JoVE Journal > Cancer Research
Summary
Abstract
Introduction
Protocol
Resultados
Discussion
Declarações
Acknowledgements
Materials
Referências
Tadução automática
Please note that all translations are automatically generated. Click here for the English version.
Pesquisa do Câncer

Potansiyel Radyosensitizörleri veya Koruyucuları Değerlendirmek için Bir Model Olarak Zebra Balığı Larvaları

Published: August 25, 2022
doi:
10.3791/64233
, , , , ,
1Tumor microenvironment and animal models lab,Institute of Life Sciences, 2Vascular Biology lab,Institute of Life Sciences, 3Regional Centre for Biotechnology, 4School of Biotechnology,KIIT University

Summary

Zebra balığı son zamanlarda potansiyel radyasyon değiştiricilerini doğrulamak için bir model olarak kullanılmıştır. Mevcut protokol, radyasyona dayalı tarama deneyleri için zebra balığı embriyolarını kullanmanın ayrıntılı adımlarını ve farklı tedavilerin ve radyasyonun etkisini değerlendirmek için bazı gözlemsel yaklaşımları açıklamaktadır.

Abstract

Zebra balıkları, bakımı kolay omurgalı modellerinden biri oldukları ve benzersiz ve kullanışlı bir model sisteminin çeşitli özelliklerini sergiledikleri için çeşitli araştırmalarda yaygın olarak kullanılmaktadır. Yüksek oranda proliferatif hücreler radyasyona bağlı DNA hasarına karşı daha duyarlı olduklarından, zebra balığı embriyoları radyasyon araştırmalarında in vivo modelde ön saflarda yer almaktadır. Ayrıca bu model, radyasyon ve farklı ilaçların etkisini, büyük biyolojik olaylar ve ilişkili tepkilerle birlikte kısa sürede yansıtmaktadır. Birkaç kanser çalışması zebra balığı kullanmıştır ve bu protokol, radyoterapi ve kanser bağlamında radyasyon değiştiricilerin kullanımına dayanmaktadır. Bu yöntem, farklı ilaçların ışınlanmış ve kontrol (ışınlanmamış) embriyolar üzerindeki etkilerini doğrulamak için kolayca kullanılabilir, böylece ilaçları radyo duyarlılaştırıcı veya koruyucu ilaçlar olarak tanımlar. Bu metodoloji çoğu ilaç tarama deneyinde kullanılmasına rağmen, deneyin ayrıntıları ve X-ışını radyasyonuna maruz kalmanın arka planı ile toksisite değerlendirmesi sınırlıdır veya sadece kısaca ele alınmaktadır, bu da gerçekleştirilmesini zorlaştırmaktadır. Bu protokol bu sorunu ele alır ve prosedür ve toksisite değerlendirmesini ayrıntılı bir örnekle tartışır. Prosedür, zebra balığı embriyolarının radyasyon çalışmaları ve radyasyona dayalı ilaç taraması için çok güvenilir ve tekrarlanabilir bir şekilde kullanılması için basit bir yaklaşımı açıklamaktadır.

Introduction

Zebra balığı (Danio rerio), son 3 yılda araştırmalarda yaygın olarak kullanılan iyi bilinen bir hayvan modelidir. Laboratuvar koşullarında yetiştirilmesi ve üremesi kolay olan küçük bir tatlı su balığıdır. Zebra balığı, çeşitli gelişimsel ve toksikolojik çalışmalar için yaygın olarak kullanılmaktadır 1,2,3,4,5,6,7,8. Zebra balığı yüksek doğurganlığa ve kısa embriyonik üretime sahiptir; Embriyolar farklı gelişim aşamalarını izlemek için uygundur, görsel olarak şeffaftır ve genetik manipülasyon çeşitlerine ve yüksek verimli tarama platformlarınauygundur 9,10,11,12,13,14. Ayrıca, zebra balığı, gelişim sürecinin ve çeşitli toksik maddelerin veya faktörlerin varlığında farklı deformitelerin stereo veya floresan mikroskopi 7,15,16 kullanılarak kolayca incelenebildiği toto ve canlı görüntüleme sağlar.

