Summary

Levende avbildning og kvantifisering av virusinfeksjon hos K18 hACE2 transgene mus ved hjelp av Reporter-Expressing Rekombinant SARS-CoV-2

Published: November 05, 2021
doi:

Summary

Denne protokollen beskriver dynamikken i virusinfeksjoner ved hjelp av luciferase- og fluorescens-uttrykkende rekombinante (r)SARS-CoV-2 og et in vivo-bildebehandlingssystem (IVIS) i K18 hACE2 transgene mus for å overvinne behovet for sekundære tilnærminger som kreves for å studere SARS-CoV-2 infeksjoner in vivo.

Abstract

Koronavirussykdommen 2019 (COVID-19) pandemien har vært forårsaket av alvorlig akutt respiratorisk syndrom coronavirus 2 (SARS-CoV-2). Til dags dato har SARS-CoV-2 vært ansvarlig for over 242 millioner infeksjoner og mer enn 4,9 millioner dødsfall over hele verden. I likhet med andre virus krever studier av SARS-CoV-2 bruk av eksperimentelle metoder for å oppdage tilstedeværelsen av virus i infiserte celler og / eller i dyremodeller. For å overvinne denne begrensningen genererte vi rekombinante rekombinante (r)SARS-CoV-2 som uttrykker bioluminescent (nanoluciferase, Nluc) eller fluorescerende (Venus) proteiner. Disse reporter-uttrykkende rSARS-CoV-2 tillater sporing av virusinfeksjoner in vitro og in vivo basert på uttrykket av Nluc og Venus reporter gener. Her beskriver studien bruk av rSARS-CoV-2/Nluc og rSARS-CoV-2/Venus for å oppdage og spore SARS-CoV-2-infeksjon i det tidligere beskrevne K18 humane angiotensinkonverterende enzymet 2 (hACE2) transgen musemodell av infeksjon ved hjelp av in vivo avbildningssystemer (IVIS). Denne rSARS-CoV-2/Nluc og rSARS-CoV-2/Venus viser rSARS-CoV-2/WT-lignende patogenisitet og viral replikasjon in vivo. Viktigst, Nluc og Venus uttrykk tillater oss å direkte spore virusinfeksjoner in vivo og ex vivo, i infiserte mus. Disse rSARS-CoV-2/Nluc og rSARS-CoV-2/Venus representerer et utmerket alternativ for å studere biologien til SARS-CoV-2 in vivo, for å forstå virusinfeksjon og tilhørende COVID-19 sykdom, og for å identifisere effektive profylaktiske og/ eller terapeutiske behandlinger for å bekjempe SARS-CoV-2-infeksjon.

Introduction

Alvorlig akutt respiratorisk syndrom coronavirus 2 (SARS-CoV-2) er et innhyllet, positivt sans, enkeltstrenget RNA-virus som tilhører Betacoronavirus-slekten i Coronaviridae-familien 1. Denne virale familien er delt inn i Alpha-, Beta-, Gamma- og Delta-coronavirus1. Alfa- og betacoronavirus smitter hovedsakelig pattedyr, mens Gamma- og Deltacoronavirus infiserer nesten utelukkende fugler2. Til dags dato har syv koronavirus (CoV) krysset artsbarrierer og dukket opp som menneskelige koronavirus (HCoV): to alfa-COVs (HCoV-229E og HCoV-NL63) og fem beta-coVs (HCoV-OC43, HCoV-HKU1, SARS-CoV, Midtøsten respiratorisk syndrom coronavirus [MERS-CoV], og SARS-CoV-2)3,4,5,6. SARS-CoV, MERS-CoV og SARS-CoV-2 er svært patogene, noe som forårsaker alvorlig nedre luftveisinfeksjon7. Før fremveksten av SARS-CoV-2 var det to epidemiske utbrudd forårsaket av COVs: SARS-CoV i Guangdong Providence, Kina, fra 2002-2003, med en dødsrate (CFR) på ca. 9,7%; og MERS-CoV i Midtøsten fra 2012 til i dag, med en CFR på ca 34%7,8. SARS-CoV-2 har en samlet CFR mellom 3,4% -49%, med underliggende forhold som bidrar til en høyere CFR 8,9. Siden oppdagelsen i desember 2019, i Wuhan, Kina, har SARS-CoV-2 vært ansvarlig for over 242 millioner menneskelige infeksjoner og mer enn 4,9 millioner menneskelige dødsfall over hele verden 7,10,11,12. Spesielt siden slutten av 2020 har nye SARS-CoV-2-varianter av bekymring (VoC) og varianter av interesse (VoI) påvirket viruskarakteristikker, inkludert overføring og antigenisitet 9,13, og den generelle retningen av COVID-19-pandemien. For behandling av SARS-CoV-2-infeksjoner er det for tiden bare ett USA (USA) Food and Drug Administration (FDA) terapeutisk antiviral (remdesivir) og en Emergency Use Authorization (EUA) legemiddel (baricitinib, som skal administreres i kombinasjon med remdesivir)14. Det er også 6 godkjente EUA monoklonale antistoffer: REGEN-COV (casirivimab og imdevimab, administrert sammen), sotrovimab, tocilizumab og bamlanivimab og etesevimab administrert sammen 15,16,17,18,19. Det er for tiden bare en FDA-godkjent profylaktisk vaksine, Pfizer-BioNTech, og to andre profylaktiske vaksiner (Moderna og Janssen) har blitt EUA godkjent 20,21,22,23,24. Men med den ukontrollerte infeksjonsraten og fremveksten av VoC og VoI utgjør SARS-CoV-2 fortsatt en trussel mot menneskers helse. Derfor er det nødvendig med nye tilnærminger for å identifisere effektiv profylaktikk og terapeutisk behandling for å kontrollere SARS-CoV-2-infeksjon og den fortsatt pågående COVID-19-pandemien.

