Summary

혀의 기계적 및 점탄성 특성에 대한 생체 내 평가

Published: July 06, 2017
doi:

Summary

우리는 혀의 근육의 음색과 점탄성을 결정하기위한 마취 된 쥐 모델에서 수술 과정을 설명합니다. 절차는 hypoglossal 신경의 특정 자극과 수동 Lissajous 힘 / 변형 곡선의 근육에 적용이 포함됩니다.

Abstract

혀는 대부분 척추 동물의 입 바닥에 매우 신경이 분산되고 혈관이 형성된 근육 수압 장치입니다. 그것의 1 차적인 기능은 저작 감각 및 혀의 지원뿐만 아니라 맛 감지 및 음성학을 지원합니다. 따라서 혀의 강도와 부피는 척추 동물이 먹이, 의사 소통 및 호흡과 같은 기본적인 활동을 수행하는 능력에 영향을 줄 수 있습니다. 수면 무호흡증을 앓고있는 환자는 근육 긴장이 감소되고 근육 내 지방이 증가하여 자기 공명 영상 (MRI)으로 시각화되고 정량화 될 수있는 방언이 확대됩니다. 혀의 힘 생성 및 점탄성 특성을 측정하는 능력은 이미징 데이터와 관련이있는 기능적 정보를 얻기위한 중요한 도구를 구성합니다. 여기, 우리는 hypoglossal 신경의 전기 자극을 통해 마취 주커 쥐에서 혀의 힘 생산을 측정하고 점탄성 속성을 결정하기위한 기술을 제시합니다f 수동 Lissajous 힘 / 변형 곡선을 적용하여 혀.

Introduction

혀는 저작, 씹기, 맛 감지 및 말하기에 필수적인 지원을 제공합니다. 명료 한 신경 분포 및 해부학 / 기능을 가진 외인성 및 내인성 근육 조직의 존재는이 근육질 수 구좌의 독창성을 설명합니다. 이미징 기술의 최근 발전으로 복잡한 해부학 1에 대해보다 자세히 살펴볼 수있었습니다 1 . 혀 기능 저하, 혀 위축, 연하 장애 및 언어 장애는 또한 파킨슨 병 2 , 근 위축성 측삭 경화증 (ALS) 3 , 근전 이영양증 (MD) 4 및 기타 근병증과 같은 근육 병적 상태의 흔한 징후입니다.

일반적인 질병 상태와 관련된 근육 구성의 변화는 혀의 기계적 및 점탄성 특성에 영향을 미칩니다. 예를 들어, 혀의 기능 분석은 노화와 관련된 수축 특성의 변화를 밝혀 냈습니다ss = "xref"> 5 , 6 , 저산소증 7 , 8 및 비만 9 , 10 . 근이영양증의 경우 섬유화가 증가하면 근육 경직도가 높아져서 Lissajous 변형 프로토콜을 적용 할 때 변형에 대한 순응도가 낮아집니다. 반대로, 비만 환자에서 기록 된 것과 같은 근육 지방 함량의 변화는 골격근 13 , 14 의 신진 대사와 기계적 특성을 변화 시키며 변형에 대한 근육 순응도를 증가시킬 것으로 예측됩니다. 혀의 지방 증가는 부분적 상부기도 폐쇄 (무호흡) 시점까지 혀의 체적을 증가시킴으로써 인간 17 의 폐쇄성 수면 무호흡증 (OSA)의 발달과 관련이 있습니다 15 , 16 . 심인간과 마찬가지로 혀 지방의 침윤은 뚱뚱한 Zucker rats 10 에 기록되어있어이 모델은 혀의 생리학에 지방 침투의 효과를 연구하는 데 유용한 도구임을 시사합니다.

