Summary

Tek çekirdekli dizileme veya immün boyama için yetişkin fare stria vascularis'in diseksiyonu

Published: April 21, 2023
doi:

Summary

Stria vascularis, endokoklear potansiyelin oluşumu için hayati öneme sahiptir. Burada, yetişkin fare stria vascularis’in tek çekirdekli dizileme veya immün boyama için diseksiyonu sunulmuştur.

Abstract

Stria vascularis tarafından üretilen endokoklear potansiyel, uygun saç hücresi mekanotransdüksiyonuna ve nihayetinde işitmeye elverişli bir ortamı korumak için gereklidir. Stria vascularisin patolojileri işitmenin azalmasına neden olabilir. Erişkin stria vaskülarisin diseksiyonu, odaklanmış tek çekirdekli yakalamaya ve ardından tek çekirdekli dizileme ve immün boyamaya izin verir. Bu teknikler stria vascularis patofizyolojisini tek hücre düzeyinde incelemek için kullanılır.

Tek çekirdekli dizileme, stria vascularisin transkripsiyonel analizi ayarında kullanılabilir. Bu arada, immün boyama, spesifik hücre popülasyonlarını tanımlamada yararlı olmaya devam etmektedir. Her iki yöntem de ön koşul olarak uygun stria vascularis diseksiyonu gerektirir ve bu da teknik olarak zor olabilir.

Introduction

Koklea sıvı dolu üç odadan oluşur: scala vestibuli, scala media ve scala timpani. Scala vestibuli ve scala timpaninin her biri, yüksek konsantrasyonda sodyum (138 mM) ve düşük konsantrasyonda potasyum (6,8 mM)1 içeren perilenf içerir. Scala ortamı, yüksek konsantrasyonda potasyum (154 mM) ve düşük konsantrasyonda sodyum (0,91 mM)1,2,3 içeren endolenf içerir. İyon konsantrasyonundaki bu fark endokoklear potansiyel (EP) olarak adlandırılabilir ve esas olarak potasyum iyonlarının çeşitli iyon kanalları ve stria vascularis’teki (SV) boşluk kavşakları boyunca kokleanın lateral duvarı boyunca hareketi ile üretilir 4,5,6,7,8,9,10,11 . SV, kokleanın lateral duvarının medial yönünü kaplayan heterojen, yüksek vaskülarize bir dokudur ve üç ana hücre tipi içerir: marjinal, orta ve bazal hücreler12 (Şekil 1).

Marjinal hücreler, SV’nin en medial yüzeyini oluşturmak için sıkı bağlantılarla bağlanır. Apikal membran, scala media’nın endolenfine bakar ve KCNE1 / KCNQ1, SLC12A2 ve Na + –K + -ATPaz (NKA) 5,10,13,14 dahil olmak üzere çeşitli kanalları kullanarak endolenf içine potasyum iyonu taşınmasına katkıda bulunur. Ara hücreler, marjinal ve bazal hücreler arasında bulunan ve KCNJ10 (Kir 4.1)15,16 kullanarak SV yoluyla potasyum taşınmasını kolaylaştıran pigmentli hücrelerdir. Bazal hücreler kokleanın lateral duvarına yakın bir yerde bulunur ve perilenf12’den potasyum geri dönüşümünü teşvik etmek için spiral ligamentin fibrositleri ile yakından ilişkilidir. SV’nin patolojisi çok sayıda otolojik bozuklukla ilişkilendirilmiştir17,18. Kcnq1, Kcne1, Kcnj10 ve Cldn11 gibi majör SV hücre tiplerinde eksprese edilen genlerdeki mutasyonlar, EP 19,20,21,22,23 kaybı da dahil olmak üzere sağırlık ve SV disfonksiyonuna neden olabilir. Üç ana hücre tipine ek olarak, SV’de, iğ hücreleri 22, kök hücreler12,24, makrofajlar 25, perisitler 26 ve endotel hücreleri 27 gibi, iyonik homeostazı ve EP 28 oluşumunu içeren eksik tanımlanmış rollere sahip daha az çalışılmış başka hücre tipleri de vardır.

Toplu RNA dizilimine kıyasla, tek çekirdekli RNA dizilimi (sNuc-Seq), bir grup hücre29’daki mRNA’nın ortalamasından ziyade hücre heterojenliği hakkında bilgi sağlar ve heterojen SV30’u incelerken özellikle yararlı olabilir. Örneğin, sNuc-Seq, EP üretiminde, işitme kaybında ve Meniere hastalığında iğ ve kök hücrelerin rolü olabileceğini düşündüren transkripsiyonel analiz üretmiştir18. Çeşitli SV hücre tiplerinin daha ileri transkripsiyonel karakterizasyonu, SV ile ilişkili işitme dalgalanması ve işitme kaybının farklı mekanizmalarının ve alt tiplerinin altında yatan patofizyoloji hakkında bize paha biçilmez bilgiler sağlayabilir. Bu hassas iç kulak yapılarının toplanması, optimal doku analizi için büyük önem taşımaktadır.

