Summary

Brachialis slagader Catheterization in varkens

Published: March 30, 2019
doi:

Summary

De video beschrijft in detail de catheterisatie van de distale brachialis slagader in varkens. Deze procedure nauwkeurig meet arteriële bloeddruk en is een eenvoudige en snelle methode voor het verzamelen van monsters voor arteriële bloed gas metingen.

Abstract

De video beschrijft in detail de catheterisatie van de distale brachialis slagader in varkens. Deze techniek kan onderzoekers arteriële bloeddruk continu meten en verzamelen van arteriële bloedmonsters om te beoordelen van arteriële bloed gas metingen. Arterieel bloed druk en arteriële bloed gassen zijn belangrijke fysiologische parameters te controleren tijdens de experimentele procedures. In varkens, zijn vier veelgebruikte methoden van arteriële catheterisatie beschreven, met inbegrip van catheterisatie van de carotis, femorale auricular en mediale saphenous slagaders. Elk van deze technieken hebben voordelen, zoals gemak van toegang voor de auricular slagader en nadelen die diepe weefsel dissectie voor halsslagader catheterisatie bevatten. De beschreven alternatieve methode van arteriële catheterisatie in varkens, de catheterisatie van de distale aspect van de brachialis slagader, bestaat er een snelle procedure vereist relatief minimale weefsel dissectie en informatie die is in overeenstemming met de gegevens verzameld van andere sites arteriële catheterisatie. De procedure wordt een mediale aanpak langs een schuin vlak voor de lagere brachium, gepositioneerd tussen de olecranon en de musculus flexor aspect van het ellebooggewricht, en deze benadering biedt onderzoekers het grote voordeel van biedt voor een volstrekte vrijheid voor procedures die betrekking hebben op de caudoventral, caudodorsal achterzijde of hind ledematen van het varken. Dankzij de ligging van de bovenste voorpoot van het catheterized schip en potentiële uitdagingen van effectieve homeostase na verwijderen van de katheter uit de ader, kan deze techniek worden beperkt tot niet-invordering procedures.

Introduction

Chirurgische ingreep wordt gebruikt in experimenteel onderzoek voor de ontwikkeling van diermodellen die verbeteren van wetenschappelijke ontwikkeling. De wetenschappelijke literatuur is gevuld met voorbeelden van roman chirurgische diermodellen1,2,3. Chirurgische ingrepen zijn een complex proces waarbij niet alleen de manipulatie van anatomische structuren maar ook ingewikkelde fysiologische interacties met verschillende drugs vereist voor anesthesie en analgesie. Deze wisselwerking kan leiden tot grote veranderingen in de fysiologische processen binnen het dier en als zodanig vereist waakzaam toezicht van de dierlijke4. Klinisch succesvolle chirurgische resultaten zijn geassocieerd met metingen van arteriële bloed gassen en arteriële bloed druk5. Deze klinische parameters vereist de mogelijkheid om arteriële bloeddruk meten en verzamelen van arteriële bloed effectief, die op haar beurt de succesvolle catheterisatie van een slagader6,7 vereist.

Arteriële catheterisatie verzamelen van arteriële bloed te meten druk is gebruikt in diverse diersoorten5,6,7,8,9,10, 11 , 12 , 13 , 14 , 15 , 16 , 17 , 18 , 19 , 20 , 21 en dieren op verschillende leeftijden van ontwikkeling19,20,21 en is gericht op zowel herstel (klinische en diagnostische) procedures4,5, 6,7,8 en niet-invordering (experimenteel) procedures14,15,16,17,18. Bovendien, het gemak van arteriële toegang en de locatie van de slagader in de context van de chirurgische ingreep zijn ook belangrijke overwegingen bij het kiezen van een slagader voor arteriële bloed metingen. Bijvoorbeeld, de mediane caudal slagader bij honden en het gezicht slagader in paarden, evenals de pedaal slagader bij zowel honden en paarden, worden gebruikt voor diagnostische meting en controle tijdens herstel procedures6,7, 8. daarentegen de halsslagader en de femorale slagaders zijn vaak catheterized in varkens hetzij teruggevorderd of langdurige katheter implantatie experimenten14,15,18.

