Summary

Isolierung-Protokoll der Maus Monocyte-abgeleitete Dendritische Zellen und ihre anschließende In-vitro- Aktivierung mit Tumor Immunkomplexe

Published: May 31, 2018
doi:

Summary

Monocyte abgeleitet DC (MoDC) spürt geringe Mengen an Gefahr-assoziierter Moleküle und sind daher leicht grundiert. Wir bieten ein detailliertes Protokoll für die Isolierung von MoDC aus Blut und Tumoren und ihre Aktivierung mit Immunkomplexen wobei wichtige Vorsichtsmaßnahmen, die berücksichtigt werden sollten, um ihre vorzeitige Aktivierung zu vermeiden.

Abstract

Dendritische Zellen (DC) sind heterogene Zell-Populationen, die sich in ihrer Zellmembran Marker, Migrationsmuster und Verteilung, und in ihrer Antigenpräsentation und T-Zell-Aktivierung-Kapazitäten zu unterscheiden. Da die meisten Impfungen der experimentellen Tumormodellen Millionen von DC benötigen, sind sie weitgehend isoliert aus dem Knochenmark oder Milz. Diese DC deutlich unterscheiden sich jedoch von Blut und Tumor DC in ihren Antworten zu Immunkomplexe (IC) und vermutlich andere Lektin Syk-gekoppelten Rezeptoren. Wichtig ist, angesichts der Sensibilität der DC in Gefahr-assoziierter Moleküle, das Vorhandensein von Endotoxinen oder Antikörper, die Crosslink-Aktivierung-Rezeptoren in der Isolierung eines Schritte könnte führen die Grundierung von DC und beeinträchtigen somit die Parameter oder zumindest die Dosierung, erforderlich, um sie zu aktivieren. Daher beschreiben wir hier ein detailliertes Protokoll zur Isolierung von MoDC aus Blut und Tumoren unter Vermeidung der vorzeitigen Aktivierungs. Darüber hinaus ist ein Protokoll für MoDC Aktivierung mit Tumor IC und ihre späteren Analysen bereitgestellt.

Introduction

Seit ihrer Entdeckung wurden die Dendritische Zellen (DC) ein Schwerpunkt der umfangreichen Forschung aufgrund ihrer einzigartigen Fähigkeit, T-Zell-Differenzierung1verzerren. In den letzten Jahrzehnten hat eine umfangreiche Forschungsarbeit versucht, die verschiedenen DC-Subsets und ihre Funktion während der Tumorprogression und Immunität 2definieren. DCs bestehen aus heterogenen Zell-Populationen, die in ihre Mustererkennung Rezeptoren, Gewebeverteilung, voneinander unterscheiden und wandernden und Antigen Präsentation Fähigkeiten3,4,5. Im Vergleich zu anderen DC-Teilmengen, Monocyte abgeleitet DC (MoDC) sind weit häufiger in Tumoren und können leicht von zirkulierenden erzeugt werden oder Tumor infiltrieren Monozyten6,7. Viele klinische Studien, die versuchen, ihre relative Prävalenz nutzen basieren daher auf in Vivo und ex Vivo Manipulation von autologen MoDC um T-Zell Immunität 8,9zu entlocken.

In ähnlicher Weise, DC-basierte Impfung von experimentellen Tumormodellen erfordert 2-3 serielle Injektionen, 5-7 Tage auseinander, von 1-2 x 106 aktivierte DC mit Tumorantigenen gepulst. Daher, um diese große Anzahl von DC zu erreichen, die meisten Studien an Mäusen haben in erster Linie verwendet MoDC kultiviert aus dem Knochenmark (BM) Vorstufen in GM-CSF für 7-9 Tage (IL-4 ist nicht erforderlich, in die Maus Einstellung)10,11. Dennoch hat angesichts dieser GM-CSF-Knockout Mäuse haben insgesamt normale DC Abteil 12,13, und die gemischte Bevölkerung aus dieser Kultur gewonnen14 die physiologische Relevanz dieser DC infrage gestellt worden.

Alternativ kann DC von milzzellen routinemäßig isoliert sein. DC umfassen jedoch nur etwa 0,3-0,8 % der gesamten milzzellen (was ca. 7 x 105 DC/Milz), und dieser Zellen, nur CD103+ DC und MoDC können zurück zu den lymphatischen Organen migrieren. Da MoDCs etwa 10-15 % der Milz DC Bevölkerung15,16 umfassen, liefern die meisten Isolierung Protokolle ca. 1 x 105 MoDC pro Milz. Ausbau der MoDC kann erreicht werden, durch die Injektion von transfizierten B16 Zellen, die GM-CSF, was zu einem 100-fold Anstieg in Milz MoDC17absondern. Die Verwendung von MoDC für die Entwicklung von DC Impfstoffe ist jedoch begrenzt, da dieses Verfahren bei Menschen und den erzielten erfolgen kann nicht MoDC sind bereits in hohem Maße aktiviert.