Bu çalışmada, sNuc-Seq veya immün boyama için stria vaskülaris’e erişen ve izole eden yetişkin fare kokleasından izole etmek için mikrodiseksiyon yaklaşımı tanımlanmıştır. Yetişkin fare SV’nin diseksiyonu, çeşitli SV hücre tiplerini anlamak ve işitmedeki rollerini daha da karakterize etmek için gereklidir.

Protocol

Tüm hayvan deneyleri ve prosedürleri, Ulusal Nörolojik Hastalıklar ve İnme Enstitüsü Hayvan Bakımı ve Kullanım Komitesi ve Ulusal Sağırlık ve Diğer İletişim Bozuklukları Enstitüsü, Ulusal Sağlık Enstitüleri tarafından onaylanan protokollere göre gerçekleştirilmiştir. Tüm deneysel protokoller, Ulusal Nörolojik Hastalıklar ve İnme Enstitüsü Hayvan Bakımı ve Kullanımı Komitesi ve Ulusal Sağırlık ve Diğer İletişim Bozuklukları Enstitüsü, Ulusal Sağlık Enstitüleri tarafından o…

Representative Results

Bu çalışmada, SV’yi sNuc-Seq veya immün boyama için kullanılacak şekilde izole etmek için bir yöntem sunuyoruz. Kokleanın SV’ye göre ilgili anatomisi (Şekil 1), kullanıcıların SV’nin organizasyonunu ve diseksiyon protokolünün adımlarını daha iyi anlamalarına yardımcı olabilir. SV’nin bir P30 fareden bu mikrodiseksiyonunun her adımı ilişkili videoda detaylandırılmıştır ve SV’nin bu diseksiyonu ve izolasyonunun temel adımlarının anl…

Discussion

Tek hücreli dizilemenin ortaya çıkmasından önce, birçok araştırmacı toplu doku analizi kullandı, bu da sadece hücreler arasında ortalama transkriptomları analiz etmeyi mümkün kıldı. Özellikle, tek hücreli ve sNuc-Seq, sırasıyla tek bir hücrenin veya tek çekirdeğin transkriptomunu izole etmeyi mümkün kılmıştır32. Bu örnekte, marjinal, ara ve bazal hücrelerin yanı sıra iğ hücreleri30 için tek çekirdekli transkriptomlar tanımlanabilir. Bu…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Bu araştırma kısmen NIH’nin Intramural Araştırma Programı, NIDCD to M.H. (DC000088) tarafından desteklenmiştir

Materials

10-µm filter (Polyethylenterephthalat) PluriSelect #43-50010-01 Filter tissue during sNuc-Seq
18 x 18 mm cover glass Fisher Scientific 12-541A Cover slip to mount SV
30-µm filter (Polyethylenterephthalat) PluriSelect #43-50030-03 Filter tissue during sNuc-Seq
75 x 25 mm Superfrost Plus/Colorforst Plus Microslide Daigger EF15978Z Microslide to mount SV on
C57BL/6J Mice The Jackson Laboratory RRID: IMSR_JAX:000664 General purpose mouse strain that has pigment more easily seen in the intermediate cells of the SV.
Cell Counter Logos Biosystems L20001 Used for cell counting
Chalizon curette 5'', size 3 2.5 mm Biomedical Research Instruments 15-1020 Used to transfer SV
Chromium Next GEM single Cell 3' GEM Kit v3.1 Chromium PN-1000141 Generates single cell 3' gene expression libraries
Clear nail polish Fisher Scientific NC1849418 Used for sealing SV mount
Corning Falcon Standard Tissue Culture Dishes, 24 well Corning 08-772B Culture dish used to hold specimen during dissection
DAPI Invitrogen D1306, RRID: AB_2629482 Stain used for nucleus labeling
Dounce homogenizer Sigma-Aldrich D8938 Used to homogenize tissue for sNuc-seq
Dumont #5 Forceps Fine Science Tools 11252-30 General forceps for dissection
Dumont #55 Forceps Fine Science Tools 11255-20 Forceps with fine tip that makes SV manipulation easier
Fetal Bovine Serum ThermoFisher 16000044 Used for steps of sNuc-Seq
Glue stick Fisher Scientific NC0691392 Used for mounting SV
GS-IB4 Antibody Molecular Probes I21411, RRID: AB-2314662 Antibody used for capillary labeling
KCNJ10-ZsGreen Mice n/a n/a Transgenic mouse that expresses KCNJ10-ZsGreen, partiularly in the intermediate cells of the SV.
MgCl2 ThermoFisher AM9530G Used for steps of sNuc-Seq
Mounting reagent ThermoFisher #S36940 Mounting reagent for SV
Multiwell 24 well plate Corning #353047 Plate used for immunostaining
NaCl ThermoFisher AAJ216183 Used for steps of sNuc-Seq
Nonidet P40 Sigma-Aldrich 9-16-45-9 Used for steps of sNuc-Seq
Nuclease free water ThermoFisher 4387936 Used for steps of sNuc-Seq
Orbital shaker Silent Shake SYC-2102A Used for steps of immunostaining
PBS ThermoFisher J61196.AP Used for steps of immunostaining and dissection
RNA Later Invitrogen AM7021 Used for preservation of SV for sNuc-Seq
Scizzors Fine Science Tools 14058-09 Used for splitting mouse skull
Tris-HCl Sigma-Aldrich 15506017 Used for steps of sNuc-Seq
Trypan blue stain Gibco 15250061 Used for cell counting
Tween20 ThermoFisher AAJ20605AP  Used for steps of sNuc-Seq
Zeiss STEMI SV 11 Apo stereomicroscope Zeiss n/a Microscope used for dissections