Radyoterapi, kanser tedavisinde kullanılan başlıca terapötik modlardan biridir 17,18,19,20,21,22,23,24. Bununla birlikte, kanser radyoterapisi, kötü huylu hücreleri öldürürken normal sağlıklı hücrelerin ölmesini önlemek veya yüksek enerjili radyasyonlar içeren tedavi sırasında insan sağlığını korumak için potansiyel radyoprotektörler gerektirir 25,26,27,28,29. Tersine, özellikle hedefli ve hassas tedavilerde kötü huylu hücreleri öldürmek için radyasyonun etkinliğini artırmak için güçlü radyosensitizörler de araştırılmaktadır30,31,32,33. Bu nedenle, güçlü radyoprotektörleri ve hassaslaştırıcıları doğrulamak için, yarı yüksek verimli ilaç taraması için uygun ve ölçülebilir radyasyon etkileri sergileyen bir model şiddetle talep edilmektedir. Radyasyon çalışmalarında mevcut birkaç model kullanılır ve ilaç tarama deneylerinde yer alır. Bununla birlikte, daha yüksek omurgalılar ve hatta en yaygın olarak kullanılan in vivo model olan fareler, büyük ölçekli ilaç taraması için uygun değildir, çünkü bu modellerle bu tür tarama deneylerini tasarlamak zaman alıcı, maliyetli ve zordur. Benzer şekilde, hücre kültürü modelleri, yüksek verimli ilaç tarama deneylerinin çeşitleri için idealdir34,35. Bununla birlikte, hücre kültürünü içeren deneyler her zaman pragmatik, yüksek oranda tekrarlanabilir veya güvenilir değildir, çünkü kültürdeki hücreler büyüme koşullarına ve kinetiğine göre davranışlarını önemli ölçüde değiştirebilir. Ayrıca, hücre tiplerinin çeşitleri diferansiyel radyasyon duyarlılığı gösterir. Özellikle, 2D ve 3D hücre kültürü sistemleri tüm organizma senaryosunu temsil etmez ve bu nedenle elde edilen sonuçlar gerçek radyotoksisiteseviyesini özetlemeyebilir 36,37. Bu bağlamda, zebra balığı yeni radyosensitizörler ve radyoprotektörler için taramada çeşitli avantajlar sağlar. Kullanım kolaylığı, büyük kavrama boyutu, kısa ömür, hızlı embriyonik gelişim, embriyo şeffaflığı ve küçük vücut boyutu, zebra balığını büyük ölçekli ilaç taraması için uygun bir model haline getirir. Yukarıdaki avantajlardan dolayı, deneyler kısa sürede kolayca tekrarlanabilir ve etki, çok kuyulu plakalarda diseksiyon mikroskobu altında kolayca gözlemlenebilir. Bu nedenle, zebra balığı, radyasyon çalışmalarını içeren ilaç tarama araştırmalarında popülerlik kazanmaktadır38,39.

Zebra balığının iyi niyetli bir model olarak radyasyon değiştiricileri tarama potansiyeli çeşitli çalışmalarda gösterilmiştir40,41,42,43,44,45. Zebra balığı modelinde nanopartikül DF1, amifostin (WR-2721), DNA onarım proteinleri KU80 ve ATM gibi potansiyel radyo değiştiricilerin ve nakledilen hematopoietik kök hücrelerin radyoprotektif etkisi ve flavopiridol ve AG1478 gibi radyoduyarlılaştırıcıların etkileri bildirilmiştir 19,41,42,43,44,45,46 . Aynı sistem kullanılarak, DF-1’in (fulleren nanopartikül) radyoprotektif etkisi hem sistemik hem de organa özgü seviyelerde değerlendirildi ve ayrıca zebra balığı embriyolarının radyoprotektör taraması için kullanımı daha da araştırıldı47. Son zamanlarda, Kelulut balının zebra balığı embriyolarında bir radyoprotektör olduğu bildirildi ve embriyo sağkalımını arttırdığı ve organa özgü hasarı, hücresel DNA hasarını ve apoptozu önlediği bulundu48.

