液体-ソフトマター相互作用観察のための光誘起 In situ 透過型電子顕微鏡

Summary

本プロトコルは、光照明システムによる透過型電子顕微鏡(TEM)の修飾、液体細胞の作製、および細菌細胞と光増感剤との間の光誘起相互作用の in situTEM 観察について説明する。サンプル調製方法、電子線損傷、およびイメージングについても説明します。

Abstract

現在のプロトコルは、 in situ 光誘起観察のための透過型電子顕微鏡(TEM)セットアップの変更を説明しています。対物レンズポールピースの上の電子柱にガラス光ファイバーを挿入し、調整可能な光源であるレーザーを使用してデバイスを作製しました。照明器が外部測定システムを使用して校正された後、観察されたプロセスのニーズに合わせて照明の強度を調整することができます。この照明システムは、現在熱心に研究されている抗菌光線力学療法現象を画像化するために利用されました。サンプルは、炭素、グラフェン、または窒化ケイ素基板上に細菌の懸濁液をスポットし、余分な溶液を吸い取り、光増感剤溶液をスポットし、余分な液体を再度吸い取り、次に液体セルを組み立てることによって調製されました第2の基板またはグラフェン膜。イメージング実験自体のプロセスには、低倍率および最小量の電子を使用して観察に適した場所を選択し、次に光源を周期的に活性化して、必要な最小限の電子量で指定された間隔で後続の画像をキャプチャすることが含まれます。各露光の電子線量と使用される照明の時間と強度は、観察された現象の複雑さのために注意深く記録する必要があり、同時にプロセスは光と電子の両方駆動です。実際の実験が行われた後、同じ線量の電子が使用されるが、追加の光の影響がなく、より小さな線量の電子がより高い線量の光に使用される追加の制御観察が行われる必要がある。これにより、生命科学と材料科学の両分野において、光誘起微細構造効果と電子による構造効果を区別することができます。

Introduction

高分解能の光誘起現象は、ナノエンジニアリング1,2,3、触媒^4,5、バイオフォトニクス⁶など多くの分野で興味深いものです。そのような実験を可能にするいくつかのオリジナルの設計は、サンプル^{ホルダー1}、^4、7、⁸、⁹および顕微鏡^10、11に取り付けられた光ファイバの変更を含む文献に見出すことができる。

光照明、液体環境、透過型電子顕微鏡(TEM)の組み合わせは、光誘起プロセスの詳細な動的研究のための絶好の機会を提供します。しかしながら、顕微鏡内部の高真空条件は、多くの液体、特に水溶液にとってかなり不利である。環境から保護する液体カプセル化は、主にグラフェン12、窒化ケイ素¹³、または炭素¹⁴基板に基づくいくつかの技術を使用して達成できます。材料^科学2の研究に加えて、いわゆる液体セルは、本来の状態に近い生物試料の従来とは異なる顕微鏡観察を行う可能性を提供します¹⁵。このような観察は、特に細菌細胞などの生きている微生物にとって非常に要求が厳しいものです。電離放射線としての電子ビームは、水和した試料に不可逆的な損傷を引き起こすため、電子線量を指定する必要があります¹⁶。これは、好ましくない影響を最小限に抑え、損傷を制御し、混乱を招くアーティファクトを回避するために必要です。生細胞の観察を可能にする最適な最大電子線量は依然として疑わしいトピック¹⁶ですが、少なくとも細菌¹⁷では、30 e⁻/nm²の線量が閾値であるように思われます。

