قسطرة شريان عضدي في الخنازير
Summary
الفيديو يصف بالتفصيل قسطرة شريان عضدي البعيدة في الخنازير. هذا الإجراء بدقة التدابير ضغط الدم الشرياني وهي طريقة بسيطة وسريعة جمع عينات لقياس غازات الدم الشرياني.
Abstract
الفيديو يصف بالتفصيل قسطرة شريان عضدي البعيدة في الخنازير. هذا الأسلوب يتيح للباحثين قياس ضغط الدم الشرياني بشكل مستمر وجمع عينات الدم الشرياني لتقييم قياس غازات الدم الشرياني. الضغوط الدم الشرياني وغازات الدم الشرياني هي المعلمات الفسيولوجية الهامة لرصد خلال الإجراءات التجريبية. في الخنازير، وقد وصف أربعة طرق مشتركة لقسطرة الشرايين، بما في ذلك قسطرة الشرايين السباتي والفخذ وأذني والانسي الصافن. كل من هذه التقنيات من المزايا، مثل سهولة الوصول للشريان إذني، والعيوب التي تشمل تشريح الأنسجة العميقة لقسطرة الشريان السباتي. وصف الأسلوب البديل لقسطرة الشرايين في الخنازير، قسطرة الجانب القاصي من شريان عضدي، هو إجراء سريع يتطلب تشريح الأنسجة ضئيلة نسبيا ويوفر معلومات أن يتماشى مع البيانات جمعت من مواقع قسطرة الشرايين الأخرى. يستخدم الإجراء نهج وسطى على طول طائرة مائلة من براتشيوم السفلي، المتمركزة في الزجي بين الجانب المثنية الكوع، وهذا النهج يسمح للباحثين والميزة الرئيسية للحرية دون عائق للإجراءات التي تنطوي على كاودوفينترال، كاودودورسال مرة أخرى، أو أطرافهم هند من الخنزير. ونظرا لموقع فوريليمب العلوي من السفينة كاثيتيريزيد والتحديات المحتملة من التوازن الفعال بعد إزالة القسطرة من الشريان، قد تكون هذه التقنية المحدودة لإجراءات الاسترداد.
Introduction
يتم استخدام التدخل الجراحي في البحوث التجريبية لتطوير النماذج الحيوانية التي تعزز التنمية العلمية. المؤلفات العلمية مليء بأمثلة من الرواية نماذج الحيوان الجراحية1،،من23. العمليات الجراحية عملية معقدة تشمل ليس فقط التلاعب بالهياكل التشريحية ولكن أيضا التفاعلات الفسيولوجية المعقدة مع مختلف الأدوية اللازمة للتخدير والتسكين. وهذا التفاعل يمكن أن تحدث تغييرات كبيرة في العمليات الفسيولوجية داخل الحيوان وهذا يتطلب يقظة رصد الحيوان4. ارتبطت النتائج الجراحية الناجحة سريرياً بقياس غازات الدم الشرياني وضغوط الدم الشرياني5. وتتطلب هذه المعايير السريرية القدرة على قياس ضغط الدم الشرياني وجمع الدم الشرياني الفعال، الذي يتطلب بدوره قسطرة ناجحة الشريان6،7.
وقد استخدمت قسطرة الشرايين لجمع الدم الشرياني وقياس الضغط في مختلف الأنواع الحيوانية5،،من67،،من89،10، 11 , 12 , 13 , 14 , 15 , 16 , 17 , 18 , 19 , 20 , 21 وفي الحيوانات في إعمار مختلفة للتنمية19،،من2021 ، وقد وجهت في كلا الانتعاش إجراءات (السريرية والتشخيصية)4،5، 6،،من78 وعدم استرداد الإجراءات (تجريبية)14،15،16،17،18. وعلاوة على ذلك، سهولة الوصول إلى الشرايين وموقع الشريان في سياق العملية الجراحية هي أيضا من الاعتبارات الهامة عند اختيار شريان لقياسات الدم الشرياني. على سبيل المثال، الشريان والذيلية الوسيط في الكلاب والشريان الوجه في الخيول، فضلا عن الشريان دواسة في الكلاب والخيول، والمستخدمة لقياس التشخيص والرصد أثناء إجراءات الاسترداد6،7، 8-وفي المقابل، السباتي وشرايين الفخذ هي غالباً كاثيتيريزيد في الخنازير أما غير الانتعاش أو تجارب طويلة الأجل القسطرة غرس14،،من1518.