In varkens, heeft arteriële catheterisatie te meten of arteriële bloeddruk of arteriële bloed te verzamelen regelmatig werkzaam ofwel de halsslagader, femur, mediale saphenous, of auricular slagaders22,23. Voor gespecialiseerde niet-routinematige procedures, zijn andere meer ongewone slagaders gebruikt, met inbegrip van de subclavian en iliacale slagaders, voor het meten van de arteria brachialis anatomische tortuosity17 en beeld van de aorta16, respectievelijk. Ongeacht welke slagader wordt gekozen voor catheterisatie, elke slagader heeft inherente voordelen en nadelen voor het gebruik ervan. Bijvoorbeeld, de auricular slagader is anatomisch gemakkelijk te bereiken, maar het gebruik ervan kan worden beperkt tot de directe nabijheid van de marginale oor aderen11,12. Ter vergelijking: de halsslagader is relatief groot en robuuste24, maar het ligt diep in de jugular furrow en inhoudelijke weefsel dissectie25vereist. Als zodanig is het identificeren van een andere slagader die kon worden catheterized om te meten van de arteriële druk en verzamelen van arteriële bloed is gerechtvaardigd. Deze video en manuscript beschrijven in detail de catheterisatie van de distale brachialis slagader in varkens, een techniek die kan worden toegepast op niet-terugvorderingsprocedures. Met name werd het varken brachialis slagader catheterisatie gebruikt als eenheid van arteriële bloed druk en arteriële bloedparameters gas tijdens een operatie van de lumbale wervelkolom met hind-limb metingen (de gegevens uit dit deel van de operatie is niet ingediend).

Protocol

Alle procedures op proefdieren beschreven in zowel de video als het manuscript werden goedgekeurd door de institutionele Animal Care en gebruik van het Comité van de Universiteit van Alberta 1. de chirurgische anesthesie en de chirurgische bereiding van de varkens. Premedicate 50 kg landras-Yorkshire commerciële varkens intramuscularly met de verdoving drug cocktail met ketamine hydrochloride (22 mg/kg,), xylazine hydrochloride (2,2 mg/kg) en glycopyrrolaat waterstofchloride (10 µ…

Representative Results

Brachialis slagader catheterisatie zorgt voor continue bewaking van de arteriële bloeddruk en intermitterende monsterneming van arteriële bloed tijdens uitgebreide chirurgische procedures in varkens. Gemeten parameters werden verzameld uit zeven 50 kg landras-Yorkshire commerciële varkens zoals beschreven. De totale benodigde tijd voor het catheterize van de brachialis slagader was 35.2 ± 4.4 min vanaf de eerste slagader-landmarking tot sluiting van de definitieve chirurgische insnijd…

Discussion

Arteriële catheterisatie voor het meten van de arteriële druk van het bloed en verzamelen van bloedmonsters voor arteriële bloed gas metingen is gevestigd in een groot aantal diersoorten5,,6,,7,8 , 9 , 10 , 11 , 12 , 13

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dit werk werd gesteund door de Canadese instituten van gezondheidsonderzoek en de Stichting van Canada voor de toekenning van de innovatie aan V. K. Mushahwar. A. Toossi werd gesteund door een Vanier Canada Graduate beurs, Alberta innoveert – gezondheid oplossingen Graduate studententijd en een Graduate beurs van koningin Elizabeth II. VK Mushahwar is een Canada Research Chair in functionele herstel. Wij willen erkennen van Mr. J. Stack van Moss Street Productions voor zijn hulp met de audioproductie en medewerkers van het chirurgische Medical Research Institute voor hun hulp bij de procedures.

Materials

0.9% NaCl (Saline) Solution EMRN JB1322P 1 x1 liter bag
10% Lidocaine spray AstraZeneca DIN:02039508 / 1 x  50 ml  bottle
10% Povidone-Iodine scrub Purdue Pharma 521232 1 x 500 ml bottle 
20 ga 1-inch angiocatheter Becton Dickinson 381433 1 x angiocatheter
2-0 polyglactin suture (Vicryl) Ethicon J339H 2-0 vicryl / 1 packet of suture
2-0 polypropylene suture (Prolene)  Ethicon 8833H 2-0 prolene / 1 packet of suture
22 ga 1-inch angiocatheter Becton Dickinson 381423 1 x angiocatheter
9 ID mm endotracheal tube Jorvet J0835P 1 x endotracheal tube
Arterial blood pressure IV line Argon Medical Devices 112411 1 x arterial blood pressure IV line
Disposable drapes Halyard Sales LLC 89731 4-8 x disposable drapes 
Glycopyrrolate hydrochloride  Sandoz DIN:02039508 / 1 x 20ml vial
Isoflurane Abbott Animal  Health 05260-5 1 x 250ml bottle
Kelly forceps-curved (14cm) Stevens 162-7-38 8-10  instruments
Ketamine hydrochloride Vetoquinol DIN:02374994 / 1 x 10ml vial
Lactated Ringer's Solution Hospira 0409-7953-09 4 x1 liter bag
Metzenbaum scissors Fine Science 14518-18
Miller laryngoscope blade Welch Allyn 68044 182 mm length  / 1 instrument
Nasal temperature probe Surgivet V3417 1 probe
Needle Drivers Stevens 162-V98-42 2 instruments
Q tip applicators Fisher Scientific 22-037-960 20-40  app
Remifentanil hydrochloride TEVA DIN:0234432 / 1 mg vial
Surgivet advisor: Vital signs monitor Surgivet V9203 1 monitor
Weitlaner retractor Stevens 162-11-602  2 retractors
Xylazine hydrochloride Bayer DIN:02169606 1 x 50ml bottle

