroscopy and a quartz crystal microbalance. Langmuir. 22 (18), 7712-7718 (2006).
  29. Santos, O., Kosoric, J., Hector, M. P., Anderson, P., Lindh, L. Adsorption behavior of statherin and a statherin peptide onto hydroxyapatite and silica surfaces by in situ ellipsometry. J. Colloid Interface Sci. 318 (2), 175-182 (2008).
  30. Evans, E., Ritchie, K. Dynamic strength of molecular adhesion bonds. Biophys. J. 72 (4), 1541-1555 (1997).
  31. Micksch, T., Liebelt, N., Scharnweber, D., Schwenzer, B. Investigation of the peptide adsorption on ZrO2, TiZr, and TiO2 surfaces as a method for surface modification. ACS Appl. Mater. Interfaces. 6 (10), 7408-7416 (2014).
  32. Patwardhan, S. V., et al. Chemistry of aqueous silica nanoparticle surfaces and the mechanism of selective peptide adsorption. J. Am. Chem. Soc. 134 (14), 6244-6256 (2012).
  33. Thyparambil, A. A., Wei, Y., Latour, R. A. Determination of peptide-surface adsorption free energy for material surfaces not conducive to SPR or QCM using AFM. Langmuir. 28 (13), 5687-5694 (2012).
  34. Hnilova, M., et al. Effect of molecular conformations on the adsorption behavior of gold-binding peptides. Langmuir. 24 (21), 12440-12445 (2008).
  35. Sano, K., Sasaki, H., Shiba, K. Utilization of the pleiotropy of a peptidic aptamer to fabricate heterogeneous nanodot-containing multilayer nanostructures. J. Am. Chem. Soc. 128 (5), 1717-1722 (2006).
  36. Chen, H., Su, X., Neoh, K. -. G., Choe, W. -. S. Context-dependent adsorption behavior of cyclic and linear peptides on metal oxide surfaces. Langmuir. 25 (3), 1588-1593 (2008).
  37. Zlatanova, J., Lindsay, S. M., Leuba, S. H. Single molecule force spectroscopy in biology using the atomic force microscope. Prog. Biophys. Mol. Biol. 74 (1-2), 37-61 (2000).
  38. Wang, C. Z., Yadavalli, V. K. Investigating biomolecular recognition at the cell surface using atomic force microscopy. Micron. 60, 5-17 (2014).
  39. Galler, K., Brautigam, K., Grobe, C., Popp, J., Neugebauer, U. Making a big thing of a small cell – recent advances in single cell analysis. Analyst. 139 (6), 1237-1273 (2014).
  40. Carvalho, F. A., Martins, I. C., Santos, N. C. Atomic force microscopy and force spectroscopy on the assessment of protein folding and functionality. Arch. Biochem. Biophys. 531 (1-2), 116-127 (2013).
  41. Azoubel, S., Magdassi, S. Controlling adhesion properties of SWCNT-PET films prepared by wet deposition. ACS Appl. Mater. Interfaces. 6 (12), 9265-9271 (2014).
  42. Jaschke, M., Butt, H. J. Height calibration of optical-lever atomic-force microscopes by simple laser interferometry. Rev. Sci. Instrum. 66 (2), 1258-1259 (1995).
  43. Evans, E., Kinoshita, K., Simon, S., Leung, A. Long-lived, high-strength states of ICAM-1 bonds to beta(2) integrin, I: Lifetimes of bonds to recombinant alpha(L) beta(2) under force. Biophys. J. 98 (8), 1458-1466 (2010).
  44. Bouchiat, C., et al. Estimating the persistence length of a Worm-Like Chain molecule from force-extension measurements. Biophys. J. 76 (1), 409-413 (1999).
  45. Pick, C., Argento, C., Drazer, G., Frechette, J. Micropatterned Charge Heterogeneities via Vapor Deposition of Aminosilanes. Langmuir. 31 (39), 10725-10733 (2015).
  46. Berquand, A., et al. Antigen binding forces of single antilysozyme Fv fragments explored by atomic force microscopy. Langmuir. 21, 5517-5523 (2005).
  47. Kienberger, F., et al. Recognition Force Spectroscopy Studies of the NTA-His6 Bond. Single Molecules. 1, 59-65 (2000).
  48. Tong, Z., Mikheikin, A., Krasnoslobodtsev, A., Lv, Z., Lyubchenko, Y. L. Novel polymer linkers for single molecule AFM force spectroscopy. Methods. 60, 161-168 (2013).
  49. Ulman, A. Formation and Structure of Self-Assembled Monolayers. Chem. Rev. 96, 1533-1554 (1996).
  50. Andolfi, L., Bizzarri, A. R., Cannistraro, S. Electron tunneling in a metal-protein-metal junction investigated by scanning tunneling and conductive atomic force spectroscopies. Appl. Phys. Lett. 89, 183125 (2006).

Play Video

Citar este artigo
Das, P., Duanias-Assaf, T., Reches, M. Insights into the Interactions of Amino Acids and Peptides with Inorganic Materials Using Single-Molecule Force Spectroscopy. J. Vis. Exp. (121), e54975, doi:10.3791/54975 (2017).

View Video