Benzer şekilde, Hantzsch reaksiyonu yoluyla üretilen polimerlerin radyoprotektif etkileri, yüksek verimli bir taramada zebra balığı embriyoları üzerinde kontrol edildi ve koruma esas olarak hücrelerin DNA hasarındankorunmasıyla sağlandı 49. Önceki çalışmalardan birinde, lipofilik statin fluvastatin, bu yaklaşımla zebra balığı modeli kullanılarak potansiyel bir radyosensitizör olarak bulundu50. Benzer şekilde, altın nanopartiküller ideal bir radyosensitizör olarak kabul edilir ve birçok çalışmada kullanılmıştır51,52.

Zebra balıklarındaki embriyonik gelişim, tek hücreli bir zigotun stereomikroskopla kolayca tanımlanabilen 2 hücre, 4 hücre, 8 hücre, 16 hücre, 32 hücre ve 64 hücre oluşturmak üzere bölündüğü ilk 3 saatte bölünmeyi içerir. Daha sonra, hücrelerin her 15 dakikada bir ikiye katlandığı ve aşağıdaki aşamalardan geçtiği 128 hücre (döllenme sonrası 2.25 saat, hpf) ile blastula aşamasına ulaşır: 256 hücre (2.5 hpf), 512 hücre (2.75 hpf) ve sadece 3 saatte 1.000+ hücreye ulaşır (Şekil 1). 4 saatte, yumurta küre aşamasına ulaşır, ardındanembriyonik kütle 7,53,54’te bir kubbe şekli oluşur. Zebra balığında gastrulasyon, kalkan aşamasına ulaştığı 5.25 hpf54’ten başlar. Kalkan, hücrelerin germ halkasının bir tarafına hızlı yakınsama hareketini açıkça gösterir (Şekil 1) ve kolayca tanımlanabilen gastrülasyon embriyolarının belirgin ve belirgin bir aşamasıdır53,54. Embriyolara radyasyona maruz kalma, gelişimlerinin herhangi bir aşamasında yapılabilse de, gastrulasyon sırasında radyasyona maruz kalma, radyasyonun neden olduğu toksisitelerin daha iyi okunmasını kolaylaştıran daha belirgin morfolojik değişikliklere sahip olabilir55; Benzer şekilde, embriyolara ilaç uygulaması 2 HPF54 gibi erken bir tarihte başlatılabilir.

Protocol

Bu çalışma, Bhubaneswar’daki Yaşam Bilimleri Enstitüsü, Kurumsal Hayvan Etik Komitesi’nin yönergelerinden önceden onay alınarak ve bu yönergeler izlenerek yürütülmüştür. Tüm zebra balığı bakımı ve üremesi 28.5 °C’de bir ortam balık kültürü tesisinde gerçekleştirildi ve embriyolar 28.5 °C’lik bir sıcaklıkta biyolojik oksijen ihtiyacı (BOİ) inkübatöründe tutuldu. Burada zebra balığı AB suşu kullanılmış ve evreleme Kimmel ve ark.54’e göre yapılmıştır…

Representative Results

Protokolün genel düzeni Şekil 2’de gösterilmiştir. Radyasyonun etkisi ve doza bağlı karakterizasyonu aşağıdaki analizlerle değerlendirildi. X-ışını kaynaklı toksisitelerin değerlendirilmesiBir stereomikroskop kullanılarak, ilaç tedavisi ve / veya radyasyondan sonra aşağıdaki anormallikler değerlendirildi ve karakterize edildi. OECD yönergelerine61 göre, balıklarda toksisite de…

Discussion

Zebra balığı, çeşitli kanser araştırmaları da dahil olmak üzere birçok çalışmada değerli modeller olarak kullanılmaktadır. Bu model, büyük ölçekli uyuşturucu taraması için yararlı bir platform sağlar67,68. Diğer tüm toksisite değerlendirme yöntemleri gibi, radyasyon ve/veya ilaç tedavisi ile ilgili önemli biyolojik değişikliklerin nicel olarak değerlendirilmesi bu protokolün en önemli parçasıdır. Bu tür çalışmalarda, tok…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

SS’nin laboratuvarı ve RKS’nin laboratuvarı, Hindistan’daki DBT ve SERB’den gelen hibelerle finanse edilmektedir. APM, Hindistan Hükümeti ICMR bursunun bir alıcısıdır. DP, Hindistan Hükümeti CSIR bursunun bir alıcısıdır. BM, Hindistan Hükümeti DST-Inspire bursunun bir alıcısıdır. Şekil 2 , Biorender (https://biorender.com) kullanılarak oluşturulmuştur.

