Summary

Gen Expressionsanalyse von Endothelzellen ausgesetzt um Stress mit mehreren Parallel-Platte Fluss Kammern Scheren

Published: October 21, 2018
doi:

Summary

Hier ist ein Workflow für die Kultur und Gen Expressionsanalyse von Endothelzellen unter Fluid Schubspannung präsentiert. Enthalten ist eine räumliche Anordnung für die gleichzeitig Gehäuse und Überwachung mehrerer Fluss Kammern in einer kontrollierten Umgebung und die Verwendung einer exogenen Referenz-RNA für die quantitative PCR.

Abstract

Wir beschreiben einen Workflow für die Analyse der Genexpression von Endothelzellen unterliegen einem stetigen Laminar-Flow mit mehreren Kammern überwachten Parallel-Platte Fluss. Endothelzellen bilden die innere zelluläre Auskleidung der Blutgefäße und die Reibungskraft des Blutflusses genannt Schubspannung chronisch ausgesetzt sind. Unter physiologischen Bedingungen, Endothelzellen Funktion in Anwesenheit von verschiedenen Schubspannung Bedingungen. So kann die Anwendung der Schubspannung in in-vitro- Modelle einen tieferen Einblick in Endothelzellen Antworten in Vivobieten. Die Parallel-Platte Strömungsraum zuvor von Lane Et Al. veröffentlicht 9 ist an Endothelzellen Genregulation in an- und Abwesenheit des stetigen (nicht pulsierender) Laminar-Flow zu studieren. Wichtige Anpassungen im Setup für laminare Strömung wie hier dargestellt sind eine große, engagierte Umgebung Haus gleichzeitige Fluss Schaltungen, die Überwachung der Fördermengen in Echtzeit, und die Aufnahme einer exogenen Referenz RNA für die Normalisierung der quantitative Echtzeit-PCR-Daten. Um mehrere Behandlungen/Bedingungen mit der Anwendung der Schubspannung zu beurteilen, werden mehrere Flow Schaltungen und Pumpen gleichzeitig innerhalb der gleichen beheizt und befeuchteten Inkubator verwendet. Die Durchflussmenge des jede Strömung Schaltung misst kontinuierlich in Echtzeit Schubspannung Bedingungen während der Experimente zu standardisieren. Da diese Experimente mehrere Bedingungen haben, verwenden wir auch eine exogene Referenz-RNA, die versetzt-in zur Zeit der RNA-Extraktion für die Normalisierung der RNA-Extraktion und erste Strang cDNA Synthese Effizienz ist. Diese Schritte minimieren die Variabilität zwischen den Proben. Diese Strategie ist in unserer Pipeline für die Gen-Expression-Analyse mit Schubspannung Experimente mit Parallel-Platte Strömungsraum eingesetzt, aber Teile dieser Strategie, wie die exogene RNA-Spike-in verweisen, können einfach und kostengünstig für verwendet werden andere Anwendungen.

Introduction

Vaskuläre endotheliale Zellen bilden das zelluläre Innenfutter der Blutgefäße im geschlossenen Kreislauf der höheren Arten. Sie bilden die Schnittstelle zwischen Blut und Gewebe und zeichnen sich durch luminalen und abluminalen Oberflächen. Das Endothel ist eine vielfältige, aktive und adaptive System, die Durchblutung, Nährstoff Menschenhandel, Immunität und das Wachstum neuer Blutgefäße Schiffe1reguliert. Im Körper gibt es endotheliale Zellen normalerweise in einem Umfeld, wo sie die Reibungskraft der Zirkulation, Schubspannung2ausgesetzt sind. Scherspannung ist ein wichtiger Regulator der Endothelzellen Gen Ausdruck3, und Endothelzellen versuchen weiterhin Schubspannung innerhalb eines gegebenen Bereichs2,4. Endothelzellen zeigen angiogenen Musterung in Ermangelung der Schubspannung5 , die Gewebedurchblutung verbessern können. Regionale Muster der gestörten Strömung und veränderten Schubspannung sind der Ausdruck der entzündlichen Gene6 und die Entwicklung von Atherosklerose7,8zugeordnet. So sind Modelle, die Scherspannung enthalten ein Hauptbestandteil der endothelialen Genregulation zu verstehen.