혀의 힘을 측정하는 것은 hypoglossal 신경을 고립시키고 양측으로 자극하기 위해 섬세한 수술 기술을 요구합니다 17 , 18 . 이러한 기술은 이전에 래트 5 , 17 , 19 , 20 , 토끼 21 및 인간 22 , 23 에서 기술되었지만 조사자에게는 시각 보조 도구가 제한적이었다. 기술 수준이 높기 때문에 자세한 프로토콜의 가용성으로이 기술의 접근성과 재현성이 크게 향상됩니다. 실험 패러다임의 목표는 아픈 것입니다.쥐 모델에서 혀의 강도와 점탄성을 측정하기위한 정확하고 신뢰할 수있는 기법을 권장합니다. 이것을 달성하기 위해, 쥐를 마취하고, hypoglossal 신경이 노출되고 동물의 혀에 자유롭게 접근 할 수 있도록 기관에 캐 뉼러를 설치합니다. 봉합 고리는 혀의 끝 부분을 힘과 길이를 조절할 수있는 힘 변환기에 연결하는 반면, 두 개의 양극 훅 전극은 혀의 수축을 유도하는 하울그 신경 신경을 자극합니다. 힘 측정이 완료된 후 힘 변환기의 길이 제어 기능을 사용하여 고정 된 진폭 (Lissajous curves), 지속 시간 및 주파수를 갖는 사인파 프로토콜에 따라 혀의 길이를 빠르게 변경합니다. 그것의 점탄성 특성 11 , 24 . 프로토콜은 해부 단계, 실험 platfo에서 동물의 위치를 ​​통해 조사자를 안내합니다rm, 전극 배치, 마지막으로 힘 및 점탄성 데이터의 수집 및 분석에 이르기까지 다양합니다.

Protocol

동물 대상을 포함하는 모든 절차는 펜실베니아 대학의 기관 동물 관리 및 사용위원회 (IACUC) (의정서 번호 805822)에 의해 승인되었습니다. 설명 된 절차는 터미널이며 무균 상태 또는 의약품 제품의 사용을 필요로하지 않습니다. 1. 수술 절차 그림 1 : 수술 절?…

Representative Results

그림 3 : 대표 결과. (A) 성공적인 트 위치 및 파상 포스 트레이스의 예. 해당 자극은 빨간색 추적으로 표시됩니다. (B) 하악 수축 (파란 흔적)과 목 근육의 간접 자극으로 인한 혀의 파상풍 수축 실패의 예. 자극 전극을 재배치하거나 전극 종단과 주변 근육 조직 사?…

Discussion

혀 신진 대사 및 / 또는 구성의 변화, 예를 들어 비만의 결과로서 혀 지방 침윤은 우리의 프로토콜에 의해 평가 된 매개 변수의 정량화 가능한 변화를 야기 할 것으로 예측된다. 혀의 힘의 정량화는 대단히 흥미로운데, 돌출 된 활동과 후퇴하는 활동 사이의 불균형 또는 전반적인 혀의 약화로 인해 상부기도의 폐색이 발생할 수 있기 때문입니다. 혀의 힘을 증가시키는 것을 목표로하는 운동 …

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

이 연구는 두 가지 국립 보건 보조금에 의해 지원되었다 : HL089447 ( "비만 및 OSA : 혀 지방 및 대사 기능의 중요성 이해") 및 HL094307 ( "비만과 혀 지방의 관계 이해")

Materials

SurgiSuite (heated Surgical tray) Kent Scientific SurgiSuite-LG Includes heated platform
LED Lighting and Magnification Kit Kent Scientific SURGI- 5003
RC2 Rodent Circuit Controller VetEquip 922100
Isoflurane Butler Schein Animal Health Supply 29405
Alcohol Prep Webcol 6818
Cotton-tipped applicators MediChoice WOD1002
Hair clipper Conair
Hair remover lotion Nair
Medical tape Transpore 3M
D-PBS Corning 21-030-CM
Operating Scissors World Precision Instruments 503717-12
Hemostatic Forceps Merit 97-458 Any tissue forceps can be used instead
Microdissecting Forceps, Angled, Serrated, 10.2cm, SS World Precision Instruments 504479
Suture Tying Forceps Fine Science Tools 18025-10
Blunt Micro Hook Fine Science Tools 10062-12
Microhemostat Fine Science Tools 12075-14
Thermal cautery WPI 501292 Disposable cauteries are available at lower cost
IV 14g x 3.25" cannula BD B-D382268H For tracheal cannulation
Braided silk non-absorbable suture size 4-0 Harvard Apparatus SP104 For stabilization of the tracheal cannula
Braided non-absorbable silk 5/0 suture Surgik LC, USA ESILRC15387550 For suturing the tongue
Plastic-coated metal twist-tie (or electrical wire) For securing the rat's nose to the platform
Camera stick
3 way-swivel and Trilene 9Kg test monofilament line Berkley For securing the jaw and maintaining the mouth open
Camera stick with adjustable angle For supporting the 3 way-swivel and maintaining the mouth open.
in situ Muscle Test System Aurora Scientific 809C This system is designed for mice and was modified by extending the platform. Alternatively the rat-specific 806D system can be used.
Dual-Mode Muscle lever (force transducer) Aurora Scientific 305C-LR 309C offers higher excursion capabilities than 305C-LR. Link for more information and specifications: http://aurorascientific.com/products/muscle-physiology/dual-mode-muscle-levers/
Needle Electrodes (surgical steel, 29 gauge) AD Instruments MLA1204 300C is recommended for use in mice.
Magnetic Stands World Precision Instruments M10 Used for making the bipolar stimulating hook electrodes
Kite Manual Micromanipulator World Precision Instruments KITE-R and KITE-L Require a steel plate
Stackable Double Binding Post with Banana Jack x BNC Jack McMaster Carr 6704K13
Carbon fiber composites digital caliper VWR 36934-152