Materials

6 Well plates Corning CLS3335 Polystyrene
B.O.D Incubator Oswald JRIC-10
Calcium Chloride Fisher Scientific 10101-41-4
Dissecting Microscope Zeiss Stemi 2000
External Tank for the 1.0 L Breeding Tank Tecniplast ZB10BTE Polycarbonate
Glass petriplates Borosil 3165A75 Glass
GraphpadPrism GraphPad Software, Inc. Version 5.01
Kline concavity slides Himedia GW092-1PK Glass
Magnesium Chloride Sigma-Aldrich M8266
Methylene blue hydrate Sigma-Aldrich 66720-100G
Parafilm Tarsons 380020 Paraffin film
Pasteur pipettes Himedia PW1212-1X500NO Polyethylene plastic
Perforated Internal Tank for the 1.0 L Breeding Tank Tecniplast ZB10BTI Polycarbonate
Polycarbonate Divider for the 1.0 L Breeding Tank Tecniplast ZB10BTD Polycarbonate
Polycarbonate Lid for the 1.0 L Breeding Tank Tecniplast ZB10BTL Polycarbonate
Potassium Chloride Sigma-Aldrich P5655
Sodium Chloride Sigma-Aldrich S7653-5KG
Sodium hydroxide pellet SRL 1949181
Stereo Microscope Leica M205FA Leica Model/PN MDG35/10 450 125
X-Rad 225 Precision X-Ray Precision X-Ray X-RAD 225XL
DOWNLOAD MATERIALS LIST