Å studere SARS-CoV-2 krever arbeidskrevende teknikker og sekundære tilnærminger for å identifisere tilstedeværelsen av viruset i infiserte celler og / eller validerte dyremodeller av infeksjon. Bruken av omvendt genetikk har gjort det mulig for generering av rekombinante virus å svare på viktige spørsmål i biologien til virusinfeksjoner. For eksempel har omvendte genetikkteknikker gitt midler til å avdekke og forstå mekanismene for virusinfeksjon, patogenese og sykdom. På samme måte har omvendt genetikk tilnærminger banet vei for å konstruere rekombinante virus som mangler virusproteiner for å forstå deres bidrag i viral patogenese. I tillegg har omvendte genetikkteknikker blitt brukt til å generere rekombinante virus som uttrykker reportergener for in vitro– og in vivo-applikasjoner, inkludert identifisering av profylaktiske og / eller terapeutiske tilnærminger for behandling av virusinfeksjoner. Fluorescerende og bioluminescerende proteiner er de mest brukte reportergenene på grunn av deres følsomhet, stabilitet og enkle deteksjon basert på forbedring av ny teknologi 25,26. In vitro, fluorescerende proteiner har vist seg å tjene som et bedre alternativ for lokalisering av virus i infiserte celler, mens luciferaser er mer praktiske for kvantifiseringsstudier 27,28,29. In vivo, luciferaser foretrekkes fremfor fluorescerende proteiner for hele dyreavbildning, mens fluorescerende proteiner foretrekkes for identifisering av infiserte celler eller ex vivo-avbildning 30,31,32. Bruken av reporter-uttrykkende rekombinante virus har fungert som et kraftig verktøy for studiet av virus i mange familier, inkludert blant annet flavivirus, enterovirus, alfavirus, lentivirus, arenavirus og influensavirus 28,33,34,35,36.

For å overvinne behovet for sekundære tilnærminger for å studere SARS-CoV-2 og karakterisere sars-cov-2-infeksjon i sanntid, vi har generert rekombinante rekombinante (r)SARS-CoV-2 som uttrykker bioluminescent (nanoluciferase, Nluc) eller fluorescerende (Venus) proteiner ved hjelp av våre tidligere beskrevne bakterielle kunstige kromosomer (BAC)-basert omvendt genetikk, som opprettholdes som en enkelt kopi i E. coli for å minimere toksisitet av virussekvenser under forplantning i bakterier37,38. Spesielt viste rSARS-CoV-2/Nluc og rSARS-CoV-2/Venus rSARS-CoV-2/WT-lignende patogenisitet in vivo. Det høye nivået av Venus-uttrykk fra rSARS-CoV-2/Venus tillot å oppdage virusinfeksjon i lungene til infiserte K18 hACE2 transgene mus ved hjelp av et in vivo-bildesystem (IVIS)39. Nivåene av Venus-uttrykk korrelerte godt med virale titere som ble oppdaget i lungene, og demonstrerte muligheten for å bruke Venus-uttrykk som en gyldig surrogat av SARS-CoV-2-infeksjon. Ved hjelp av rSARS-CoV-2/Nluc var vi i stand til å spore dynamikken i virusinfeksjon i sanntid og i lengderetningen vurdere SARS-CoV-2 infeksjon in vivo ved hjelp av samme IVIS-tilnærming i K18 hACE2 transgene mus.