Referências

  1. Uwiera, R. R., et al. Plasmid DNA induces increased lymphocyte trafficking: a specific role for CpG motifs. Cellular Immunology. 214 (2), 155-164 (2001).
  2. Uwiera, R. R., Kastelic, J. P., Inglis, G. D. Catheterization of intestinal loops in ruminants. Journal of Visualized Experiments. (28), (2009).
  3. Uwiera, R. R., Mangat, R., Kelly, S., Uwiera, T. C., Proctor, S. D. Long-Term Catheterization of the Intestinal Lymph Trunk and Collection of Lymph in Neonatal Pigs. Journal of Visualized Experiments. (109), (2016).
  4. Wohlfender, D. H., et al. International online survey to assess current practice in equine anaesthesia. Equine Veterinary Journal. 47, 65-71 (2015).
  5. Dugdale, A. H., Taylor, P. M. Equine anaesthesia-associated mortality: where are we now?. Veterinay Anaesthesia Analgesia. 43 (3), 242-255 (2016).
  6. McGrotty, Y., Brown, A. Blood gases, electrolytes and interpretation 1. Blood gases. In Practice. 35 (2), 59-65 (2013).
  7. Taylor, P. M. Techniques and clinical application of arterial blood pressure measurement in the horse. Equine Veterinary Journal. 13, 271-275 (1981).
  8. Trim, C. M., Hofmeister, E. H., Quandt, J. E., Shepard, M. K. A survey of the use of arterial catheters in anesthetized dogs and cats: 267 cases. Journal of Veterinary Emergency and Critical. 27, 89-95 (2017).
  9. Komine, H., Matsukawa, K., Tsuchimochi, H., Nakamoto, T., Murata, J. Sympathetic cholinergic nerve contributes to increased muscle blood flow at the onset of voluntary static exercise in conscious cats. American Journal of Physiology – Regulatory, Integrative and Comparative Physiology. 295 (4), R1251-R1262 (2008).
  10. Krista, L. M., Beckett, S. D., Branch, C. E., McDaniel, G. R., Patterson, R. M. Cardiovascular Responses in Turkeys as Affected by Diurnal Variation and Stressor. Poultry Science. (60), 462-468 (1981).
  11. Bass, L. M., Yu, D. Y., Cullen, L. K. Comparison of femoral and auricular arterial blood pressure monitoring in pigs. Veterinay Anaesthesia Analgesia. 36 (5), 457-463 (2009).
  12. Karnabatidis, D., Katsanos, K., Diamantopoulous, A., Kagadis, G. C., Siablis, D. Transauricular arterial or venous access for cardiovascular experimental protocols in animals. Journal of Vascular and Interventional Radiology. 17 (11 Pt 1), 1803-1811 (2006).
  13. Namba, K., Kawamura, Y., Higaki, A., Nemoto, S. Percutaneous medial saphenous artery approach for Swine central artery access. Journal of Investigative Surgery. 26 (6), 360-363 (2013).
  14. Hong, Y., et al. Feasibility of Selective Catheter-Directed Coronary Computed Tomography Angiography Using Ultralow-Dose Intracoronary Contrast Injection in a Swine Model. Investigative Radiology. (50), 449-455 (2015).
  15. Kumar, A., et al. Aortic root catheter-directed coronary CT angiography in swine: coronary enhancement with minimum volume of iodinated contrast material. American Journal of Roentgenology. (188), W415-W422 (2007).
  16. Park, J. H., et al. Safety and Efficacy of an Aortic Arch Stent Graft with Window-Shaped Fenestration for Supra-Aortic Arch Vessels: an Experimental Study in Swine. Korean Circulation Journal. 47 (2), 215-221 (2017).
  17. Carniato, S., Mehra, M., King, R. M., Wakhloo, A. K., Gounis, M. J. Porcine brachial artery tortuosity for in vivo evaluation of neuroendovascular devices. American Journal of Neuroradiology. 34 (4), E36-E38 (2013).
  18. Hannon, J. P., Bossone, C. A., Wade, C. E. Normal Physiological Values for Consious pigs used in Biomedical Research. Laboratory Animal Science. 40, 293-298 (1990).