Referências

  1. Teame, T., et al. The use of zebrafish (Danio rerio) as biomedical models. Animal Frontiers. 9 (3), 68-77 (2019).
  2. Ye, M., Chen, Y. Zebrafish as an emerging model to study gonad development. Computational and Structural Biotechnology Journal. 18, 2373-2380 (2020).
  3. Bambino, K., Chu, J. Zebrafish in Toxicology and Environmental Health. Current Topics in Developmental Biology. 124, 331-367 (2017).
  4. Zhang, C., Willett, C., Fremgen, T. Zebrafish: An animal model for toxicological studies. Current Protocols in Toxicology. , (2003).
  5. Dai, Y. J., et al. Zebrafish as a model system to study toxicology. Environmental Toxicology and Chemistry. 33 (1), 11-17 (2014).
  6. Gamse, J. T., Gorelick, D. A. Mixtures, metabolites, and mechanisms: Understanding toxicology using zebrafish. Zebrafish. 13 (5), 377-378 (2016).
  7. Yesudhason, B. V., et al. Developmental stages of zebrafish (Danio rerio) embryos and toxicological studies using foldscope microscope. Cell Biology International. 44 (10), 1968-1980 (2020).
  8. Cassar, S., et al. Use of zebrafish in drug discovery toxicology. Chemical Research in Toxicology. 33 (1), 95-118 (2020).
  9. Hill, A. J., Teraoka, H., Heideman, W., Peterson, R. E. Zebrafish as a model vertebrate for investigating chemical toxicity. Toxicological Sciences. 86 (1), 6-19 (2005).
  10. McGrath, P., Li, C. Q. Zebrafish: A predictive model for assessing drug-induced toxicity. Drug Discovery Today. 13 (9-10), 394-401 (2008).
  11. Haque, E., Ward, A. C. Zebrafish as a model to evaluate nanoparticle toxicity. Nanomaterials. 8 (7), 561 (2018).
  12. Xia, Q., et al. Psoralen induces developmental toxicity in zebrafish embryos/larvae through oxidative stress, apoptosis, and energy metabolism disorder. Frontiers in Pharmacology. 9, 1457 (2018).
  13. Al-Samadi, A., et al. PCR-based zebrafish model for personalised medicine in head and neck cancer. Journal of Translational Medicine. 17 (1), 235 (2019).
  14. Van Sebille, Y. Z., Gibson, R. J., Wardill, H. R., Carney, T. J., Bowen, J. M. Use of zebrafish to model chemotherapy and targeted therapy gastrointestinal toxicity. Experimental Biology and Medicine. 244 (14), 1178-1185 (2019).
  15. Heideman, W., Antkiewicz, D. S., Carney, S. A., Peterson, R. E. Zebrafish and cardiac toxicology. Cardiovascular Toxicology. 5 (2), 203-214 (2005).
  16. Sieber, S., et al. Zebrafish as a preclinical in vivo screening model for nanomedicines. Advanced Drug Delivery Reviews. 151-152, 152-168 (2019).
  17. Farrelly, J., McEntee, M. C. Principles and applications of radiation therapy. Clinical Techniques in Small Animal Practice. 18 (2), 82-87 (2003).
  18. Seegenschmiedt, M., Micke, O., Muecke, R. German Cooperative Group on Radiotherapy for Non-malignant Diseases (GCG-BD). Radiotherapy for non-malignant disorders: State of the art and update of the evidence-based practice guidelines. The British Journal of Radiology. 88 (1051), (2015).
  19. Mohan, G., et al. Recent advances in radiotherapy and its associated side effects in cancer-A review. The Journal of Basic and Applied Zoology. 80 (1), 14 (2019).
  20. Jarosz-Biej, M., Smolarczyk, R., Cichoń, T., Kułach, N. Tumor microenvironment as a "game changer" in cancer radiotherapy. International Journal of Molecular Sciences. 20 (13), 3212 (2019).
  21. Chen, H. H. W., Kuo, M. T. Improving radiotherapy in cancer treatment: Promises and challenges. Oncotarget. 8 (37), 62742-62758 (2017).
  22. Garibaldi, C., et al. Recent advances in radiation oncology. Ecancermedicalscience. 11, 785 (2017).
  23. Koka, K., Verma, A., Dwarakanath, B. S., Papineni, R. V. L. Technological advancements in external beam radiation therapy (EBRT): An indispensable tool for cancer treatment. Cancer Management and Research. 14, 1421-1429 (2022).
  24. Citrin, D. E. Recent developments in radiotherapy. The New England Journal of Medicine. 377 (11), 1065-1075 (2017).
  25. Ghani, S., et al. Recent developments in antibody derivatives against colorectal cancer; A review. Life Sciences. 265, 118791 (2021).