References

  1. Bosher, S. K., Warren, R. L. Observations on the electrochemistry of the cochlear endolymph of the rat: a quantitative study of its electrical potential and ionic composition as determined by means of flame spectrophotometry. Proceedings of the Royal Society of London. Series B. Biological Sciences. 171 (1023), 227-247 (1968).
  2. Patuzzi, R. Ion flow in stria vascularis and the production and regulation of cochlear endolymph and the endolymphatic potential. Hearing Research. 277 (1-2), 4-19 (2011).
  3. Wangemann, P. K+ cycling and the endocochlear potential. Hearing Research. 165 (1-2), 1-9 (2002).
  4. Adachi, N., et al. The mechanism underlying maintenance of the endocochlear potential by the K+ transport system in fibrocytes of the inner ear. The Journal of Physiology. 591 (18), 4459-4472 (2013).
  5. Hibino, H., Nin, F., Tsuzuki, C., Kurachi, Y. How is the highly positive endocochlear potential formed? The specific architecture of the stria vascularis and the roles of the ion-transport apparatus. Pflugers Archiv. 459 (4), 521-533 (2010).
  6. Lang, F., Vallon, V., Knipper, M., Wangemann, P. Functional significance of channels and transporters expressed in the inner ear and kidney. American Journal of Physiology. Cell Physiology. 293 (4), C1187-C1208 (2007).
  7. Liu, W., Schrott-Fischer, A., Glueckert, R., Benav, H., Rask-Andersen, H. The human "cochlear battery"-claudin-11 barrier and ion transport proteins in the lateral wall of the cochlea. Frontiers in Molecular Neuroscience. 10, 239 (2017).
  8. Marcus, D. C., Wu, T., Wangemann, P., Kofuji, P. KCNJ10 (Kir4.1) potassium channel knockout abolishes endocochlear potential. American Journal of Physiology. Cell Physiology. 282 (2), C403-C407 (2002).
  9. Spicer, S. S., Schulte, B. A. Differentiation of inner ear fibrocytes according to their ion transport related activity. Hearing Research. 56 (1-2), 53-64 (1991).
  10. Wangemann, P., Liu, J., Marcus, D. C. Ion transport mechanisms responsible for K+ secretion and the transepithelial voltage across marginal cells of stria vascularis in vitro. Hearing Research. 84 (1-2), 19-29 (1995).
  11. Yoshida, T., et al. The unique ion permeability profile of cochlear fibrocytes and its contribution to establishing their positive resting membrane potential. Pflugers Archiv. 468 (9), 1609-1619 (2016).
  12. Johns, J. D., Adadey, S. M., Hoa, M. The role of the stria vascularis in neglected otologic disease. Hearing Research. 428, 108682 (2023).
  13. Kim, J., Ricci, A. J. In vivo real-time imaging reveals megalin as the aminoglycoside gentamicin transporter into cochlea whose inhibition is otoprotective. Proceedings of the National Academy of Sciences. 119 (9), e2117846119 (2022).
  14. Zdebik, A. A., Wangemann, P., Jentsch, T. J. Potassium ion movement in the inner ear: insights from genetic disease and mouse models. Physiology. 24, 307-316 (2009).
  15. Chen, J., Zhao, H. B. The role of an inwardly rectifying K+ channel (Kir4.1) in the inner ear and hearing loss. Neuroscience. 265, 137-146 (2014).
  16. Steel, K. P., Barkway, C. Another role for melanocytes: their importance for normal stria vascularis development in the mammalian inner ear. Development. 107 (3), 453-463 (1989).
  17. Ito, T., Nishio, A., Wangemann, P., Griffith, A. J. Progressive irreversible hearing loss is caused by stria vascularis degeneration in an Slc26a4-insufficient mouse model of large vestibular aqueduct syndrome. Neuroscience. 310, 188-197 (2015).
  18. Gu, S., et al. Characterization of rare spindle and root cell transcriptional profiles in the stria vascularis of the adult mouse cochlea. Scientific Reports. 10 (1), 18100 (2020).
