Summary

Een schaalbare, op cellen gebaseerde methode voor de functionele beoordeling van Ube3a-varianten

Published: October 10, 2022
doi:

Summary

Een eenvoudige en schaalbare methode werd ontwikkeld om de functionele betekenis van missense-varianten in Ube3a te beoordelen, een gen waarvan het verlies en de winst van functie verband houden met zowel het Angelman-syndroom als de autismespectrumstoornis.

Abstract

Het toegenomen gebruik van sequencing in de geneeskunde heeft miljoenen coderende varianten in het menselijk genoom geïdentificeerd. Veel van deze varianten komen voor in genen die geassocieerd zijn met neurologische ontwikkelingsstoornissen, maar de functionele betekenis van de overgrote meerderheid van de varianten blijft onbekend. Het huidige protocol beschrijft de studie van varianten voor Ube3a, een gen dat codeert voor een E3 ubiquitine ligase gekoppeld aan zowel autisme als angelmansyndroom. Duplicatie of drievoud van Ube3a is sterk gekoppeld aan autisme, terwijl de deletie ervan het Angelman-syndroom veroorzaakt. Het begrijpen van de valentie van veranderingen in UBE3A-eiwitactiviteit is dus belangrijk voor klinische resultaten. Hier wordt een snelle, op cellen gebaseerde methode beschreven die Ube3a-varianten koppelt aan een Wnt-padverslaggever. Deze eenvoudige test is schaalbaar en kan worden gebruikt om de valentie en omvang van activiteitsveranderingen in elke Ube3a-variant te bepalen. Bovendien maakt de faciliteit van deze methode het mogelijk om een schat aan structuurfunctie-informatie te genereren, die kan worden gebruikt om diepgaande inzichten te krijgen in de enzymatische mechanismen van UBE3A.

Introduction

Recente technologische ontwikkelingen hebben de sequencing van exomen en genomen routine gemaakt in klinische omgevingen 1,2. Dit heeft geleid tot de ontdekking van een groot aantal genetische varianten, waaronder miljoenen missense-varianten die meestal één aminozuur in een eiwit veranderen. Het begrijpen van de functionele betekenis van deze varianten blijft een uitdaging, en slechts een klein deel (~2%) van de bekende missense varianten heeft een klinische interpretatie 1,3.

Een prominent voorbeeld van dit probleem is Ube3a, een gen dat codeert voor een E3-ubiquitineligase dat zich richt op substraateiwitten voor afbraak4. Ube3a bevindt zich binnen chromosoom 15q11-13 en wordt uitsluitend uitgedrukt uit het maternale erfelijke allel 5,6,7. Observaties uit de ziektegenetica suggereren sterk dat onvoldoende of overmatige activiteit van het UBE3A-enzym verschillende neurologische ontwikkelingsstoornissen veroorzaakt. Deletie van maternale chromosoom 15q11-13 veroorzaakt Angelman-syndroom (AS)8, een aandoening die wordt gekenmerkt door ernstige intellectuele achterstand, motorische stoornissen, epileptische aanvallen, een gelukkige houding met frequent glimlachen en dysmorfe gelaatstrekken 8,9,10. Daarentegen veroorzaakt duplicatie of tripplicatie van maternale chromosoom 15q11-13 het Dup15q-syndroom, een heterogene aandoening die wordt erkend als een van de meest voorkomende syndromale vormen van autisme 11,12,13. Bovendien zijn er honderden missense-varianten geïdentificeerd in Ube3a, waarvan de meerderheid wordt beschouwd als varianten van onzekere betekenis (VUS) omdat hun functionele en klinische betekenis onbekend zijn. Er is dus veel interesse in het ontwikkelen van methoden die Ube3a-varianten empirisch kunnen beoordelen om te bepalen of ze bijdragen aan neurologische ontwikkelingsziekten.