  19. Nijland, M. J., Shankar, U., Iyer, V., Ross, M. G. Assessment of fetal scalp oxygen saturation determination in the sheep by transmission pulse oximetry. American Journal of Obstetrics and Gynecology. 183 (6), 1549-1553 (2000).
  20. Yawno, T., et al. Human Amnion Epithelial Cells Protect Against White Matter Brain Injury After Repeated Endotoxin Exposure in the Preterm Ovine Fetus. Cell Transplantation. 26 (4), 541-553 (2017).
  21. Amaya, K. E., et al. Accelerated acidosis in response to variable fetal heart rate decelerations in chronically hypoxic ovine fetuses. American Journal of Obstetrics and Gynecology. 214 (2), e270-e271 (2016).
  22. Malavasi, L. M. . Swine. Anesthesia and Analgesia for Domestic Species. , (2015).
  23. Moon, P. F., Smith, L. J. General Anesthetic Techniques in Swine. Veterinary Clinics of North America: Food Animal Practice. 12 (3), 663-691 (1996).
  24. Caramoni, P. R. A., et al. Postangioplasty restenosis: a practical model in the porcine carotid artery. Brazilian Journal of Medical and Biological Research. (30), 1087-1091 (1997).
  25. Sisson, S. . The Anatomy of the Domestic Animals. , 636-638 (1930).
  26. Lundeed, A. B., Manohar, M., Parks, C. Systemic distribution of blood flow in swine while awake and during 1.0 and 1.5 MAC isoflurane anesthesia with or without 50% nitrous oxide. Anesthesia and Analgesia. 31, 499-512 (1983).
  27. Sisson, S. . The Anatomy of the Domestic Animals. , 302-304 (1930).
  28. Adin, C. A., Gregory, C. R., Adin, D. B., Cowgill, L. D., Kyles, A. E. Evaluation of three peripheral arteriovenous fistulas for hemodialysis access in dogs. Veterinary Surgery. 31 (5), 405-411 (2002).
  29. Gladczak, A. K., Shires, P. K., Stevens, K. A., Clymer, J. W. Comparison of indirect and direct blood pressure monitoring in normotensive swine. Research in Veterinary Science. 95 (2), 699-702 (2013).
  30. Wenzel, K., et al. Survey of Effects of Anesthesia Protocols on Hemodynamic Variables in Porcine Cardiopulmonary Resuscitation Laboratory Models Before Induction of Cardiac Arrest. Comparative Medicine. 50 (6), 644-648 (2000).
  31. Duval, J. D., Pang, J. M., Boysen, S. R., Caulkett, N. A. Cardiopulmonary Effects of a Partial Intravenous Anesthesia Technique for Laboratory Swine. Journal of the American Association for Laboratory Animal Science. 57 (4), 376-381 (2018).
  32. Friendship, R. M., Lumsden, J. H., McMillan, I., Wilson, M. R. Hematology and Biochemistry Reference Values for Ontario Swine. Canadian Journal of Comparative Medicine. (48), 390-393 (1984).
  33. Kiorpes, A. L., MacWilliams, P. S., Schenkman, D. I., Bickstrom, L. R. Blood Gas and Hematological Changes in Experimental Peracute Porcine Pleuropneumonia. Canadian Journal of Veterinary Research. (54), 164-169 (1990).
  34. Klem, T. B., Bleken, E., Morberg, H., Thoresen, S. I., Framstad, T. Hematologic and biochemical reference intervals for Norwegian crossbreed grower pigs. Veterinary Clinical Pathology. 39 (2), 221-226 (2010).
  35. Sisson, S. . The Anatomy of the Domestic Animals. , 804-810 (1930).
  36. Lopes-Berkas, V. C., Jorgenso, M. A. Measurement of Peripheral Arterial Vasculature in Domestic Yorkshire Swine by Using Quantitative Vascular Angiograph. Journal of the American Association for Laboratory Animal Science. 50 (5), 628-634 (2011).
  37. Geary, R. L., et al. Wound healing: A paradigm for lumen narrowing after arterial reconstruction. Journal of Vascular Surgery. (27), 96-108 (1998).

Play Video

Citar este artigo
Uwiera, R. R., Toossi, A., Everaert, D. G., Uwiera, T. C., Mushahwar, V. K. Brachial Artery Catheterization in Swine. J. Vis. Exp. (145), e59365, doi:10.3791/59365 (2019).

View Video