Referências

  1. Sanders, I., Mu, L. A three-dimensional atlas of human tongue muscles. Anat Rec (Hoboken). 296 (7), 1102-1114 (2013).
  2. Ciucci, M. R., et al. Tongue force and timing deficits in a rat model of Parkinson disease. Behav Brain Res. 222 (2), 315-320 (2011).
  3. Easterling, C., Antinoja, J., Cashin, S., Barkhaus, P. E. Changes in tongue pressure, pulmonary function, and salivary flow in patients with amyotrophic lateral sclerosis. Dysphagia. 28 (2), 217-225 (2013).
  4. Wang, Z. J., Huang, X. S. Images in clinical medicine. Myotonia of the tongue. N Engl J Med. 365 (15), e32 (2011).
  5. Ota, F., Connor, N. P., Konopacki, R. Alterations in contractile properties of tongue muscles in old rats. Ann Otol Rhinol Laryngol. 114 (10), 799-803 (2005).
  6. Schwarz, E. C., Thompson, J. M., Connor, N. P., Behan, M. The Effects of Aging on Hypoglossal Motoneurons in Rats. Dysphagia. 24 (1), 40 (2008).
  7. Pae, E. -. K., Wu, J., Nguyen, D., Monti, R., Harper, R. M. Geniohyoid muscle properties and myosin heavy chain composition are altered after short-term intermittent hypoxic exposure. J Appl Physiol. 98 (3), 889-894 (2005).
  8. Fuller, D. D., Fregosi, R. F. Fatiguing contractions of tongue protrudor and retractor muscles: influence of systemic hypoxia. J Appl Physiol. 88 (6), 2123-2130 (2000).
  9. Ray, A. D., Farkas, G. A., Pendergast, D. R. In-situ mechanical characteristics of the tongue are not altered in the obese Zucker rat. Sleep. 32 (7), 957 (2009).
  10. Brennick, M. J., et al. Tongue fat infiltration in obese versus lean Zucker rats. Sleep. 37 (6), 1095-1102 (2014).
  11. Stedman, H. H., Sweeney, H. L., Shrager, J. B., Maguire, H. C., Panettieri, R. A., Petrof, B., Narusawa, M., Leferovich, J. M., Sladky, J. T., Kelly, A. M. The mdx mouse diaphragm reproduces the degenerative changes of Duchenne muscular dystrophy. Nature. 352 (6335), 536-539 (1991).
  12. Goodpaster, B. H., Wolf, D. Skeletal muscle lipid accumulation in obesity, insulin resistance, and type 2 diabetes. Pediatr Diabetes. 5 (4), 219-226 (2004).
  13. Loro, E., et al. IL-15Rα is a determinant of muscle fuel utilization, and its loss protects against obesity. Am J Physiol Regul Integr Comp Physiol. 309 (8), R835-R844 (2015).
  14. Rahemi, H., Nigam, N., Wakeling, J. M. The effect of intramuscular fat on skeletal muscle mechanics: implications for the elderly and obese. J R Soc Interface. 12 (109), 20150365 (2015).
  15. Kim, A. M., et al. Tongue fat and its relationship to obstructive sleep apnea. Sleep. 37 (10), 1639-1648 (2014).
  16. Kim, A. M., et al. Metabolic activity of the tongue in obstructive sleep apnea. A novel application of FDG positron emission tomography imaging. Am J Respir Crit Care Med. 189 (11), 1416-1425 (2014).
  17. Gilliam, E. E., Goldberg, S. J. Contractile properties of the tongue muscles: effects of hypoglossal nerve and extracellular motoneuron stimulation in rat. J Neurophysiol. 74 (2), 547-555 (1995).
  18. Sokoloff, A. J. Localization and contractile properties of intrinsic longitudinal motor units of the rat tongue. J Neurophysiol. 84 (2), 827-835 (2000).
  19. Becker, B. J., Russell, J. A., Connor, N. P. Effects of aging on evoked retrusive tongue actions. Arch Oral Biol. 60 (6), 966-971 (2015).