Wir beschreiben eine Methode zur Untersuchung der Genregulation im vaskulären endothelialen Zellen unter Scherbelastung. Dieses System nutzt nicht pulsierende Strömung und imitiert Fluid Schubspannung Ebenen und Sauerstoffkonzentration, Modell Bedingungen für arterielle Endothelzellen. Dieses Protokoll enthält detaillierte Informationen zu Methoden für die Verwendung von RNA-Interferenz (RNAi), die Einstellung für die Anwendung der Schubspannung mit dem Parallel-Platte Fluss Apparate und Methoden für das Spike-in einer exogenen Referenz RNA vor der Analyse von Gen-knockdown Reverse-Transkriptase quantitative Polymerase-Kettenreaktion (RT-qPCR). Diese Pipeline dient zur Genregulation in Endothelzellen in an- und Abwesenheit von laminar Schubspannung zu studieren und beinhaltet eine Anpassung des Parallel-Platte Fluss Apparates von Lane Et Al. beschrieben 9. dieses bestimmten Set-up wurde entwickelt, um die gleichzeitige Bewertung von mehreren experimentellen Bedingungen zu ermöglichen, die Scherspannung Bedingungen im direkten Vergleich sowie die Normalisierung der RNA Analyse ermöglicht. Eine große beheizte Einheit mit kontrollierter Luftfeuchtigkeit wird genutzt, um mehrere separate Strömung Kammern und Pumpen mit Flussraten für jede Kammer fließmontage in Echtzeit überwacht gleichzeitig ausgeführt werden können. Die Anwendung dieses Set-up ist für gen-Knockdown mit RNAi in der Umgebung von Laminar-Flow/Scherbeanspruchung verwendet, sondern Aspekte dieses Protokolls auf die Beurteilung der RNA Ausdruck angewendet werden können.

Gemeinsame Konzepte für die Anwendung der Schubspannung für Endothelzellen gehören mikrofluidischen Systemen10, ein Kegel-Platte-Viskosimeter11und eine Parallel-Platte Fluss Kammer12. Mikrofluidischen Systemen verschiedener Hersteller wurden nützlich beim Studium von Mechanobiology und mechanotransduktion in mehrere Zell- und Gewebetypen und eine Vielzahl von biophysikalischen reizen. Für Endothelzellen wurden sie zur Endothelzellen in Isolierung sowie das Zusammenspiel von Endothelzellen und des Menschenhandels immun oder Tumor Zellen10zu studieren. Diese Systeme eignen sich jedoch weniger für die Wiederherstellung einer großen Zahl von Zellen9. Die Kegel-Platte-Viskosimeter und Parallel-Platte Fluss Kammern ermöglichen die Wiederherstellung einer großen Anzahl von Zellen in konfluierende Monolagen12. Diese Systeme können eine Reihe von scher Kräfte und Muster12erzeugen. Die Parallel-Platte Fluss Kammer Versammlung9 hat den Vorteil, dass Echtzeit-Bildgebung durch die Glasscheibe auszuwertende zellulären Morphologie zu jedem Zeitpunkt durchgeführt werden kann. Darüber hinaus kann die Perfusat unter sterilen Bedingungen gesammelt werden. Für das hier vorgestellte System kann die Strömung auch überwacht werden, in Echtzeit und in ein Mehrkammer-Setup, das erleichtert die Wartung der Scherung Bedingungen zwischen den Kammern.

Für repräsentative Experimente dienen der menschlichen nabelader Endothelzellen (HUVECS), die eine vaskuläre Endothelzellen Art darstellen, und die Schubspannung Bedingungen, die wir verwenden (1 Pa) arterielle Bedingungen zu reflektieren (0,1 – 0,7 Pa). Jedoch dieses Protokolls kann andere Endothelzellen verwendet werden, und die Schubspannung Bedingungen eingestellt werden, nach experimentellen Frage. Beispielsweise die Bewertung der menschlichen Endothelzellen unter Bedingungen, die venösen Kreislauf Modell müssten geringere Scherbeanspruchung (1-6 Pa) und Studien, die mikrovaskuläre Zirkulation Modell verwendet haben Schubspannung Ebenen von 0,4 – 1,2 Pa13 , 14. Darüber hinaus Scherspannung kann sogar zwischen endothelial Zellen innerhalb der gleichen Blutgefäß6variieren. In der aktuellen Konstellation wird ein einzelnes monitoring-System verwendet, das kann vier separate Strömung Schleifen gleichzeitig überwachen. Für Labors, die mehr Strömung Schleifen benötigen, gibt es Raum in den dedizierten Umgebung für eine zusätzliche monitoring-System.