  26. Lu, L., Shan, F., Li, W., Lu, H. Short-term side effects after radioiodine treatment in patients with differentiated thyroid cancer. BioMed Research International. 2016, 4376720 (2016).
  27. Szejk, M., Kołodziejczyk-Czepas, J., Żbikowska, H. M. Radioprotectors in radiotherapy – Advances in the potential application of phytochemicals. Postepy Higieny i Medycyny Doswiadczalnej. 70, 722-734 (2016).
  28. Citrin, D., et al. Radioprotectors and mitigators of radiation-induced normal tissue injury. The Oncologist. 15 (4), 360-371 (2010).
  29. Jairam, V., et al. Treatment-related complications of systemic therapy and radiotherapy. JAMA Oncology. 5 (7), 1028-1035 (2019).
  30. Gong, L., Zhang, Y., Liu, C., Zhang, M., Han, S. Application of radiosensitizers in cancer radiotherapy. International Journal of Nanomedicine. 16, 1083-1102 (2021).
  31. Wardman, P. Chemical radiosensitizers for use in radiotherapy. Clinical Oncology. 19 (6), 397-417 (2007).
  32. Citrin, D. E. Radiation modifiers. Hematology/Oncology Clinics of North America. 33 (6), 1041-1055 (2019).
  33. Citrin, D. E., Mitchell, J. B. Altering the response to radiation: sensitizers and protectors. Seminars in Oncology. 41 (6), 848-859 (2014).
  34. Caragher, S., Chalmers, A. J., Gomez-Roman, N. Glioblastoma’s next top model: Novel culture systems for brain cancer radiotherapy research. Cancers. 11 (1), 44 (2019).
  35. Wang, J. S., Wang, H. J., Qian, H. L. Biological effects of radiation on cancer cells. Military Medical Research. 5 (1), 20 (2018).
  36. Serrano Martinez, P., et al. Mouse parotid salivary gland organoids for the in vitro study of stem cell radiation response. Oral Diseases. 27 (1), 52-63 (2021).
  37. Martin, M. L., et al. Organoids reveal that inherent radiosensitivity of small and large intestinal stem cells determines organ sensitivity. Pesquisa do Câncer. 80 (5), 1219-1227 (2020).
  38. Szabó, E. R., et al. Radiobiological effects and proton RBE determined by wildtype zebrafish embryos. PLoS One. 13 (11), 0206879 (2018).
  39. Hurem, S., et al. Dose-dependent effects of gamma radiation on the early zebrafish development and gene expression. PLoS One. 12 (6), 0179259 (2017).
  40. Lu, B., Hwang, M., Yong, C., Moretti, L. Zebrafish as a model system to screen radiation modifiers. Current Genomics. 8 (6), 360-369 (2007).
  41. Curran, W. . Seminars in radiation oncology. 12 (1), 2-4 (2002).
  42. McAleer, M. F., et al. Novel use of zebrafish as a vertebrate model to screen radiation protectors and sensitizers. International Journal of Radiation Oncology – Biology – Physics. 61 (1), 10-13 (2005).
  43. Bladen, C. L., Lam, W. K., Dynan, W. S., Kozlowski, D. J. DNA damage response and Ku80 function in the vertebrate embryo. Nucleic Acids Research. 33 (9), 3002-3010 (2005).
  44. Geiger, G. A., et al. Zebrafish as a "biosensor"? Effects of ionizing radiation and amifostine on embryonic viability and development. Pesquisa do Câncer. 66 (16), 8172-8181 (2006).
  45. Kelland, L. R. Flavopiridol, the first cyclin-dependent kinase inhibitor to enter the clinic: Current status. Expert Opinion on Investigational Drugs. 9 (12), 2903-2911 (2000).
  46. Prasanna, P. G., et al. Radioprotectors and radiomitigators for improving radiation therapy: The Small Business Innovation Research (SBIR) gateway for accelerating clinical translation. Radiation Research. 184 (3), 235-248 (2015).
  47. Daroczi, B., et al. In vivo radioprotection by the fullerene nanoparticle DF-1as assessed in a zebrafish model. Clinical Cancer Research. 12 (23), 7086-7091 (2006).
  48. Adenan, M. N. H., et al. Radioprotective effects of Kelulut honey in zebrafish model. Molecules. 26 (6), 1557 (2021).
  49. Liu, G., et al. High-throughput preparation of radioprotective polymers via Hantzsch’s reaction for in vivo X-ray damage determination. Nature Communications. 11 (1), 1-11 (2020).
  50. Mohapatra, D., et al. Fluvastatin sensitizes pancreatic cancer cells toward radiation therapy and suppresses radiation- and/or TGF-β-induced tumor-associated fibrosis. Laboratory Investigation. 102 (3), 298-311 (2022).