Protocol

Protokoller som involverer K18 hACE2 transgene mus ble godkjent av Texas Biomedical Research Institute (TBRI) Institutional Biosafety Committee (IBC) og Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC). Alle eksperimenter følger anbefalingene i Veiledning for pleie og bruk av forsøksdyr i Det nasjonale forskningsrådet40. Riktig personlig verneutstyr (PVU) er nødvendig når du arbeider med mus. 1. Bruk av K18 hACE2 transgene mus Kjøp og…

Representative Results

rSARS-CoV-2/Nluc-infeksjon hos K18 hACE2 transgene mus (figur 1 og 2)Figur 1A viser en skjematisk representasjon av rSARS-CoV-2/WT (øverst) og rSARS-CoV-2/Nluc (nederst) som brukes til å vurdere infeksjoner in vivo. Figur 1B viser det skjematiske flytskjemaet som brukes til å vurdere rSARS-CoV-2/Nluc infeksjonsdynamikk hos K18 hACE2 transgene mus. Fire til seks uker gamle kvinnelige …

Discussion

Denne protokollen viser muligheten for å bruke disse rSARS-CoV-2 uttrykkende reportergenene for å overvåke virusinfeksjoner in vivo. Begge reporter-uttrykkende rekombinante virus gir et utmerket verktøy for å studere SARS-CoV-2 infeksjoner in vivo. De beskrevne ex vivo (rSARS-CoV-2/Venus) og in vivo (rSARS-CoV-2/Nluc) bildesystemer representerer et utmerket alternativ for å forstå dynamikken i SARS-CoV-2 infeksjon, viral patogenese og å identifisere infiserte celler / organer p…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi vil gjerne takke medlemmer ved instituttet vårt (Texas Biomedical Research Institute) for deres innsats for å holde anleggene våre i full drift og trygge under COVID-19-pandemien. Vi vil også takke vår Institutional Biosafety Committee (IBC) og spell (IACUC) for å gjennomgå protokollene våre på en tidseffektiv måte. Vi takker Dr. Thomas Moran ved Icahn School of Medicine på Mount Sinai for å ha gitt SARS-CoV tverrreaktivt 1C7C7 nukleocapsid (N) proteinmonokron antistoff. SARS-CoV-2 forskning i Martinez-Sobridos laboratorium støttes for tiden av NIAID/NIH-tilskuddene RO1AI161363-01, RO1AI161175-01A1 og R43AI165089-01; Forsvarsdepartementet (DoD) gir W81XWH2110095 og W81XWH2110103; San Antonio-partnerskapet for presisjonsterapeutisk; Texas Biomedical Research Institute Forum; University of Texas Health Science Center i San Antonio; San Antonio Medical Foundation; og av Center for Research on Influenza Pathogenesis and Transmission (CRIPT), et NIAID-finansiert Senter for fremragende forskning og respons (CEIRR, kontrakt # 75N93021C00014).

Materials

0.5% Triton X-100 J.T.Baker X198-07 Store at room temperature (RT)
1% DEAE-Dextran MP Biomedicals 195133
10% Formalin solution, neutral buffered Sigma-Aldrich HT501128
Agar Oxoid LP0028
24-well Cell Culture Plate Greiner Bio-one 662160
5% Sodium bicarbonate Sigma Aldrich S-5761
6-well Cell Culture Plate Greiner Bio-one 657160
96-well Cell Culture Plate Greiner Bio-one 655-180
African green monkey kidney epithelial cells (Vero E6) ATCC CRL-1586
Ami HT Spectral Instruments Imaging
Aura Imaging Software 3.2.0 Spectral Instruments Imaging Image analysis software
Bovine Serum Albumin (BSA), 35% Sigma-Aldrich A9647 Store at 4 °C
Cell culture grade water Corning 25-055-CV
Dulbecco’s modified Eagle’s medium (DMEM) Corning Cellgro 15-013-CV Store at 4 °C
Anesthesia gas machine Veterinary Anesthesia Systems, Inc. VAS 2001R
Fetal Bovine Serum (FBS) Seradigm 1500-050 Store at -20 °C
Four- to six-week-old female K18-hACE2 transgenic mice The Jackson Laboratory 34860
Graphpad Prism Version 9.1.0 GraphPad
Isoflurane Baxter 1001936040 Store at RT
MARS Data Analysis Software BMG LABTECH
MB10 tablets QUIP Laboratories MBTAB1.5 Store at RT
Nano-Glo Luciferase Assay Reagent Promega N1110 This reagent is used to measure Nluc activity. Store at -20 °C
Nunc MicroWell 96-Well Microplates ThermoFisher Scientific 269620
Nunc MicroWell 96-Well Microplates ThermoFisher Scientific 269620
Penicillin/Streptomycin/L-Glutamine (PSG) 100x Corning 30-009-CI Store at -20 °C
PHERAstar FSX BMG LABTECH PHERAstar FSX
Precelleys Evolution homogenizer Bertin Instruments P000062-PEVO0-A
Soft tissue homogenizing CK14 – 7 mL Bertin Instruments P000940-LYSK0-A
T75 EasYFlask ThermoFisher Scientific 156499
VECTASTAIN ABC-HRP Kit, Peroxidase Vector Laboratories PK-4002 ABC kit and DAB Peroxidase Substrate kit