في الخنازير، استخدمت قسطرة الشرايين لقياس ضغط الدم الشرياني أما أو لجمع الدم الشرياني بشكل روتيني أما السباتي، الشرايين الصافن أو إذني فخذي، الآنسي22،23. لإجراءات روتينية غير متخصصة، سائر الشرايين أكثر غرابة قد استخدمت، بما في ذلك الشرايين subclavian وحرقفي، لقياس تورتوسيتي التشريحية شريان عضدي17 وصورة الشريان الاورطي16، على التوالي. بغض النظر عن التي يتم اختيارها الشريان لقسطرة، كل الشريان قد الملازمة لمزايا وعيوب لاستخدامها. على سبيل المثال، الشريان إذني تشريحيا سهلة للوصول إلى، ولكن استخدامها قد تكون محدودة لقربها من ال11،الأوردة الإذن الهامشية12. وبالمقارنة، هو الشريان السباتي كبيرة وقوية نسبيا24، ولكن تقع على عمق ثلم jugular ويتطلب تشريح الأنسجة الموضوعية25. على هذا النحو، تحديد آخر الشريان الذي يمكن أن كاثيتيريزيد لقياس الضغط الشرياني وجمع الدم الشرياني له ما يبرره. هذا الفيديو ومخطوطة تصف بالتفصيل قسطرة شريان عضدي البعيدة في الخنازير، أسلوب الذي يمكن تطبيقه على إجراءات الاسترداد. جدير بالذكر أن قسطرة شريان عضدي خنزير استخدمت لقياس ضغوط الدم الشرياني ومعلمات غاز الدم الشرياني أثناء عملية جراحية في العمود الفقري قطني مع قياسات أطرافهم هند (لم يتم تقديم البيانات من هذا الجزء من عملية جراحية).
Protocol
Representative Results
Discussion
قسطرة الشرايين لقياس ضغوط الدم الشرياني وجمع عينات الدم لقياس غازات الدم الشرياني قد أنشئت في طائفة واسعة من الأنواع الحيوانية5،،من67،8 , 9 , 10 , 11 , …
Declarações
The authors have nothing to disclose.
Acknowledgements
هذا العمل أيده المعاهد الكندية للبحوث الصحية، والمؤسسة الكندية لمنحه الابتكار إلى مشهور ك. ف. ألف وأيد توسي “فانييه كندا العليا منحة دراسية”، يبتكر ألبرتا-الصحة حلول سنهم الخريجين والملكة إليزابيث الثانية الدراسات العليا المنح الدراسية. ولنغتون موشاهوار هو “كرسي أبحاث كندا” في “استعادة الوظيفية”. نود أن نعترف السيد J. المكدس موس شارع الإنتاج لمساعدته مع الإنتاج السمعي وموظفي معهد البحوث الطبية الجراحية لمساعدتها مع الإجراءات.
Materials
| 0.9% NaCl (Saline) Solution | EMRN | JB1322P | 1 x1 liter bag |
| 10% Lidocaine spray | AstraZeneca | DIN:02039508 / 1 x 50 ml bottle | |
| 10% Povidone-Iodine scrub | Purdue Pharma | 521232 | 1 x 500 ml bottle |
| 20 ga 1-inch angiocatheter | Becton Dickinson | 381433 | 1 x angiocatheter |
| 2-0 polyglactin suture (Vicryl) | Ethicon | J339H | 2-0 vicryl / 1 packet of suture |
| 2-0 polypropylene suture (Prolene) | Ethicon | 8833H | 2-0 prolene / 1 packet of suture |
| 22 ga 1-inch angiocatheter | Becton Dickinson | 381423 | 1 x angiocatheter |
| 9 ID mm endotracheal tube | Jorvet | J0835P | 1 x endotracheal tube |
| Arterial blood pressure IV line | Argon Medical Devices | 112411 | 1 x arterial blood pressure IV line |
| Disposable drapes | Halyard Sales LLC | 89731 | 4-8 x disposable drapes |
| Glycopyrrolate hydrochloride | Sandoz | DIN:02039508 / 1 x 20ml vial | |
| Isoflurane | Abbott Animal Health | 05260-5 | 1 x 250ml bottle |
| Kelly forceps-curved (14cm) | Stevens | 162-7-38 | 8-10 instruments |
| Ketamine hydrochloride | Vetoquinol | DIN:02374994 / 1 x 10ml vial | |
| Lactated Ringer's Solution | Hospira | 0409-7953-09 | 4 x1 liter bag |
| Metzenbaum scissors | Fine Science | 14518-18 | |
| Miller laryngoscope blade | Welch Allyn | 68044 | 182 mm length / 1 instrument |
| Nasal temperature probe | Surgivet | V3417 | 1 probe |
| Needle Drivers | Stevens | 162-V98-42 | 2 instruments |
| Q tip applicators | Fisher Scientific | 22-037-960 | 20-40 app |
| Remifentanil hydrochloride | TEVA | DIN:0234432 / 1 mg vial | |
| Surgivet advisor: Vital signs monitor | Surgivet | V9203 | 1 monitor |
| Weitlaner retractor | Stevens | 162-11-602 | 2 retractors |
| Xylazine hydrochloride | Bayer | DIN:02169606 1 x 50ml bottle |
Referências
- Uwiera, R. R., et al. Plasmid DNA induces increased lymphocyte trafficking: a specific role for CpG motifs. Cellular Immunology. 214 (2), 155-164 (2001).