  51. Chen, Y., Yang, J., Fu, S., Wu, J. Gold nanoparticles as radiosensitizers in cancer radiotherapy. International Journal of Nanomedicine. 15, 9407-9430 (2020).
  52. Ma, N., et al. Enhanced radiosensitization of gold nanospikes via hyperthermia in combined cancer radiation and photothermal therapy. ACS Applied Materials & Interfaces. 8 (42), 28480-28494 (2016).
  53. Hosen, M. J., et al. Zebrafish models for ectopic mineralization disorders: Practical issues from morpholino design to post-injection observations. Frontiers in Genetics. 4, 74 (2013).
  54. Kimmel, C. B., Ballard, W. W., Kimmel, S. R., Ullmann, B., Schilling, T. F. Stages of embryonic development of the zebrafish. Developmental Dynamics. 203 (3), 253-310 (1995).
  55. Zhou, R., et al. The effects of x-ray radiation on the eye development of zebrafish. Human & Experimental Toxicology. 33 (10), 1040-1050 (2014).
  56. Avdesh, A., et al. Regular care and maintenance of a zebrafish (Danio rerio) laboratory: An introduction. Journal of Visualized Experiments. (69), e4196 (2012).
  57. Braunbeck, T., et al. Towards an alternative for the acute fish LC(50) test in chemical assessment: The fish embryo toxicity test goes multi-species — An update. ALTEX. 22 (2), 87-102 (2005).
  58. Nagel, R. DarT: The embryo test with the zebrafish Danio rerio–A general model in ecotoxicology and toxicology. ALTEX. 19, 38-48 (2002).
  59. Aspatwar, A., Hammaren, M. M., Parikka, M., Parkkila, S. Rapid evaluation of toxicity of chemical compounds using zebrafish embryos. Journal of Visualized Experiments. (150), e59315 (2019).
  60. Gence, L., et al. Hypericum lanceolatum Lam. Medicinal plant: Potential toxicity and therapeutic effects based on a zebrafish model. Frontiers in Pharmacology. 13, 832928 (2022).
  61. OECD. Test No. 203: Fish, Acute Toxicity Test. OECD Guidelines for the Testing of Chemicals., Section 2. , (2019).
  62. Li, X., et al. Toxic effects and foundation of proton radiation on the early-life stage of zebrafish development. Chemosphere. 200, 302-312 (2018).
  63. Si, J., et al. Effects of ionizing radiation and HLY78 on the zebrafish embryonic developmental toxicity. Toxicology. 411, 143-153 (2019).
  64. Si, J., et al. Toxic effects of (56)Fe ion radiation on the zebrafish (Danio rerio) embryonic development. Aquatic Toxicology. 186, 87-95 (2017).
  65. Pucci, G., Forte, G. I., Cavalieri, V. Evaluation of epigenetic and radiomodifying effects during radiotherapy treatments in zebrafish. International Journal of Molecular Sciences. 22 (16), 9053 (2021).
  66. Song, Z., et al. Isoliquiritigenin triggers developmental toxicity and oxidative stress-mediated apoptosis in zebrafish embryos/larvae via Nrf2-HO1/JNK-ERK/mitochondrion pathway. Chemosphere. 246, 125727 (2020).
  67. Patton, E. E., Zon, L. I., Langenau, D. M. Zebrafish disease models in drug discovery: From preclinical modelling to clinical trials. Nature Reviews Drug Discovery. 20 (8), 611-628 (2021).
  68. Rosa, J. G. S., Lima, C., Lopes-Ferreira, M. Zebrafish larvae behavior models as a tool for drug screenings and pre-clinical trials: A review. International Journal of Molecular Sciences. 23 (12), 6647 (2022).
  69. Kong, E. Y., Cheng, S. H., Yu, K. N. Biphasic and triphasic dose responses in zebrafish embryos to low-dose 150 kV X-rays with different levels of hardness. Journal of Radiation Research. 57 (4), 363-369 (2016).

Tags

Zebrafish LarvaeRadiation ScreeningRadiosensitizersRadioprotectorsRadiation-based ExperimentsHigh-throughput Drug ScreeningRadiobiologyRadiotherapyX-ray IrradiationEmbryo StagingObservational ApproachesSurvivalHatching EfficiencyDevelopmental StagesPhenotypic Changes

Play Video
PDF
DOI
DOWNLOAD MATERIALS LIST
Citar este artigo
Mohapatra, A. P., Parida, D., Mohapatra, D., Nayak, U., Swain, R. K., Senapati, S. Zebrafish Larvae as a Model to Evaluate Potential Radiosensitizers or Protectors. J. Vis. Exp. (186), e64233, doi:10.3791/64233 (2022).
Baixar citação
Reimpressões e Permissões

View Video

✖

To prove you're not a robot, please enter the text in the image below

CAPTCHA Image
Play CAPTCHA Audio
Refresh Image