Het UBE3A-enzym behoort tot de HECT-domeinfamilie (homoloog aan E6-AP C-terminus) van E3-ubiquitine-ligases die allemaal het gelijknamige HECT-domein bezitten, dat de biochemische machinerie bevat die nodig is om geactiveerd ubiquitine uit E2-enzymen te accepteren en over te brengen naar substraateiwitten14. Historisch gezien is de karakterisering van E3-enzymen gebaseerd op gereconstitueerde in vitro systemen die een ensemble van gezuiverde eiwitten vereisen 4,15,16. Dergelijke methoden zijn traag en arbeidsintensief en niet vatbaar voor het beoordelen van de activiteit van een groot aantal varianten. In eerder werk werd UBE3A geïdentificeerd om de Wnt-route in HEK293T-cellen te activeren door de functie van het proteasoom te moduleren om de afbraak van β-catenine17 te vertragen. Dit inzicht maakt het gebruik van Wnt-pathway-verslaggevers mogelijk als een efficiënte en snelle methode om zowel verlies- als gain-of-function-varianten van Ube3a18 te identificeren. Het onderstaande protocol beschrijft in detail een methode om Ube3a-varianten te genereren, evenals een op luciferase gebaseerde verslaggever om veranderingen in de activiteit van Ube3a-varianten te beoordelen.

Protocol

1. Mutagenese klonen om Ube3a varianten te genereren Kloon alle Ube3a-varianten in het pCIG2-plasmide (figuur 1A), een bicistronische vector die een kip-β-actinepromotor en een interne ribosoominvoerplaats (IRES) bevat voor EGFP-expressie19. Ube3a-constructies van volledige lengte bevatten een N-terminale Myc-tag-reeks en worden gekloond in pCIG2 met behulp van een 5 ‘SacI-site en een 3’XmaI-site. Bovendien worden…

Representative Results

Grootschalige functionele screening van Ube3a missense-varianten identificeert een breed landschap van verlies- en gain-of-function-mutatiesEerder werk met Ube3a-mutanten suggereerde dat de Wnt-respons kan dienen als een verslaggever van cellulaire UBE3A-eiwitactiviteit. Deze waarnemingen werden uitgebreid en aanvullende validatie-experimenten werden uitgevoerd om te onderzoeken of de BAR-test geschikt is om een reeks UBE3A-activiteiten in de cel te rapporteren. Ten eerste werden HE…

Discussion

Het hier beschreven protocol biedt een efficiënte en schaalbare methode om de enzymatische activiteit van Ube3a-varianten te beoordelen. Er zijn verschillende technische details die een zorgvuldige overweging rechtvaardigen bij het gebruik van deze test. Een overweging is de keuze van Wnt reporter plasmiden die in deze test worden gebruikt. Het hier beschreven protocol maakt specifiek gebruik van de β-catenine activated reporter (BAR)21, een reporter die een concatemeer van 12 T-cell fa…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dit werk werd ondersteund door een Simons Foundation Bridge to Independence Award (SFARI Award #387972; J.J.Y.), een NARSAD Young Investigator Award van de Brain and Behavior Research Foundation (J.J.Y.), een Research Fellowship van de Alfred P. Sloan Foundation (J.J.Y.), en onderzoeksbeurzen van de Angelman Syndrome Foundation (J.J.Y.), de Whitehall Foundation (J.J.Y.) en de NIMH (R01MH122786; J.J.Y.).