Eine weitere Herausforderung für die Entwicklung von effektiven DC Impfstoffe gegen autologe Krebszellen umfasst neben Erlangung ausreichender Anzahl der DC, den Mangel an ausreichend Gefahrensignale in der Tumor-Einstellung DC voll zu aktivieren. Induktion von co-stimulatory Signalen erfolgt in der Regel durch Aktivierung von Mustererkennung Rezeptoren (PRR), oder c-Art Lectin Signalisierung Wege18,19,20,21. Ein weiterer Ansatz zur Aktivierung DC nutzt ihre Fähigkeit zu nehmen Antigene durch Interaktionen mit Oberfläche Fcγ Rezeptoren (FcγR). In der Tat eine Reihe von wichtigen Handschriften haben gezeigt, dass die Injektion von MoDC aus BM Vorstufen aktiviert mit Tumor-IgG IC Tumorwachstum bei prophylaktischen Einstellungen verhindern können, und führt zur Beseitigung der etablierten Tumoren22,23 .

In zwei Publikationen entdeckt Carmi Et Al. , dass im Gegensatz zu BMDC und Milz DC, MoDC aus dem Blut und Tumoren auf IgG IC ohne zusätzliche Reize reagieren kann. Dies erwies sich durch die Anwesenheit der hohen intrazellulären Tyrosin-Phosphatasen Regulierung Signal24,25FcγR. Definieren Sie einen kritischen Kontrollpunkt in DC, versehen diese Arbeit einen wichtigen Einblick in die Anforderungen an erfolgreiche DC-basierte Impfung. Die Voraussetzung für zusätzliche Reize ermöglichen FcγR Signal- und vermutlich Signalisierung von anderen Lektin-Rezeptoren, die unter Verwendung einer ähnlichen Phosphorylierung Kaskade, unterstreicht damit die Notwendigkeit für die Grundierung von DC während ihrer Isolation zu vermeiden.

Daher dieses Protokoll beschreibt die Isolierung des MoDC von Blut und Tumoren, die sich deutlich von BM und Milz DC unterscheiden, und vorsorgenormen während des Prozesses eine Überlegung.

Protocol

Die folgenden Protokolle beziehen sich auf die Isolierung der Maus MoDC, noch für andere DC Teilmengen Zellen, sowie gelten die allgemeinen Grundsätze. 12 – 16 Wochen alten C57Bl/6j Mäuse wurden in ein American Association for Accreditation of Laboratory Animal Care – akkreditiert Tierhaus beibehalten. Alle Protokolle wurden von der Stanford University und Tel-Aviv Universität institutionelle Animal Care und Use Committee genehmigt. 1. Isolierung von Tumor verbundenen Monocyte abgeleitet D…

Representative Results

Zunächst verglichen wir die Kapazität von Antikörpern aus naiven Phänomen und allogene Mäuse an Tumorzellen binden. Zu diesem Zweck wurden B16F10 und LMP Tumorzelllinien an Paraformaldehyd fixiert und ausgiebig gewaschen. B16F10 ist ein Melanom-Zelllinie, die ursprünglich von Lungenmetastasen bei C57Bl/6 Mäusen isoliert war. LMP ist ein Pankreas-Tumor-Zelle, die aus KrasG12D isoliert wurde / + LSL-Trp53R172H / + und Pdx-1-Cre Mäuse und wächst stetig in 129F1 Mäuse. Um IC zu erha…

Discussion

Angesichts der großen Zahl von DC erforderlich für die Impfung Mäuse (ca. 2-4 x 106 DC pro Mausklick), die meisten von der Impfung Strategien bei Mäusen auf Isolierung der DC vom BM und Milz basieren, gefolgt von ihrer ex-Vivo -Aktivierung. Allerdings versucht, Tumor DC in Vivo, mit den gleichen Bedingungen zur Aktivierung der Milz und BM DC aktivieren, oft in der Herstellung von wirksamen Immunität unterlegen. In zwei weiteren Publikationen Carmi Et Al. habe festgestellt, dass …