Referências

  1. V’Kovski, P., Kratzel, A., Steiner, S., Stalder, H., Thiel, V. Coronavirus biology and replication: implications for SARS-CoV-2. Nature Reviews Microbiology. 19 (3), 155-170 (2021).
  2. Pal, M., Berhanu, G., Desalegn, C., Kandi, V. Severe acute respiratory syndrome coronavirus-2 (SARS-CoV-2): An update. Cureus. 12 (3), 7423 (2020).
  3. Su, S., et al. Epidemiology, genetic recombination, and pathogenesis of coronaviruses. Trends in Microbiology. 24 (6), 490-502 (2016).
  4. Cui, J., Li, F., Shi, Z. L. Origin and evolution of pathogenic coronaviruses. Nature Reviews Microbiology. 17 (3), 181-192 (2019).
  5. Lu, R., et al. Genomic characterisation and epidemiology of 2019 novel coronavirus: implications for virus origins and receptor binding. Lancet. 395 (10224), 565-574 (2020).
  6. Evans, J. P., Liu, S. L. Role of host factors in SARS-CoV-2 entry. Journal of Biological Chemistry. 297 (1), 100847 (2021).
  7. Petersen, E., et al. Comparing SARS-CoV-2 with SARS-CoV and influenza pandemics. Lancet Infectious Diseases. 20 (9), 238-244 (2020).
  8. Alfaraj, S. H., et al. Clinical predictors of mortality of Middle East Respiratory Syndrome Coronavirus (MERS-CoV) infection: A cohort study. Travel Medicine and Infectious Disease. 29, 48-50 (2019).
  9. Harvey, W. T., et al. SARS-CoV-2 variants, spike mutations and immune escape. Nature Reviews Microbiology. 19 (7), 409-424 (2021).
  10. Dong, E., Du, H., Gardner, L. An interactive web-based dashboard to track COVID-19 in real time. Lancet Infectious Diseases. 20 (5), 533-534 (2020).
  11. Bar-On, Y. M., Flamholz, A., Phillips, R., Milo, R. ARS-CoV-2 (COVID-19) by the numbers. Elife. 9, 57309 (2020).
  12. Roussel, Y., et al. SARS-CoV-2: fear versus data. International Journal of Antimicrobial Agents. 55 (5), 105947 (2020).
  13. Scialo, F., et al. SARS-CoV-2: One year in the pandemic. What have we learned, the new vaccine era and the threat of SARS-CoV-2 variants. Biomedicines. 9 (6), 611 (2021).
  14. . Coronavirus (COVID-19) update: FDA authorizes additional monoclonal antibody for treatment of COVID-19 Available from: https://www.fda.gov/news-events/press-announcements/coronavirus-covid-19-update-fda-authorizes-additional-monoclonal-antibody-treatment-covid-19 (2021)
  15. Dougan, M., et al. Bamlanivimab plus Etesevimab in Mild or Moderate Covid-19. New England Journal of Medicine. 385 (15), 1382-1392 (2021).
  16. Ledford, H. COVID antibody treatments show promise for preventing severe disease. Nature. 591 (7851), 513-514 (2021).
  17. Tuccori, M., et al. An overview of the preclinical discovery and development of bamlanivimab for the treatment of novel coronavirus infection (COVID-19): reasons for limited clinical use and lessons for the future. Expert Opinion on Drug Discovery. , 1-12 (2021).
  18. Phan, A. T., Gukasyan, J., Arabian, S., Wang, S., Neeki, M. M. Emergent inpatient administration of casirivimab and imdevimab antibody cocktail for the treatment of COVID-19 pneumonia. Cureus. 13 (5), 15280 (2021).
  19. O’Brien, M. P., et al. Subcutaneous REGEN-COV antibody combination in early SARS-CoV-2 infection. medRxiv. , (2021).
  20. Beigel, J. H., et al. Remdesivir for the treatment of Covid-19 – Final report. New England Journal of Medicine. 383 (19), 1813-1826 (2020).
  21. Li, L., et al. Effect of convalescent plasma therapy on time to clinical improvement in patients with severe and life-threatening COVID-19: A randomized clinical trial. Journal of the American Medical Association. 324 (5), 460-470 (2020).
  22. Polack, F. P., et al. Safety and efficacy of the BNT162b2 mRNA Covid-19 vaccine. New England Journal of Medicine. 383 (27), 2603-2615 (2020).