  19. Gow, A., et al. Deafness in claudin 11-null mice reveals the critical contribution of basal cell tight junctions to stria vascularis function. The Journal of Neuroscience. 24 (32), 7051-7062 (2004).
  20. Chang, Q., et al. Virally mediated Kcnq1 gene replacement therapy in the immature scala media restores hearing in a mouse model of human Jervell and Lange-Nielsen deafness syndrome. EMBO Molecular Medicine. 7 (8), 1077-1086 (2015).
  21. Faridi, R., et al. Mutational and phenotypic spectra of KCNE1 deficiency in Jervell and Lange-Nielsen Syndrome and Romano-Ward Syndrome. Human Mutation. 40 (2), 162-176 (2019).
  22. Wangemann, P., et al. Loss of KCNJ10 protein expression abolishes endocochlear potential and causes deafness in Pendred syndrome mouse model. BMC Medicine. 2, 30 (2004).
  23. Kitajiri, S. -. I., et al. Expression patterns of claudins, tight junction adhesion molecules, in the inner ear. Hearing Research. 187 (1-2), 25-34 (2004).
  24. Jagger, D. J., Nevill, G., Forge, A. The membrane properties of cochlear root cells are consistent with roles in potassium recirculation and spatial buffering. Journal of the Association for Research in Otolaryngology. 11 (3), 435-448 (2010).
  25. Ito, T., Kurata, N., Fukunaga, Y. Tissue-resident macrophages in the stria vascularis. Frontiers in Neurology. 13, 818395 (2022).
  26. Zhang, J., et al. VEGFA165 gene therapy ameliorates blood-labyrinth barrier breakdown and hearing loss. JCI Insight. 6 (8), e143285 (2021).
  27. Shi, X. Pathophysiology of the cochlear intrastrial fluid-blood barrier (review). Hearing Research. 338, 52-63 (2016).
  28. Gu, S., et al. Identification of potential Meniere’s disease targets in the adult stria vascularis. Frontiers in Neurology. 12, 630561 (2021).
  29. Fischer, J., Ayers, T. Single nucleus RNA-sequencing: how it’s done, applications and limitations. Emerging Topics in Life Sciences. 5 (5), 687-690 (2021).
  30. Korrapati, S., et al. Single cell and single nucleus RNA-Seq reveal cellular heterogeneity and homeostatic regulatory networks in adult mouse stria vascularis. Frontiers in Molecular Neuroscience. 12, 316 (2019).
  31. Pyle, M. P., Hoa, M. Applications of single-cell sequencing for the field of otolaryngology: A contemporary review. Laryngoscope Investigative Otolaryngology. 5 (3), 404-431 (2020).
  32. Hwang, B., Lee, J. H., Bang, D. Single-cell RNA sequencing technologies and bioinformatics pipelines. Experimental & Molecular Medicine. 50 (8), 1-14 (2018).
  33. Shafer, M. E. R. Cross-species analysis of single-cell transcriptomic data. Frontiers in Cell and Developmental Biology. 7, 175 (2019).
  34. Chen, G., Ning, B., Shi, T. Single-cell RNA-Seq technologies and related computational data analysis. Frontiers in Genetics. 10, 317 (2019).
  35. Longo, S. K., Guo, M. G., Ji, A. L., Khavari, P. A. Integrating single-cell and spatial transcriptomics to elucidate intercellular tissue dynamics. Nature Reviews Genetics. 22 (10), 627-644 (2021).
  36. Kim, N., Kang, H., Jo, A., Yoo, S. A., Lee, H. O. Perspectives on single-nucleus RNA sequencing in different cell types and tissues. Journal of Pathology and Translational Medicine. 57 (1), 52-59 (2023).
  37. Grindberg, R. V., et al. RNA-sequencing from single nuclei. Proceedings of the National Academy of Sciences. 110 (49), 19802-19807 (2013).
  38. Montgomery, S. C., Cox, B. C. Whole mount dissection and immunofluorescence of the adult mouse cochlea. Journal of Visuazlied Experiments. (107), e53561 (2016).
check_url/65254?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Strepay, D., Olszewski, R., Taukulis, I., Johns, J. D., Gu, S., Hoa, M. Dissection of Adult Mouse Stria Vascularis for Single-Nucleus Sequencing or Immunostaining. J. Vis. Exp. (194), e65254, doi:10.3791/65254 (2023).

View Video