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Keine

Materials

Ficoll-Paque PREMIUM GE-Healthcare 17-5442-02
OptiPrep StemCell Technologies 07820
CD45 MicroBeads Miltenyi 130-052-301
EasySep Monocyte Isolation Kit StemCell Technologies 19861
Collagenase IV Sigma C9697-50MG Test each lot for endotoxin
DNase I Sigma DN25-10MG
HBSS ThermoFisher 14025092
FBS ThermoFisher 16140071 Test each lot for endotoxin
PE-CD11c Biolegend 117307
APC-CD11b Biolegend 101211
Brilliant Violet 650 MHCII Biolegend 107641
AF48- CD86 Biolegend 105017
APC/Cy7-Ly-C6 Biolegend 108423
PE/Cy7-CD15 Biolegend 135523

Referências

  1. Steinman, R. M., Banchereau, J. Taking dendritic cells into medicine. Nature. 449 (7161), 419-426 (2007).
  2. Palucka, K., Banchereau, J. Dendritic-cell-based therapeutic cancer vaccines. Immunity. 39 (1), 38-48 (2013).
  3. Mildner, A., Jung, S. Development and function of dendritic cell subsets. Immunity. 40 (5), 642-656 (2014).
  4. Merad, M., Sathe, P., Helft, J., Miller, J., Mortha, A. The dendritic cell lineage: ontogeny and function of dendritic cells and their subsets in the steady state and the inflamed setting. Annual review of immunology. 31, 563-604 (2013).
  5. Guilliams, M., et al. Dendritic cells, monocytes and macrophages: a unified nomenclature based on ontogeny. Nature reviews. Immunology. 14 (8), 571-578 (2014).
  6. Spitzer, M. H., et al. Systemic Immunity Is Required for Effective Cancer Immunotherapy. Cell. 168 (3), 487-502 (2017).
  7. Guilliams, M., et al. Unsupervised High-Dimensional Analysis Aligns Dendritic Cells across Tissues and Species. Immunity. 45 (3), 669-684 (2016).
  8. Anguille, S., Smits, E. L., Lion, E., van Tendeloo, V. F., Berneman, Z. N. Clinical use of dendritic cells for cancer therapy. Lancet Oncol. 15 (7), e257-e267 (2014).
  9. Wimmers, F., Schreibelt, G., Skold, A. E., Figdor, C. G., De Vries, I. J. Paradigm Shift in Dendritic Cell-Based Immunotherapy: From in vitro Generated Monocyte-Derived DCs to Naturally Circulating DC Subsets. Front Immunol. 5, 165 (2014).
  10. Banchereau, J., Palucka, A. K. Dendritic cells as therapeutic vaccines against cancer. Nature reviews. Immunology. 5 (4), 296-306 (2005).
  11. Inaba, K., Swiggard, W. J., Steinman, R. M., Romani, N., Schuler, G. Isolation of dendritic cells. Curr Protoc Immunol. , (2001).
  12. Greter, M., et al. GM-CSF controls nonlymphoid tissue dendritic cell homeostasis but is dispensable for the differentiation of inflammatory dendritic cells. Immunity. 36 (6), 1031-1046 (2012).
  13. Vremec, D., et al. The influence of granulocyte/macrophage colony-stimulating factor on dendritic cell levels in mouse lymphoid organs. Eur J Immunol. 27 (1), 40-44 (1997).
  14. Helft, J., et al. GM-CSF Mouse Bone Marrow Cultures Comprise a Heterogeneous Population of CD11c(+)MHCII(+) Macrophages and Dendritic Cells. Immunity. 42 (6), 1197-1211 (2015).
  15. Dong, M. B., Rahman, M. J., Tarbell, K. V. Flow cytometric gating for spleen monocyte and DC subsets: differences in autoimmune NOD mice and with acute inflammation. J Immunol Methods. 432, 4-12 (2016).
  16. Drutman, S. B., Kendall, J. C., Trombetta, E. S. Inflammatory spleen monocytes can upregulate CD11c expression without converting into dendritic cells. J Immunol. 188 (8), 3603-3610 (2012).
  17. Hanada, K., Tsunoda, R., Hamada, H. GM-CSF-induced in vivo expansion of splenic dendritic cells and their strong costimulation activity. J Leukoc Biol. 60 (2), 181-190 (1996).
  18. Gilboa, E. DC-based cancer vaccines. J Clin Invest. 117 (5), 1195-1203 (2007).