  20. Connor, N. P., et al. Tongue muscle plasticity following hypoglossal nerve stimulation in aged rats. Muscle Nerve. 47 (2), 230-240 (2013).
  21. Seo, J., et al. Nerve cuff electrode using embedded magnets and its application to hypoglossal nerve stimulation. J Neural Eng. 13 (6), 066014 (2016).
  22. Friedman, M., et al. Targeted hypoglossal nerve stimulation for the treatment of obstructive sleep apnea: Six-month results. Laryngoscope. 126 (11), 2618-2623 (2016).
  23. Heiser, C., Maurer, J. T., Steffen, A. Functional outcome of tongue motions with selective hypoglossal nerve stimulation in patients with obstructive sleep apnea. Sleep Breath. 20 (2), 553-560 (2016).
  24. Syme, D. A. Passive viscoelastic work of isolated rat, Rattus norvegicus, diaphragm muscle. J Physiol. 424, 301-315 (1990).
  25. Connor, N. P., et al. Effect of tongue exercise on protrusive force and muscle fiber area in aging rats. J Speech Lang Hear Res. 52 (3), 732-744 (2009).
  26. Schaser, A. J., Stang, K., Connor, N. P., Behan, M. The effect of age and tongue exercise on BDNF and TrkB in the hypoglossal nucleus of rats. Behav Brain Res. 226 (1), 235-241 (2012).
  27. Puhan, M. A., et al. Didgeridoo playing as alternative treatment for obstructive sleep apnea syndrome: randomised controlled trial. BMJ. 332 (7536), 266-270 (2006).
  28. Guimarães, K. C., Drager, L. F., Genta, P. R., Marcondes, B. F., Lorenzi-Filho, G. Effects of oropharyngeal exercises on patients with moderate obstructive sleep apnea syndrome. Am J Respir Crit Care Med. 179 (10), 962-966 (2009).
  29. Ueda, H., Almeida, F. R., Chen, H., Lowe, A. A. Effect of 2 jaw exercises on occlusal function in patients with obstructive sleep apnea during oral appliance therapy: a randomized controlled trial. Am J Orthod Dentofacial Orthop. 135 (4), 430 (2009).
  30. Strollo, P. J., et al. Upper-airway stimulation for obstructive sleep apnea. N Engl J Med. 370 (2), 139-149 (2014).
  31. Perrier, P., Payan, Y., Zandipour, M., Perkell, J. Influences of tongue biomechanics on speech movements during the production of velar stop consonants: A modeling study. J Acoust Soc Am. 114 (3), 1582-1599 (2003).
  32. Connor, N. P., et al. Tongue muscle plasticity following hypoglossal nerve stimulation in aged rats. Muscle & nerve. 47 (2), 230-240 (2013).
  33. Brady, J. P., et al. AlphaB-crystallin in lens development and muscle integrity: a gene knockout approach. Invest Ophthalmol Vis Sci. 42 (12), 2924-2934 (2001).
  34. Spassov, A., et al. Differential expression of myosin heavy chain isoforms in the masticatory muscles of dystrophin-deficient mice. Eur J Orthod. , ciq113 (2010).
  35. Lever, T. E., et al. Videofluoroscopic Validation of a Translational Murine Model of Presbyphagia. Dysphagia. 30 (3), 328-342 (2015).
  36. Gantois, I., et al. Ablation of D1 dopamine receptor-expressing cells generates mice with seizures, dystonia, hyperactivity, and impaired oral behavior. Proc Natl Acad Sci. 104 (10), 4182-4187 (2007).
check_url/pt/56006?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Loro, E., Wang, S. H., Schwab, R. J., Khurana, T. S. In Vivo Evaluation of the Mechanical and Viscoelastic Properties of the Rat Tongue. J. Vis. Exp. (125), e56006, doi:10.3791/56006 (2017).

View Video