Materials

0.05% Trypsin-EDTA (1x), phenol red Gibco 25300-054
1 Kb DNA ladder Lambda Biotech M108-S
100 bp DNA Ladder Lambda Biotech M107
10x Buffer for T4 DNA Ligase with 10 mM ATP New England BioLabs B0202A
5x Phusion HF Reaction Buffer New England BioLabs B0518S
Antibiotic-Antimycotic Solution Corning 30004CI
Black/White Isoplate-96 Black Frame White Well plate PerkinElmer 6005030
Carbenicillin Disodium Salt Midwest Scientific KCC46000-5
Countess cell counting chamber  slides Invitrogen by Thermo Fisher Scientific C10283
Countess II Automated Cell Counter  life technologies Cell counting machine
Custom DNA oligos Integrated DNA Technologies (IDT)
Deoxynucleotide (dNTP) Solution Mix New England BioLabs N0447S
DMEM, high glucose, GlutaMAX Supplement, pyruvate Gibco 10569044 Basal medium for supporting the growth of HEK293T cell line
DPBS (1x) Gibco 14190-136
Dual-Luciferase Reporter Assay System Promega E1910
EcoRI-HF  New England BioLabs R3101S Restriction enzyme
Fetal Bovine Serum, qualified, heat inactivated Gibco 16140071 Fetal bovine serum
Fisherbrand Surface Treated Tissue Culture Dishes Fisherbrand FB012924
FuGENE 6 Transfection Reagent Promega E2691
Gel Loading Dye Purple (6x) New England BioLabs B7024A
HEK293T cells ATCC CRL-3216
High Efficiency ig 10B Chemically Competent Cells Intact Genomics 1011-12 E. coli DH10B cells
HiSpeed Plasmid Midi Kit Qiagen 12643 Midi prep
pCIG2 plasmid
pGL3 BAR plasmid
Phusion HF DNA Polymerase New England BioLabs M0530L DNA polymerase
ProFlex 3 x 32 well PCR System Applied biosystems by life technologies Thermocycler
pTK Renilla plasmid
QIAprep Spin Miniprep Kit (250) Qiagen 27106 Mini prep
QIAquick Gel Extraction Kit (250) Qiagen 28706 Gel purification
QIAquick PCR Purification Kit (250) Qiagen 28106 PCR purification
rCutSmart Buffer New England BioLabs B6004S
SacI-HF New England BioLabs R3156S Restriction enzyme
Synergy HTX Multi-Mode Reader BioTek  Plate reader runs Gen5 software v3.08 (BioTek)
T4 DNA Ligase New England BioLabs M0202L Ligase
TAE Buffer, Tris-Acetate-EDTA, 50x Solution, Electrophoresis Fisher Scientific BP13324
Tissue Culture Plate 96 wells, Flat Bottom Fisherbrand FB012931
UltraPure Ethidium Bromide Solution Invitrogen by Thermo Fisher Scientific 15585011
XmaI New England BioLabs R0180S Restriction enzyme

