Denne fraksjoneringsprotokollen vil tillate forskere å isolere cytoplasmatiske, kjernefysiske, mitokondrielle og membranproteiner fra pattedyrceller. De to sistnevnte subcellulære fraksjonene blir videre renset via isopycnic tetthetsgradient.
Denne protokollen beskriver en metode for å oppnå subcellulære proteinfraksjoner fra pattedyrceller ved bruk av en kombinasjon av vaskemidler, mekanisk lysis og isopynisk tetthetsgradient sentrifugering. Den største fordelen med denne prosedyren er at den ikke er avhengig av eneste bruk av oppløsende vaskemidler for å oppnå subcellulære fraksjoner. Dette gjør det mulig å skille plasmamembranen fra andre membranbundne organeller i cellen. Denne prosedyren vil lette bestemmelsen av proteinlokalisering i celler med en reproduserbar, skalerbar og selektiv metode. Denne metoden har blitt brukt til å isolere cytosoliske, kjernefysiske, mitokondrielle og plasmamembranproteiner fra den humane monocytcellelinjen, U937. Selv om den er optimalisert for denne cellelinjen, kan denne prosedyren tjene som et passende utgangspunkt for subcellulær fraksjonering av andre cellelinjer. Potensielle fallgruver i prosedyren og hvordan du kan unngå dem diskuteres, og det samme er endringer som kanskje må vurderes for andre cellelinjer.
Subcellulær fraksjonering er en prosedyre der celler lyses og separeres i deres bestanddeler gjennom flere metoder. Denne teknikken kan brukes av forskere til å bestemme proteinlokalisering i pattedyrceller eller for anrikning av proteiner med lav overflod som ellers ikke ville kunne oppdages. Mens metoder for subcellulær fraksjonering for tiden eksisterer, som kommersielle sett som kan kjøpes, lider de av flere begrensninger som denne prosedyren forsøker å overvinne. De fleste cellefraksjoneringsmetoder er utelukkende vaskemiddelbaserte1,2, avhengig av bruk av buffere som inneholder økende mengder vaskemiddel for å oppløse forskjellige cellulære komponenter. Selv om denne metoden er rask og praktisk, resulterer den i urene fraksjoner. Disse er designet for å tillate forskere å enkelt isolere en eller to komponenter i cellen, men er ikke komplekse nok til å isolere flere subcellulære fraksjoner fra en prøve samtidig. Å stole utelukkende på vaskemidler resulterer vanligvis i membranlukkede organeller og plasmamembranen blir ukritisk oppløselig, noe som gjør separasjon av disse komponentene vanskelig. En ekstra komplikasjon ved bruk av disse settene er manglende evne til forskere å endre / optimalisere dem for spesifikke applikasjoner, da de fleste komponentene er proprietære formuleringer. Endelig kan disse settene være uoverkommelig dyre, med begrensninger i antall bruksområder som gjør dem mindre enn ideelle for større prøver.
Til tross for tilgjengeligheten av sett for isolering av mitokondrier som ikke er avhengige av vaskemidler, er de ikke designet for å isolere plasmamembranen og gi betydelig lavere mengder prøve enn standard isolasjonsprotokoller 3,4. Mens differensielle sentrifugeringsmetoder er mer tidkrevende, resulterer de ofte i forskjellige fraksjoner som ikke kan oppnås med utelukkende vaskemiddelbaserte sett1. Separasjon uten bruk av løselige vaskemidler tillater også ytterligere rensing ved bruk av ultracentrifugation og isopycnic tetthetsgradienter, noe som resulterer i mindre krysskontaminering. Denne fraksjoneringsprotokollen demonstrerer isoleringen av subcellulære fraksjoner fra U937-monocytter ved bruk av en kombinasjon av vaskemiddel- og høyhastighets sentrifugeringsbaserte tilnærminger. Denne metoden vil lette isoleringen av kjernefysiske, cytoplasmatiske, mitokondrielle og plasmamembrankomponenter i en pattedyrcelle med minimal forurensning mellom fraksjonene.
Denne metoden er en modifisert versjon av en tidligere publisert tilnærming til subcellulær fraksjonering uten bruk av høyhastighets sentrifugering11. Denne modifiserte metoden krever mer spesialisert utstyr for å oppnå de beste resultatene, men er mer omfattende og konsekvent reproduserbar.
Utviklingen av den opprinnelige protokollen var nødvendig på grunn av manglende evne til å skille mitokondrielle og membranprøver for analyse av proteinlokalisering under n…
The authors have nothing to disclose.
Dette arbeidet ble støttet av NIH R15-HL135675-01 og NIH 2 R15-HL135675-02 til T.J.L.
Benzonase Nuclease | Sigma-Aldrich | E1014 | |
Bullet Blender Tissue Homogenizer | Next Advance | 61-BB50-DX | |
digitonin | Sigma | D141 | |
end-over-end rotator | ThermoFisher | ||
Ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA) | Sigma | E9884 | |
ethylene glycol-bis(β-aminoethyl ether)-N,N,N',N'-tetraacetic acid (EGTA) | Sigma | E3889 | |
GAPDH (14C10) | Cell Signalling Technologies | 2118 | |
HEPES | VWR | 97064-360 | |
Hexylene glycol | Sigma | 68340 | |
Igepal | Sigma | I7771 | Non-ionic, non-denaturing detergent |
KCl | Sigma | P9333 | |
Mannitol | Sigma | M9647 | |
MgCl2 | Sigma | M8266 | |
NaCl | Sigma | S9888 | |
Na, K-ATPase a1 (D4Y7E) | Cell Signalling Technologies | 23565 | |
Open-Top Polyclear Tubes, 16 x 52 mm | Seton Scientific | 7048 | |
OptiPrep (Iodixanol) Density Gradient Medium | Sigma | D1556-250ML | |
phenylmethanesulfonyl fluoride (PMSF) | Sigma | P7626 | |
Protease Inhibitor Cocktail, General Use | VWR | M221-1ML | |
refrigerated centrifuge | ThermoFisher | ||
S50-ST Swinging Bucket Rotor | Eppendorf | ||
Sodium dodecyl sulfate (SDS) | Sigma | 436143 | |
Sodium deoxycholate | Sigma | D6750 | |
sodium orthovanadate (SOV) | Sigma | 567540 | |
sonicator | ThermoFisher | ||
Sorvall MX120 Plus Micro-Ultracentrifuge | ThermoFisher | ||
Stainless Steel Beads 3.2 mm | Next Advance | SSB32 | |
Sucrose | Sigma | S0389 | |
Tris-buffered Saline (TBS) | VWR | 97062-370 | |
Tween 20 | non-ionic detergent in western blotting buffers | ||
VDAC (D73D12) | Cell Signalling Technologies | 4661 |