- Uwiera, R. R., Kastelic, J. P., Inglis, G. D. Catheterization of intestinal loops in ruminants. Journal of Visualized Experiments. (28), (2009).
- Uwiera, R. R., Mangat, R., Kelly, S., Uwiera, T. C., Proctor, S. D. Long-Term Catheterization of the Intestinal Lymph Trunk and Collection of Lymph in Neonatal Pigs. Journal of Visualized Experiments. (109), (2016).
- Wohlfender, D. H., et al. International online survey to assess current practice in equine anaesthesia. Equine Veterinary Journal. 47, 65-71 (2015).
- Dugdale, A. H., Taylor, P. M. Equine anaesthesia-associated mortality: where are we now?. Veterinay Anaesthesia Analgesia. 43 (3), 242-255 (2016).
- McGrotty, Y., Brown, A. Blood gases, electrolytes and interpretation 1. Blood gases. In Practice. 35 (2), 59-65 (2013).
- Taylor, P. M. Techniques and clinical application of arterial blood pressure measurement in the horse. Equine Veterinary Journal. 13, 271-275 (1981).
- Trim, C. M., Hofmeister, E. H., Quandt, J. E., Shepard, M. K. A survey of the use of arterial catheters in anesthetized dogs and cats: 267 cases. Journal of Veterinary Emergency and Critical. 27, 89-95 (2017).
- Komine, H., Matsukawa, K., Tsuchimochi, H., Nakamoto, T., Murata, J. Sympathetic cholinergic nerve contributes to increased muscle blood flow at the onset of voluntary static exercise in conscious cats. American Journal of Physiology – Regulatory, Integrative and Comparative Physiology. 295 (4), R1251-R1262 (2008).
- Krista, L. M., Beckett, S. D., Branch, C. E., McDaniel, G. R., Patterson, R. M. Cardiovascular Responses in Turkeys as Affected by Diurnal Variation and Stressor. Poultry Science. (60), 462-468 (1981).
- Bass, L. M., Yu, D. Y., Cullen, L. K. Comparison of femoral and auricular arterial blood pressure monitoring in pigs. Veterinay Anaesthesia Analgesia. 36 (5), 457-463 (2009).
- Karnabatidis, D., Katsanos, K., Diamantopoulous, A., Kagadis, G. C., Siablis, D. Transauricular arterial or venous access for cardiovascular experimental protocols in animals. Journal of Vascular and Interventional Radiology. 17 (11 Pt 1), 1803-1811 (2006).
- Namba, K., Kawamura, Y., Higaki, A., Nemoto, S. Percutaneous medial saphenous artery approach for Swine central artery access. Journal of Investigative Surgery. 26 (6), 360-363 (2013).
- Hong, Y., et al. Feasibility of Selective Catheter-Directed Coronary Computed Tomography Angiography Using Ultralow-Dose Intracoronary Contrast Injection in a Swine Model. Investigative Radiology. (50), 449-455 (2015).
- Kumar, A., et al. Aortic root catheter-directed coronary CT angiography in swine: coronary enhancement with minimum volume of iodinated contrast material. American Journal of Roentgenology. (188), W415-W422 (2007).
- Park, J. H., et al. Safety and Efficacy of an Aortic Arch Stent Graft with Window-Shaped Fenestration for Supra-Aortic Arch Vessels: an Experimental Study in Swine. Korean Circulation Journal. 47 (2), 215-221 (2017).