Referências

  1. Landrum, M. J., et al. ClinVar: Public archive of relationships among sequence variation and human phenotype. Nucleic Acids Research. 42, 980-985 (2014).
  2. Lek, M., et al. Analysis of protein-coding genetic variation in 60,706 humans. Nature. 536 (7616), 285-291 (2016).
  3. Starita, L. M., et al. Variant interpretation: Functional assays to the rescue. American Journal of Human Genetics. 101 (3), 315-325 (2017).
  4. Scheffner, M., Huibregtse, J. M., Vierstra, R. D., Howley, P. M. The HPV-16 E6 and E6-AP complex functions as a ubiquitin-protein ligase in the ubiquitination of p53. Cell. 75 (3), 495-505 (1993).
  5. Albrecht, U., et al. Imprinted expression of the murine Angelman syndrome gene, Ube3a, in hippocampal and Purkinje neurons. Nature Genetics. 17 (1), 75-78 (1997).
  6. Rougeulle, C., Glatt, H., Lalande, M. The Angelman syndrome candidate gene, UBE3A/E6-AP, is imprinted in brain. Nature Genetics. 17 (1), 14-15 (1997).
  7. Vu, T. H., Hoffman, A. R. Imprinting of the Angelman syndrome gene, UBE3A, is restricted to brain. Nature Genetics. 17 (1), 12-13 (1997).
  8. Kishino, T., Lalande, M., Wagstaff, J. UBE3A/E6-AP mutations cause Angelman syndrome. Nature Genetics. 15 (1), 70-73 (1997).
  9. Jiang, Y. H., et al. Mutation of the Angelman ubiquitin ligase in mice causes increased cytoplasmic p53 and deficits of contextual learning and long-term potentiation. Neuron. 21 (4), 799-811 (1998).
  10. Mabb, A. M., Judson, M. C., Zylka, M. J., Philpot, B. D. Angelman syndrome: Insights into genomic imprinting and neurodevelopmental phenotypes. Trends in Neuroscience. 34 (6), 293-303 (2011).
  11. Hogart, A., Wu, D., LaSalle, J. M., Schanen, N. C. The comorbidity of autism with the genomic disorders of chromosome 15q11.2-q13. Neurobiology of Disease. 38 (2), 181-191 (2010).
  12. Urraca, N., et al. The interstitial duplication 15q11.2-q13 syndrome includes autism, mild facial anomalies and a characteristic EEG signature. Autism Research. 6 (4), 268-279 (2013).
  13. de la Torre-Ubieta, L., Won, H., Stein, J. L., Geschwind, D. H. Advancing the understanding of autism disease mechanisms through genetics. Nature Medicine. 22 (4), 345-361 (2016).
  14. Scheffner, M., Staub, O. HECT E3s and human disease. BMC Biochemistry. 8, (2007).
  15. Cooper, E. M., Hudson, A. W., Amos, J., Wagstaff, J., Howley, P. M. Biochemical analysis of Angelman syndrome-associated mutations in the E3 ubiquitin ligase E6-associated protein. Journal of Biological Chemistry. 279 (39), 41208-41217 (2004).
  16. Yi, J. J., Barnes, A. P., Hand, R., Polleux, F., Ehlers, M. D. TGF-beta signaling specifies axons during brain development. Cell. 142 (1), 144-157 (2010).
  17. Yi, J. J., et al. The autism-linked UBE3A T485A mutant E3 ubiquitin ligase activates the Wnt/beta-catenin pathway by inhibiting the proteasome. Journal of Biological Chemistry. 292 (30), 12503-12515 (2017).
  18. Weston, K. P., et al. Identification of disease-linked hyperactivating mutations in UBE3A through large-scale functional variant analysis. Nature Communications. 12 (1), 6809 (2021).
  19. Hand, R., Polleux, F. Neurogenin2 regulates the initial axon guidance of cortical pyramidal neurons projecting medially to the corpus callosum. Neural Development. 6, 30 (2011).
  20. Karginov, A. V., Ding, F., Kota, P., Dokholyan, N. V., Hahn, K. M. Engineered allosteric activation of kinases in living cells. Nature Biotechnology. 28 (7), 743-747 (2010).
  21. Biechele, T. L., Moon, R. T. Assaying beta-catenin/TCF transcription with beta-catenin/TCF transcription-based reporter constructs. Methods in Molecular Biology. , 99-110 (2008).
  22. Yi, J. J., et al. An Autism-linked mutation disables phosphorylation control of UBE3A. Cell. 162 (4), 795-807 (2015).
  23. Kuhnle, S., et al. Angelman syndrome-associated point mutations in the Zn(2+)-binding N-terminal (AZUL) domain of UBE3A ubiquitin ligase inhibit binding to the proteasome. Journal of Biological Chemistry. 293 (47), 18387-18399 (2018).
  24. Yamamoto, Y., Huibregtse, J. M., Howley, P. M. The human E6-AP gene (UBE3A) encodes three potential protein isoforms generated by differential splicing. Genomics. 41 (2), 263-266 (1997).
  25. Avagliano Trezza, R., et al. Loss of nuclear UBE3A causes electrophysiological and behavioral deficits in mice and is associated with Angelman syndrome. Nature Neuroscience. 22 (8), 1235-1247 (2019).
  26. Bossuyt, S. N. V., et al. Loss of nuclear UBE3A activity is the predominant cause of Angelman syndrome in individuals carrying UBE3A missense mutations. Human Molecular Genetics. 30 (6), 430-442 (2021).
check_url/pt/64454?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Stelzer, J. A., Yi, J. J. A Scalable, Cell-Based Method for the Functional Assessment of Ube3a Variants. J. Vis. Exp. (188), e64454, doi:10.3791/64454 (2022).

View Video