RT-qPCR dient die absolute Quantifizierung der Genexpression in der Einstellung der Schubspannung. Der relativen Ausdruck Zielgene dient oft RNA Ausdruck über Bedingungen zu vergleichen. Einige RNA-Spezies können bei sehr geringen Mengen vorhanden sind oder fehlen, so komplizieren relative Messungen. Zum Beispiel können lange Forensisches RNAs in Endothelzellen potente Effekte bei relativ geringen Kopienzahl pro Zelle5ausüben. Darüber hinaus können Unterschiede in der Effizienz der Grundierung zu eine ungenaue Interpretation führen von der Verwendung der Delta-Delta Zyklus Schwelle (Ct) Methode zum Analysieren der Daten. Um dieses Problem zu beheben, führen wir absolute Quantifizierung durch die Erzeugung einer Standardkurve mit einer bekannten Menge von Plasmid DNA. Darüber hinaus ergänzende DNA (cDNA)-Synthese ist ein ineffizienter Prozess, und Unterschiede in der Effizienz der cDNA können Unterschiede in RNA Ausdruck zwischen Bedingungen und Proben15entfallen. Die Anwendung der Schubspannung und/oder Transfektion Reagenzien kann beeinflussen, Zellproliferation, Apoptose und Lebensfähigkeit oder Hinzufügen von Komponenten, die RNA-Isolierung und/oder cDNA Synthese stören können. Um die Möglichkeit der Voreingenommenheit von RNA Isolation und cDNA Synthese berücksichtigen, verwenden wir ein Spike RNA Eingabesteuerelement im Labor synthetisiert, zum Zeitpunkt der RNA-Extraktion hinzugefügt und mit jeder cDNA Synthese über RT-qPCR gemessen. Dies ermöglicht nicht nur die Anpassung technische Unterschiede in RNA-Extraktion und cDNA Synthese, sondern ermöglicht auch die Berechnung der absoluten Mengen pro Zelle, wenn die Zellzahl bekannt ist.

Dieses System nutzt zusätzliche Schritte zur Aufrechterhaltung der Ähnlichkeit oder technische Unterschiede zwischen Bedingungen entfallen. Wir betonen vor allem diese Schritte aufgrund der Komplexität dieser Experimente, die beinhalten mehrere physische Set-ups und experimentellen Bedingungen, die experimentelle Variabilität führen kann.

Protocol

1. Vorbereitung des exogenen Referenz RNA Hinweis: Wählen Sie eine exogene Referenz RNA, die nicht vorhanden ist in der Art oder des Modells von Interesse. Bei Säugetieren-Systemen kann Firefly Luciferase RNA verwendet werden. Linearisierung von exogenen Referenz RNA plasmid Bereiten Sie exogene Referenz RNA mindestens 48 Stunden vor der erwarteten RNA-Extraktion. Zu erhalten oder herstellen einen cDNA Klon der gewählten exogene Referenz RNA, wie ein Gl…

Representative Results

Erfolgreiche Linearisierung der Luciferase Plasmid mit Restriktionsenzymen verdaut Produkte auf einem Agarosegel (Abbildung 1) bestätigt. Die Größe des linearisierten Produktes bestätigte mit DNA-Leitern und durch Vergleich mit unbeschnittenen Plasmid. Wir haben den Parallel-Platte Fluss Kammer Aufbau von Lane Et Al. angepasst. 9 für Experimente, die mehrere Bed…

Discussion

Scherspannung ist eine physiologische Bedingung, die endotheliale Funktion teilweise moduliert durch Einwirkung auf stationären Gen Ausdruck2,5. Modelle der Genregulation in verschiedenen Schubspannung Bedingungen tragen zu einem besseren Verständnis der Endothelfunktion. Diese pragmatische Workflow umfasst eine Fluss-Schaltung mit einem Parallel-Platte Strömungsraum adaptiert von Lane Et al. 9 und stellt laminar, nicht pulsier…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Diese Arbeit wurde unterstützt durch CIHR MOP 142307, P.A.M. H.S.J.M. ist ein Empfänger einer kanadischen Institute der Gesundheit Forschung Ausbildung in der regenerativen Medizin Gemeinschaft. H.S.J.M., A.N.S., K.H.K. und M.K.D. sind Empfänger von Königin Elizabeth II Graduate Stipendien in der Wissenschaft und Technik.