  19. Melief, C. J., van der Burg, S. H. Immunotherapy of established (pre)malignant disease by synthetic long peptide vaccines. Nat Rev Cancer. 8 (5), 351-360 (2008).
  20. Palucka, K., Banchereau, J. Cancer immunotherapy via dendritic cells. Nat Rev Cancer. 12 (4), 265-277 (2012).
  21. Bol, K. F., Schreibelt, G., Gerritsen, W. R., de Vries, I. J., Figdor, C. G. Dendritic Cell-Based Immunotherapy: State of the Art and Beyond. Clin Cancer Res. 22 (8), 1897-1906 (2016).
  22. Rafiq, K., Bergtold, A., Clynes, R. Immune complex-mediated antigen presentation induces tumor immunity. J Clin Invest. 110 (1), 71-79 (2002).
  23. Schuurhuis, D. H., et al. Immune complex-loaded dendritic cells are superior to soluble immune complexes as antitumor vaccine. J Immunol. 176 (8), 4573-4580 (2006).
  24. Carmi, Y., et al. Allogeneic IgG combined with dendritic cell stimuli induce antitumour T-cell immunity. Nature. 521 (7550), 99-104 (2015).
  25. Carmi, Y., et al. Akt and SHP-1 are DC-intrinsic checkpoints for tumor immunity. JCI Insight. 1 (18), e89020 (2016).
  26. Kenkel, J. A., et al. An Immunosuppressive Dendritic Cell Subset Accumulates at Secondary Sites and Promotes Metastasis in Pancreatic Cancer. Cancer Res. 77 (15), 4158-4170 (2017).
  27. Salmon, H., et al. Expansion and Activation of CD103(+) Dendritic Cell Progenitors at the Tumor Site Enhances Tumor Responses to Therapeutic PD-L1 and BRAF Inhibition. Immunity. 44 (4), 924-938 (2016).
  28. Roslansky, P. F., Novitsky, T. J. Sensitivity of Limulus amebocyte lysate (LAL) to LAL-reactive glucans. J Clin Microbiol. 29 (11), 2477-2483 (1991).
  29. Jahr, H., Pfeiffer, G., Hering, B. J., Federlin, K., Bretzel, R. G. Endotoxin-mediated activation of cytokine production in human PBMCs by collagenase and Ficoll. J Mol Med (Berl). 77 (1), 118-120 (1999).
  30. Zhang, X., Morrison, D. C. Lipopolysaccharide-induced selective priming effects on tumor necrosis factor alpha and nitric oxide production in mouse peritoneal macrophages. J Exp Med. 177 (2), 511-516 (1993).
  31. Hirohashi, N., Morrison, D. C. Low-dose lipopolysaccharide (LPS) pretreatment of mouse macrophages modulates LPS-dependent interleukin-6 production in vitro. Infect Immun. 64 (3), 1011-1015 (1996).
  32. Deng, H., Maitra, U., Morris, M., Li, L. Molecular mechanism responsible for the priming of macrophage activation. J Biol Chem. 288 (6), 3897-3906 (2013).
  33. Cella, M., et al. A novel inhibitory receptor (ILT3) expressed on monocytes, macrophages, and dendritic cells involved in antigen processing. J Exp Med. 185 (10), 1743-1751 (1997).
  34. Kramer, P. R., Winger, V., Reuben, J. PI3K limits TNF-alpha production in CD16-activated monocytes. Eur J Immunol. 39 (2), 561-570 (2009).
  35. Rose, D. M., et al. Fc gamma receptor cross-linking activates p42, p38, and JNK/SAPK mitogen-activated protein kinases in murine macrophages: role for p42MAPK in Fc gamma receptor-stimulated TNF-alpha synthesis. J Immunol. 158 (7), 3433-3438 (1997).
  36. Rezzonico, R., Imbert, V., Chicheportiche, R., Dayer, J. M. Ligation of CD11b and CD11c beta(2) integrins by antibodies or soluble CD23 induces macrophage inflammatory protein 1alpha (MIP-1alpha) and MIP-1beta production in primary human monocytes through a pathway dependent on nuclear factor-kappaB. Blood. 97 (10), 2932-2940 (2001).
check_url/pt/57188?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Santana-Magal, N., Rasoulouniriana, D., Saperia, C., Gutwillig, A., Rider, P., Engleman, E. G., Carmi, Y. Isolation Protocol of Mouse Monocyte-derived Dendritic Cells and Their Subsequent In Vitro Activation with Tumor Immune Complexes. J. Vis. Exp. (135), e57188, doi:10.3791/57188 (2018).

View Video