- Carniato, S., Mehra, M., King, R. M., Wakhloo, A. K., Gounis, M. J. Porcine brachial artery tortuosity for in vivo evaluation of neuroendovascular devices. American Journal of Neuroradiology. 34 (4), E36-E38 (2013).
- Hannon, J. P., Bossone, C. A., Wade, C. E. Normal Physiological Values for Consious pigs used in Biomedical Research. Laboratory Animal Science. 40, 293-298 (1990).
- Nijland, M. J., Shankar, U., Iyer, V., Ross, M. G. Assessment of fetal scalp oxygen saturation determination in the sheep by transmission pulse oximetry. American Journal of Obstetrics and Gynecology. 183 (6), 1549-1553 (2000).
- Yawno, T., et al. Human Amnion Epithelial Cells Protect Against White Matter Brain Injury After Repeated Endotoxin Exposure in the Preterm Ovine Fetus. Cell Transplantation. 26 (4), 541-553 (2017).
- Amaya, K. E., et al. Accelerated acidosis in response to variable fetal heart rate decelerations in chronically hypoxic ovine fetuses. American Journal of Obstetrics and Gynecology. 214 (2), e270-e271 (2016).
- Malavasi, L. M. . Swine. Anesthesia and Analgesia for Domestic Species. , (2015).
- Moon, P. F., Smith, L. J. General Anesthetic Techniques in Swine. Veterinary Clinics of North America: Food Animal Practice. 12 (3), 663-691 (1996).
- Caramoni, P. R. A., et al. Postangioplasty restenosis: a practical model in the porcine carotid artery. Brazilian Journal of Medical and Biological Research. (30), 1087-1091 (1997).
- Sisson, S. . The Anatomy of the Domestic Animals. , 636-638 (1930).
- Lundeed, A. B., Manohar, M., Parks, C. Systemic distribution of blood flow in swine while awake and during 1.0 and 1.5 MAC isoflurane anesthesia with or without 50% nitrous oxide. Anesthesia and Analgesia. 31, 499-512 (1983).
- Sisson, S. . The Anatomy of the Domestic Animals. , 302-304 (1930).
- Adin, C. A., Gregory, C. R., Adin, D. B., Cowgill, L. D., Kyles, A. E. Evaluation of three peripheral arteriovenous fistulas for hemodialysis access in dogs. Veterinary Surgery. 31 (5), 405-411 (2002).
- Gladczak, A. K., Shires, P. K., Stevens, K. A., Clymer, J. W. Comparison of indirect and direct blood pressure monitoring in normotensive swine. Research in Veterinary Science. 95 (2), 699-702 (2013).
- Wenzel, K., et al. Survey of Effects of Anesthesia Protocols on Hemodynamic Variables in Porcine Cardiopulmonary Resuscitation Laboratory Models Before Induction of Cardiac Arrest. Comparative Medicine. 50 (6), 644-648 (2000).
- Duval, J. D., Pang, J. M., Boysen, S. R., Caulkett, N. A. Cardiopulmonary Effects of a Partial Intravenous Anesthesia Technique for Laboratory Swine. Journal of the American Association for Laboratory Animal Science. 57 (4), 376-381 (2018).
- Friendship, R. M., Lumsden, J. H., McMillan, I., Wilson, M. R. Hematology and Biochemistry Reference Values for Ontario Swine. Canadian Journal of Comparative Medicine. (48), 390-393 (1984).
- Kiorpes, A. L., MacWilliams, P. S., Schenkman, D. I., Bickstrom, L. R. Blood Gas and Hematological Changes in Experimental Peracute Porcine Pleuropneumonia. Canadian Journal of Veterinary Research. (54), 164-169 (1990).
- Klem, T. B., Bleken, E., Morberg, H., Thoresen, S. I., Framstad, T. Hematologic and biochemical reference intervals for Norwegian crossbreed grower pigs. Veterinary Clinical Pathology. 39 (2), 221-226 (2010).
- Sisson, S. . The Anatomy of the Domestic Animals. , 804-810 (1930).
- Lopes-Berkas, V. C., Jorgenso, M. A. Measurement of Peripheral Arterial Vasculature in Domestic Yorkshire Swine by Using Quantitative Vascular Angiograph. Journal of the American Association for Laboratory Animal Science. 50 (5), 628-634 (2011).
- Geary, R. L., et al. Wound healing: A paradigm for lumen narrowing after arterial reconstruction. Journal of Vascular Surgery. (27), 96-108 (1998).