このような顕微鏡研究の対象となる主題のいくつかは、抗菌光線力学療法(APDT)¹⁸中のプロセスです。要するに、治療は次のように進行する。細菌細胞は、光増感剤と呼ばれる感光性液体に囲まれています。特定の波長で光照射が行われると、励起された光増感剤分子から溶液中に自然に存在する酸素へのエネルギーまたは電荷移動から細胞傷害性活性酸素種(ROS)が生成されます。ROSにさらされた病原体は、副作用なしに非常に高い効率で迅速に不活化されます¹⁹。治療に対する反応は微生物によって異なり、例えば、グラム陽性菌とグラム陰性菌では同じ光増感剤の影響がかなり異なる可能性があります²⁰。一般に、ROSの主な標的は細胞の外部構造であり、損傷は細胞膜の機能障害をもたらし、その結果、細菌の死につながることが確立されています^21,22。しかし、核酸とプロテインスキャンの損傷も不活性化の原因と考えられているため¹⁸、このプロセス中にどの細胞構造が主な標的であるかはまだ不明です¹⁹。有害なプロセスをより深く理解することは、この根治的な治療法を改善するのに役立つ可能性があります。APDT研究²³で使用される光学顕微鏡法と比較して、TEM技術は、より高い解像度と倍率でAPDTメカニズムを見るためのより多くの可能性を提供します²⁴。TEMはすでに進行中の治療中の細胞観察にうまく使用されており、グラム陽性細菌を研究することができました損傷と変化を説明する細胞壁内で発生する^6,25。

現在のプロトコルは、適切な光照明システム、液体による細胞のカプセル化、および厳密な電子線量制御を必要とするTEMを使用した光誘発細菌不活性化の高解像度イメージングに適した実験セットアップを提供します。観察に用いた細菌は 黄色ブドウ球菌で、メチレンブルー溶液を光増感剤として使用した。特殊な光照明セットアップは、光ファイバーを使用して顕微鏡カラムに直接接続された調整可能な半導体レーザーで構成されています。この設計は、光ファイバーが顕微鏡軸に対してほぼ平行に配置されているため、サンプル全体に均一な照射を提供します。レーザーによって生成された高強度の単色光を使用して、さまざまな光化学的効果を研究することができます。実験で使用した光は、可視領域において、メチレンブルーが613nmおよび664nmに吸収ピークを有するため、波長は660nmに等しい²⁶であった。液体カプセル化のプロトコルは炭素基質に基づいているため、手順が迅速かつ複雑になりません。最後に、液体中の細胞の低線量 in situTEM 観察の方法を紹介します。サンプル調製の難しさ、敏感な標本に対する電子線量の影響、および合理的な画像解釈について説明します。

Protocol

1. 透過型電子顕微鏡の修正 対物レンズ上部の顕微鏡カラムに光ファイバ( 材料表を参照)を接続して、透過型電子顕微鏡を変更します。対物レンズとコンデンサーレンズの間に数センチのスペースを確保し、さらにアクセサリー用の空きスロットを確保します。注:専用のサンプルホルダー4 または逆構成1 のカソードルミ?…

Representative Results

実験セットアップは、液体中で発生する光誘起プロセスを高解像度で観察するように設計されました。画像の競合分析により、電子ビームによる損傷と光化学反応に関連する変化を区別することができました。敏感な試料(この場合、液体でカプセル化された細胞)に対する電子ビームの影響は、電子が均一に透過するため、照射領域のいたるところに見られました。もちろん、効果は電子線?…

Discussion

照明器の設置と試運転には基本的なサービス知識が必要であり、顕微鏡を損傷する可能性があります。顕微鏡に光を導入する最も簡単な方法は、通常TEM偏向コイルと追加の検出器のためのスペースがある対物レンズの上部から光ファイバーを接続することです。同じ場所にサンプル真空ロックとサンプル設置メカニズムを収容する古いトップエントリーデバイスからは、より多くの空きスペ?…

Materials

Carbon film on 200 mesh copper grid	Agar Scientific	AGS160	The standard TEM grids for observations and liquid cell preparation
Crossover Tweezers	Dumont	N5	The tweezers are neecesarry for liquid cell preparation
Photodiode Power Sensor	ThorLabs	S130C	The sensor used for light intensity measurement
Polyimide-Coated Multimode Fiber	Thorlabs	FG400UEP	Must be built into the microscope using the on-site built adapter, according to the 10.1016/j.ultramic.2021.113388
Transmission Electron Microscope	Hitachi	H-800	Can be replaced with any side-entry microscope, available for modification
Tuneable Diode Laser	CNI	MRL-III-660D	The light wavelength must be chosen basing on photosensitizer's absorption spectrum