Summary

Rickettsia spp.를 Tick 세포주에서 형광 단백질 발현 셔틀 벡터로 형질전환하기 위한 전기천공 방법

Published: October 11, 2022
doi:

Summary

전기 천공은 Rickettsia 속에 외인성 DNA를 도입하기 위해 빠르고 광범위하게 채택 된 방법입니다. 이 프로토콜은 Rickettsia 속의 절대 세포 내 박테리아의 형질 전환에 유용한 전기 천공 방법을 제공합니다.

Abstract

리케차증은 감염된 절지 동물 벡터의 물기를 통해 척추 동물 숙주로 전염 될 수있는 Rickettsia 속에 속하는 광범위한 절대 세포 내 박테리아에 의해 발생합니다. 현재까지 신흥 또는 재출현 유행성 리케차증은 진단 방법이 제한적이고 표준화되거나 보편적으로 접근 할 수 없기 때문에 진단의 어려움으로 인해 공중 보건 위험으로 남아 있습니다. 징후와 증상에 대한 인식 부족으로 인한 오진은 항생제 치료가 지연되고 건강 결과가 좋지 않을 수 있습니다. 리케차 특성에 대한 포괄적 인 이해는 궁극적으로 질병의 통제 및 예방을 개선하여 임상 진단, 평가 및 치료를 향상시킬 것입니다.

리케차 유전자의 기능 연구는 병인에서의 역할을 이해하는 데 중요합니다. 이 논문은 셔틀 벡터 pRAM18dSFA를 사용하여 리케차 파케리 균주 테이트 헬의 전기천공법과 항생제(스펙티노마이신 및 스트렙토마이신)를 사용한 진드기 세포 배양에서 형질전환된 R. 파케리 의 선택을 위한 절차를 설명합니다 . 벡터 세포주에서 형질전환을 확인하는 데 유용한 기술인 공초점 면역형광 현미경을 사용하여 진드기 세포에서 형질전환된 R. parkeri 의 국소화에 대한 방법도 설명합니다. 유사한 접근법이 다른 리케차의 변형에도 적합합니다.

Introduction

리케차증은 리케차 (Rickettsiaceae 가족, 리케차 시알 레스 주문)에 속하는 광범위한 절대 세포 내 박테리아에 의해 발생합니다. Rickettsia 속은 계통 발생 특성1,2에 따라 4 개의 주요 그룹으로 분류됩니다 : 가장 심각하고 치명적인 진드기 매개 리케차증을 유발하는 리케차(예: Rickettsia rickettsii, 로키 산 홍반열의 원인균), 발진티푸스 그룹(TG, 예: Rickettsia prowazekii, 유행성 발진티푸스의 대리인), 과도기 그룹 (TRG, 예 : 리케차 펠리스, 벼룩 매개 홍 반열의 원인균) 및 조상 그룹 (AG, 예 : 리케차 벨리).

가장 오래된 알려진 벡터 매개 질병 중 리케차증은 주로 진드기, 벼룩, 이 및 진드기를 포함한 감염된 절지동물 벡터의 물기를 통해 병원체가 전염된 후 획득됩니다3,4. 효과적인 항생제의 발견으로 치료 결과가 개선되었지만 새롭게 등장하고 다시 등장하는 전염병 리케차증은 전통적인 예방 및 통제 전략에 계속 도전하고 있습니다. 따라서 리케차/숙주/벡터 상호 작용에 대한 포괄적인 이해는 궁극적으로 이러한 고대 질병을 예방하고 치료하기 위한 새로운 접근 방식을 개발하기 위한 강력한 기반을 구축할 것입니다.

자연에서 박테리아의 수평 유전자 전달 (HGT)은 접합, 형질 도입 및 형질 전환5을 통해 발생합니다. 시험관 내 박테리아 형질전환은 이러한 HGT 개념을 활용하지만 리케차의 세포 내 특성에는 몇 가지 문제가 있습니다. 리케차의 다른 종에서 제한된 성장 조건과 잘 이해되지 않은 접합 및 형질 도입 시스템은 리케차 6,7,8에서 접합 및 형질 도입 방법의 적용을 방해했습니다. 다른 절대 세포 내 박테리아 속 (예 : 클라미디아, 콕시 엘라, 아나 플라스마에를리키아)과 비교하여 Rickettsia 속은 세포질 내의 성장 및 복제 전략과 관련하여 다르며, 이는 독특한 생활 방식으로 인해 리케차의 유전자 변형에 특정 문제를 부과합니다9.

리케차의 유전자 변형을 시도 할 때 극복해야 할 초기 장애물은 성공적인 형질 전환을 달성하는 것입니다. 따라서 높은 형질 전환 효율로 실현 가능한 접근법을 설계하는 것은 리케차에 대한 유전 도구를 개발하는 데 매우 중요합니다. 여기에서는 리케차 프로와제키, 리케차 티피, 리케차 코노리, 리케차 파케리, 리케차 몬타넨시스, 리케차 벨리, 리케차 공작, 리케차 부흐네리를 포함한 여러 종의 리케차에 외인성 DNA를 성공적으로 도입하는 데 사용된 널리 알려진 형질전환 방법인 전기천공에 중점을 둡니다. 10,11,12 ,13,14,15,16.