Materials

0.05% Trypsin-EDTA gibco 25300-062
10 mL Syringe BD 302995
10 mm2 Culture Dish Sarstedt 83.3902
30 mL Syringe BD 302832
4-Way Stopcocks Discofix D500
Aluminum foil
BEACH Darwin Chambers Company MN: HO85, SN: 4947549
Cell Scrapers
CO2 Meter BioSphenix, Ltd. MN: P120, SN: 0342
CO2 Sensor BioSphenix, Ltd. MN: C700, SN: 52852
Distilled water gibco 15230-170
Dulbecco's phosphate-buffered saline (DPBS) -/- gibco 14190-144
Endothelial Cell Growth Medium 2 Promo Cell C-22011
Endothelial Cell Growth Medium 2 Supplement Mix Promo Cell C-39216
Fibronectin (pure) Sigma-Aldrich 11051407001
Filter (0.20 um) Sarstedt 83.1826.001
Flow Dampener and Cap U of T glass blowing shop
Flow Meter: 400 Series Console Transonic Scisense Inc. T402
Flow Meter: 400 Series Tubing Transonic Scisense Inc. TS410
Flow Reservoir and Cap U of T glass blowing shop
Flow Sensor Transonic Scisense Inc. ME4PXL
Isotemp 737F Oven Fisher Scientific FI-737F
J cloth J cloth
Microscope Slide (25 x 75 x 1 mm) Fisherfinest 12-544-4
Paper sterilization pouch Cardinal Health 92713
Pump (Masterflex L/S Economy Drive) Cole-Parmer 7554-90
Pump Head (Masterflex L/S Easy Load) Cole-Parmer 7518-00
Rectangular 4 Well Dish Thermo Scientific 267061
Tweezers
Name Company Catalog Number Comments
Tubing
Masterflex C-Flex L/S 25 Soft Tubing Cole-Parmer 06424-25
Masterflex C-Flex L/S 14 Soft Tubing Cole-Parmer 06424-14
Masterflex C-Flex L/S 16 Soft Tubing Cole-Parmer 06424-16
Masterflex PharMed BPT L/S 13 Hard Tubing Cole-Parmer 06508-13
Masterflex PharMed BPT L/S 14 Hard Tubing Cole-Parmer 06508-14
Name Company Catalog Number Comments
Luer
3/16" Male Luer Cole-Parmer 45518-08 For #25 tubing
1/8" Male Luer Cole-Parmer 30800-24 For #16 tubing
1/8" Female Luer Cole-Parmer 30800-08 For #16 tubing
1/16" Male Luer Cole-Parmer 45518-00 For #14 tubing
1/16" Female Luer Cole-Parmer 45508-00 For #14 tubing
Name Company Catalog Number Comments
Knockdown reagents
Oligofectamine Reagent Invitrogen 12252-011
Opti-MEM I Reduced Serum Medium gibco 31985-070
Name Company Catalog Number Comments
In vitro transcription
Generuler 1kb+ DNA ladder Thermo Scientific SM1331
MEGAclear Kit Ambion AM1908
mMESSSEGE mMACHINE SP6 Transcription Kit Ambion AM1340
pSP-luc+ Promega E4471
Supercoiled DNA Ladder New England BioLabs Inc. N0472S
UltraPure Agarose Invitrogen 16500-500
UltraPure Ethidium Bromide Invitrogen 15585011
XhoI Restriction Enzyme New England BioLabs Inc. R0146S
Name Company Catalog Number Comments
RNA extraction
Beta-mercaptoethanol Sigma M3148-100mL
RNeasy Mini Kit Qiagen 74104

