Summary

Whole-cell Opnames van Licht prikkelende synaptische Stromingen opgeroepen in het netvlies Slice

Published: July 02, 2008
doi:

Summary

Deze video toont het proces van het whole-cell voltage clamp opnamen in de retinale deel van de in het water levende tijger salamander. Tonen we de voorbereiding van het stuk, alsook hoe de patch clamp opnames uit te voeren tijdens visuele stimulatie van het netvlies.

Abstract

We gebruiken de whole-cell patch clamp techniek om de synaptische circuits die ten grondslag ligt visuele informatieverwerking in het netvlies te bestuderen. In deze video, zullen wij begeleiden u door het proces van het uitvoeren van whole-cell-opnamen van het licht opgeroepen stromingen van de individuele cellen in het netvlies slice voorbereiding. We gebruiken de in het water levende tijger salamander als een diermodel. We beginnen met een beschrijving van de dissectie van het oog en laten zien hoe schijfjes zijn gemonteerd voor elektrofysiologische opnames. Zodra het schijfje is geplaatst in de opname kamer, we laten zien hoe je whole-cell voltage clamp opnames uit te voeren. Vervolgens hebben we het project visuele prikkels op de fotoreceptoren in de slice aan het licht opgewekte stroom reacties uitlokken. Tijdens de opname hebben we perfuseren het segment met farmacologische stoffen, waarbij een 8-kanaals perfusie-systeem stelt ons in staat om snel te schakelen tussen verschillende agenten. Het netvlies slice voorbereiding wordt veel gebruikt voor patch clamp opnames in het netvlies, met name om amacrine of bipolaire cellen, die niet toegankelijk zijn in een geheel-mount voorbereiding van studie.

Protocol

Oplossingen Intracellulaire oplossing voor het ganglion cellen (in mm): 100 K-gluconaat, 8 KCl, 1 MgCl 2, 1 EGTA, 10 HEPES, 4 ATP, GTP 0.5, 90 uM sulforhodamine B (voor de kleuring), aangepast aan pH = 7,4 met KOH Intracellulaire oplossing voor bipolaire cellen (in mm): 90 K-gluconaat, 8 KCl, 1 MgCl 2, 10 BAPTA, 10 HEPES, 4 ATP, GTP 0.5, 90 uM sulforhodamine B (voor de kleuring), aangepast aan pH = 7,4 met KOH Extracellulaire Ringer-oplossing (in mm): 112 NaCl, 5 Gluc…

Discussion

Voordelen:

  1. Alle celtypen zijn toegankelijk
  2. Eenvoudige identificatie van celtypen, met name wanneer een fluorescerende kleurstof wordt toegevoegd aan de elektrode oplossing
  3. Farmacologische middelen gemakkelijk kunt bereiken doelcellen
  4. De patch clamp techniek maakt het mogelijk om de rol van verschillende ionenkanalen te onderzoeken in het netvlies berekeningen. Dezelfde informatie kan niet worden verkregen via extracellulaire spike-opnamen of opnamen met scherpe elektroden.
    <…

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
Multiclamp 700A Patch Clamp Amplifier Molecular Devices    
SZX9 Dissection Micropscope Olympus    
BX50WI Upright Microscope Olympus   Equipped with 40x, 10x water immersion objective, fluorescent filters and mercury lamp
P-97 Micropipette Puller Sutter Instruments    
Lucivid Microscope image injector Mbf bioscience    
8-channel perfusion system Microperfusion Parker Hannfin corporation    
Bits++ Digital Video Processor Cambridge Research Systems    
Infrared Oculars Other ITT    
Adhesive silicone wells Other Molecular Probes   20mm diameter, 1.0mm deep
Membrane Filters Filter Milipore HAWPO1300 .45µm HA
Borosilicate Glass Capillaries Electrode glass World Precision Instruments 1B150-4  
Syringe Filters Filter Whatman 6789-0402 4mm filters, .2um Nylon Membrane, Polypropylene housing
IR camera Micropscope mounted camera Sony SPT-M324 Extrawave HAD, B7W video camera
Picrotoxin Reagent Sigma P1675  
Strychnine Reagent Sigma S0532  
Imidazole-4-acetic acid sodium salt Reagent Sigma I7013  
Larval tiger salamanders Animal Charles E. Sullivan (Nashville, TN)    

References

  1. Cook, P. B., Lukasiewicz, P. D., McReynnolds, J. S. GABA(C) receptors control adaptive changes in a glycinergic inhibitory pathway in salamander retina. Journal of Neuroscience. 20, 806-812 (2000).
  2. Heflin, S. J., Cook, P. B. Narrow and wide field amacrine cells fire action potentials in response to depolarization and light stimulation. Visual Neuroscience. 24, 197-206 (2007).
  3. Ichinose, T., Shields, C. R., Lukasiewicz, P. D. Sodium Channels in the Transient Retinal Bipolar Cells Enhance Visual Responses in Ganglion Cells. J Neurosci.. 25, 1856-1865 (2005).

Play Video

Cite This Article
Werner, B., Cook, P. B., Passaglia, C. L. Whole-cell Recordings of Light Evoked Excitatory Synaptic Currents in the Retinal Slice. J. Vis. Exp. (17), e771, doi:10.3791/771 (2008).

View Video