Summary

Всего-клеточные Recordings Света Вызванные Возбуждающие Synaptic токи в сетчатке глаза фрагмент

Published: July 02, 2008
doi:

Summary

Это видео показывает процесс цельноклеточная напряжения зажим записей в сетчатке глаза кусочек водной саламандры тигра. Мы демонстрируем подготовки срез, а также как выполнять записи патч зажим во время визуальной стимуляции сетчатки.

Abstract

Мы используем цельноклеточная патч зажим методика исследования синаптических схему, которая лежит в основе обработки визуальной информации в сетчатке. В этом видео, мы вас через процесс выполнения цельноклеточная записей света вызвало токов отдельных клеток в сетчатке подготовки срез. Мы используем водную тигра саламандры в качестве животной модели. Мы начнем с описания рассечение глаза и показать, как ломтики установлены для электрофизиологических записей. Как только часть находится в записи камеры, мы покажем, как выполнять цельноклеточная записи напряжения зажимом. Затем проект зрительных раздражителей на фоторецепторы в срезе, чтобы выявить световых вызвала текущие ответы. Во время записи мы заливать срез с фармакологическими препаратами, в результате чего 8-канальный перфузии система позволяет быстро переключаться между различными агентами. Сетчатки подготовки ломтик широко используется для записи патч зажим в сетчатке, в частности для изучения amacrine или биполярных клеток, которые не доступны в целом монтажа подготовки.

Protocol

Решения Внутриклеточное решение для ганглиозных клеток (в мм): 100 К-глюконат, 8 KCl, 1 MgCl 2, 1 EGTA, 10 HEPES, 4 АТФ, ГТФ 0,5, 90 мкМ Sulforhodamine B (для окрашивания), доводят до рН = 7,4 с КОН Внутриклеточное решение для биполярных клеток (в мм): 90 К-глюконат, 8 KCl, 1 2 MgCl, 10 BAPTA, 10 HEPES, 4 АТФ, ГТФ 0,5, 90 …

Discussion

Преимущества:

  1. Все типы клеток, которые доступны
  2. Легкая идентификация типов клеток, в частности, если флуоресцентный краситель добавляется в раствор электрода
  3. Фармакологические средства можно легко добраться до клеток-мишеней
  4. Техника патч зажим позволяет исслед…

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
Multiclamp 700A Patch Clamp Amplifier Molecular Devices    
SZX9 Dissection Micropscope Olympus    
BX50WI Upright Microscope Olympus   Equipped with 40x, 10x water immersion objective, fluorescent filters and mercury lamp
P-97 Micropipette Puller Sutter Instruments    
Lucivid Microscope image injector Mbf bioscience    
8-channel perfusion system Microperfusion Parker Hannfin corporation    
Bits++ Digital Video Processor Cambridge Research Systems    
Infrared Oculars Other ITT    
Adhesive silicone wells Other Molecular Probes   20mm diameter, 1.0mm deep
Membrane Filters Filter Milipore HAWPO1300 .45µm HA
Borosilicate Glass Capillaries Electrode glass World Precision Instruments 1B150-4  
Syringe Filters Filter Whatman 6789-0402 4mm filters, .2um Nylon Membrane, Polypropylene housing
IR camera Micropscope mounted camera Sony SPT-M324 Extrawave HAD, B7W video camera
Picrotoxin Reagent Sigma P1675  
Strychnine Reagent Sigma S0532  
Imidazole-4-acetic acid sodium salt Reagent Sigma I7013  
Larval tiger salamanders Animal Charles E. Sullivan (Nashville, TN)    

References

  1. Cook, P. B., Lukasiewicz, P. D., McReynnolds, J. S. GABA(C) receptors control adaptive changes in a glycinergic inhibitory pathway in salamander retina. Journal of Neuroscience. 20, 806-812 (2000).
  2. Heflin, S. J., Cook, P. B. Narrow and wide field amacrine cells fire action potentials in response to depolarization and light stimulation. Visual Neuroscience. 24, 197-206 (2007).
  3. Ichinose, T., Shields, C. R., Lukasiewicz, P. D. Sodium Channels in the Transient Retinal Bipolar Cells Enhance Visual Responses in Ganglion Cells. J Neurosci.. 25, 1856-1865 (2005).
check_url/771?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Werner, B., Cook, P. B., Passaglia, C. L. Whole-cell Recordings of Light Evoked Excitatory Synaptic Currents in the Retinal Slice. J. Vis. Exp. (17), e771, doi:10.3791/771 (2008).

View Video