Referências

  1. Aird, W. C. Endothelial cell heterogeneity. Cold Spring Harbor Perspectives in Medicine. 2 (1), (2012).
  2. Baeyens, N., Bandyopadhyay, C., Coon, B. G., Yun, S., Schwartz, M. A. Endothelial fluid shear stress sensing in vascular health and disease. Journal of Clinical Investigation. 126 (3), 821-828 (2016).
  3. Garcia-Cardena, G., Comander, J., Anderson, K. R., Blackman, B. R., Gimbrone, M. A. Biomechanical activation of vascular endothelium as a determinant of its functional phenotype. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 98 (8), 4478-4485 (2001).
  4. Cybulsky, M. I., Marsden, P. A. Effect of disturbed blood flow on endothelial cell gene expression: a role for changes in RNA processing. Arteriosclerosis, Thrombosis, and Vascular Biology. 34 (9), 1806-1808 (2014).
  5. Man, H. S. J., et al. Angiogenic patterning by STEEL, an endothelial-enriched long noncoding RNA. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 115 (10), 2401-2406 (2018).
  6. Won, D., et al. Relative reduction of endothelial nitric-oxide synthase expression and transcription in atherosclerosis-prone regions of the mouse aorta and in an in vitro model of disturbed flow. The American Journal of Pathology. 171 (5), 1691-1704 (2007).
  7. Baeyens, N., et al. Vascular remodeling is governed by a VEGFR3-dependent fluid shear stress set point. eLIFE. 4, 04645 (2015).
  8. Davies, P. F., Civelek, M., Fang, Y., Fleming, I. The atherosusceptible endothelium: endothelial phenotypes in complex haemodynamic shear stress regions in vivo. Cardiovascular Research. 99 (2), 315-327 (2013).
  9. Lane, W. O., et al. Parallel-plate flow chamber and continuous flow circuit to evaluate endothelial progenitor cells under laminar flow shear stress. Journal of Visualized Experiments. (59), 3349 (2012).
  10. Gray, K. M., Stroka, K. M. Vascular endothelial cell mechanosensing: New insights gained from biomimetic microfluidic models. Seminars in Cell and Developmental Biology. 71, 106-117 (2017).
  11. Bussolari, S. R., Dewey, C. F., Gimbrone, M. A. Apparatus for subjecting living cells to fluid shear stress. Review of Scientific Instruments. 53 (12), 1851-1854 (1982).
  12. Resnick, N., Gimbrone, M. A. Hemodynamic forces are complex regulators of endothelial gene expression. The FASEB Journal. 9 (10), 874-882 (1995).
  13. Malek, A. M., Alper, S. L., Izumo, S. Hemodynamic shear stress and its role in atherosclerosis. The Journal of the American Medical Association. 282 (21), 2035-2042 (1999).
  14. DeStefano, J. G., Xu, Z. S., Williams, A. J., Yimam, N., Searson, P. C. Effect of shear stress on iPSC-derived human brain microvascular endothelial cells (dhBMECs). Fluids and Barriers of the CNS. 14 (1), 20 (2017).
  15. Thormar, H. G., et al. Importance of the efficiency of double-stranded DNA formation in cDNA synthesis for the imprecision of microarray expression analysis. Clinical Chemistry. 59 (4), 667-674 (2013).
  16. Johnston, S., Gallaher, Z., Czaja, K. Exogenous reference gene normalization for real-time reverse transcription-polymerase chain reaction analysis under dynamic endogenous transcription. Neural Regenation Research. 7 (14), 1064-1072 (2012).
  17. Vaughan-Shaw, P. G., et al. A simple method to overcome the inhibitory effect of heparin on DNA amplification. Cellular Oncology (Dordrecht). 38 (6), 493-495 (2015).
  18. Collins, C., et al. Haemodynamic and extracellular matrix cues regulate the mechanical phenotype and stiffness of aortic endothelial cells. Nature Communications. 5, 3984 (2014).
  19. Fichtlscherer, S., et al. Circulating microRNAs in patients with coronary artery disease. Circulation Research. 107 (5), 677-684 (2010).
  20. Smith, R. D., Brown, B., Ikonomi, P., Schechter, A. N. Exogenous reference RNA for normalization of real-time quantitative PCR. Biotechniques. 34 (1), 88-91 (2003).
  21. Kohn, J. C., et al. Cooperative effects of matrix stiffness and fluid shear stress on endothelial cell behavior. Biophysical Journal. 108 (3), 471-478 (2015).

Play Video

Citar este artigo
Man, H. J., Sukumar, A. N., Ku, K. H., Dubinsky, M. K., Subramaniam, N., Marsden, P. A. Gene Expression Analysis of Endothelial Cells Exposed to Shear Stress Using Multiple Parallel-plate Flow Chambers. J. Vis. Exp. (140), e58478, doi:10.3791/58478 (2018).

View Video