  23. Oliver, S. E., et al. The advisory committee on immunization practices’ interim recommendation for use of Pfizer-BioNTech COVID-19 vaccine – United States, December 2020. Morbidity and Mortality Weekly Report. 69 (50), 1922-1924 (2020).
  24. Oliver, S. E., et al. The advisory committee on immunization practices’ interim recommendation for use of Janssen COVID-19 vaccine – United States, February 2021. Morbidity and Mortality Weekly Report. 70 (9), 329-332 (2021).
  25. Zhao, H., et al. Emission spectra of bioluminescent reporters and interaction with mammalian tissue determine the sensitivity of detection in vivo. Journal of Biomedical Optics. 10 (4), 41210 (2005).
  26. Shaner, N. C., Steinbach, P. A., Tsien, R. Y. A guide to choosing fluorescent proteins. Nature Methods. 2 (12), 905-909 (2005).
  27. Nogales, A., et al. A novel fluorescent and bioluminescent bireporter Influenza A Virus to evaluate viral infections. Journal of Virology. 93 (10), 00032 (2019).
  28. Nogales, A., et al. Replication-competent fluorescent-expressing influenza B virus. Virus Research. 213, 69-81 (2016).
  29. Welsh, D. K., Noguchi, T. Cellular bioluminescence imaging. Cold Spring Harbor Protocols. 2012 (8), (2012).
  30. Tran, V., Moser, L. A., Poole, D. S., Mehle, A. Highly sensitive real-time in vivo imaging of an influenza reporter virus reveals dynamics of replication and spread. Journal of Virology. 87 (24), 13321-13329 (2013).
  31. Schoggins, J. W., et al. Dengue reporter viruses reveal viral dynamics in interferon receptor-deficient mice and sensitivity to interferon effectors in vitro. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 109 (36), 14610-14615 (2012).
  32. Luker, G. D., et al. Noninvasive bioluminescence imaging of herpes simplex virus type 1 infection and therapy in living mice. Journal of Virology. 76 (23), 12149-12161 (2002).
  33. Li, X., et al. Development of a rapid antiviral screening assay based on eGFP reporter virus of Mayaro virus. Antiviral Research. 168, 82-90 (2019).
  34. Kirui, J., Freed, E. O. Generation and validation of a highly sensitive bioluminescent HIV-1 reporter vector that simplifies measurement of virus release. Retrovirology. 17 (1), 12 (2020).
  35. Shang, B., et al. Development and characterization of a stable eGFP enterovirus 71 for antiviral screening. Antiviral Research. 97 (2), 198-205 (2013).
  36. Zou, G., Xu, H. Y., Qing, M., Wang, Q. Y., Shi, P. Y. Development and characterization of a stable luciferase dengue virus for high-throughput screening. Antiviral Research. 91 (1), 11-19 (2011).
  37. Ye, C., et al. Rescue of SARS-CoV-2 from a single bacterial artificial chromosome. mBio. 11 (5), 02168 (2020).
  38. Avila-Perez, G., Park, J. G., Nogales, A., Almazan, F., Martinez-Sobrido, L. Rescue of recombinant Zika virus from a bacterial artificial chromosome cDNA clone. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (148), e59537 (2019).
  39. Chiem, K., et al. A bifluorescent-based assay for the identification of neutralizing antibodies against SARS-CoV-2 variants of concern in vitro and in vivo. Journal of Virology. , (2021).
  40. Committee for the update of the guide for the care and use of laboratory animals., Institute for laboratory animal research (U.S) & National Academies Press (U.S.). Guide for the care and use of laboratory animals. 8th edn. National Research Council (US). , (2011).
  41. Ye, C., et al. Analysis of SARS-CoV-2 infection dynamic in vivo using reporter-expressing viruses. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 118 (41), (2021).

Play Video

Citar este artigo
Morales Vasquez, D., Chiem, K., Silvas, J., Park, J., Ye, C., Martínez-Sobrido, L. Live Imaging and Quantification of Viral Infection in K18 hACE2 Transgenic Mice Using Reporter-Expressing Recombinant SARS-CoV-2. J. Vis. Exp. (177), e63127, doi:10.3791/63127 (2021).

View Video