이 논문은 원적색 형광 단백질인 mKATE와 스펙티노마이신 및 스트렙토마이신 내성13,15,20을 부여하도록 설계된 리케차 약시 균주 AaR/SC 플라스미드 pRAM18에서 파생된 셔틀 벡터 pRAM18dSFA를 사용하여 R. parkeri 균주 Tate’s Hell(기탁: GCA_000965145.1)의 전기천공 절차를 설명합니다. 형질전환된 R. 파케리는 진드기 세포주에서 항생제 선택 하에 생존 가능하고 안정적으로 유지된다. 또한 컨포칼 현미경을 통해 살아있는 진드기 세포에서 형질전환된 R. parkeri의 국소화를 사용하여 벡터 세포주의 형질전환 속도를 평가할 수 있음을 보여줍니다.

Protocol

1. 진드기 세포 배양에서 R. parkeri 의 번식 및 정제 참고: 모든 세포 배양 절차는 클래스 II 생물안전 캐비닛에서 수행해야 합니다. 준비 R. parkeri-감염된 진드기 세포5% 소 태아 혈청(FBS), 5% 트립토스 인산염 액체(TPB) 및 0.1% 지단백질 농축액(LPC)이 보충된 L15C300 배지17 5mL에서 34°C의25cm2 세포 배양 플라스크에서 ISE6 ?…

Representative Results

Giemsa 염색 후 광학 현미경으로 ISE6 세포에서 R. parkeri의 형태를 도 1에 나타내었다. 도 2에서, ISE6 세포에서 적색 형광 단백질을 발현하는 형질전환된 R. parkeri를 공초점 현미경을 사용하여 나타내었다. (A) 배양 7일째부터 (B) 10일째까지 ISE6 세포(청색, 핵에 해당)에서 형질전환된 R. 파케리(적색)의 감염률이 실?…

Discussion

여기에서는 전기 천공을 사용하여 셔틀 플라스미드 pRAM18dSFA에 암호화된 외인성 DNA를 리케차에 도입하는 방법을 시연합니다. 이 절차에서, 무세포 리케차는 숙주 세포로부터 정제되고, 리케차 셔틀 벡터로 형질전환되고, 감염을 위해 진드기 세포 상으로 방출되었다. 또한 진드기 세포에서 적색 형광 단백질 발현 R. parkeri 를 검출하기 위한 공초점 면역형광 절차가 설명되어 있습니다. 유사한…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

통찰력 있는 토론과 제안에 대해 Timothy J. Kurtti와 Benjamin Cull에게 감사드립니다. 이 연구는 NIH (2R01AI049424)의 U.G.M.에 대한 보조금과 미네소타 농업 실험소 (MIN-17-078)의 U.G.M. 보조금으로 재정적으로 지원되었습니다.

Materials

0.1 cm gap gene pulser electroporation cuvette Bio-Rad 1652083
2 μm pore size filter  GE Healthcare Life Sciences Whatman 6783-2520
5 mL Luer-lock syringe  BD 309646
60-90 silicon carbide grit  LORTONE, inc  591-056
absolute methanol  Fisher Scientific A457-4
Bacto tryptose phosphate broth  BD 260300
Cytospin centrifuge Cytospin4 Thermo Fisher Scientific A78300003 The rotor is detatchable so the whole rotor can be put into the hood to load infectious samples
EndoFree Plasmid Maxi Kit (10) QIAGEN 12362 used to obtain endotoxin-free pRAM18dSFA plasmid
extended fine tip transfer pipet  Perfector Scientific TP03-5301
fetal bovine serum  Gemini Bio 900-108 The FBS batch has to be tested to make sure ISE6 cells will grow well in it.
Gene Pulser II electroporator with Pulse Controller PLUS Bio-Rad 165-2105 & 165-2110
hemocytometer Thermo Fisher Scientific 267110
HEPES Millipore-Sigma H4034
ImageJ Fiji National Institute of Health raw image editing
KaryoMAX Giemsa stain  Gibco  2021-10-30
Leibovitz's L-15 medium Gibco 41300039
lipoprotein concentrate  MP Biomedicals 191476
Nikon Diaphot Nikon epifluorescence microscope
NucBlue Live ReadyProbes Reagent  Thermo Fisher Scientific R37605
Olympus Disc Scanning Unit (DSU) confocal microscope  Olympus
Petroff-Hausser Counting Chamber Hausser Scientific  Chamber 3900
sodium bicarbonate Millipore-Sigma S5761
Vortex Fisher Vortex Genie 2 12-812

Referências

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Wang, X., Burkhardt, N. Y., Price, L. D., Munderloh, U. G. An Electroporation Method to Transform Rickettsia spp. with a Fluorescent Protein-Expressing Shuttle Vector in Tick Cell Lines. J. Vis. Exp. (188), e64562, doi:10.3791/64562 (2022).

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