Summary

DNA - النظائر المستقرة جس (DNA - SIP)

Published: August 02, 2010
doi:

Summary

DNA – النظائر مستقرة تحقق هو أسلوب زراعة مستقل لتحديد وتوصيف المجتمعات النشطة من الكائنات الحية الدقيقة التي هي قادرة على الاستفادة من ركائز محددة. استيعاب الركيزة المخصب في النظائر الثقيلة يؤدي إلى دمج ذرات المسمى في الكتلة الحيوية الميكروبية. الكثافة تنبيذ فائق التدرج يسترد الحمض النووي المسمى لتحاليل جزيئية المصب.

Abstract

DNA – النظائر مستقرة تحقق (DNA – SIP) هو أسلوب قوي للتعرف على الميكروبات النشطة التي ركائز استيعاب الكربون والمواد الغذائية ولا سيما في الكتلة الخلوية. على هذا النحو ، وقد تم زراعة هذه التقنية المستقلة منهجية هامة لإسناد وظيفة التمثيل الغذائي للمجتمعات التي تسكن مجموعة متنوعة واسعة من البيئات البرية والمائية. بعد حضانة عينة بيئية مستقرة ، مع النظائر المركبات المسمى ، يخضع لاستخراج الحمض النووي تنبيذ فائق التدرج الكثافة واللاحقة تجزيء متدرجة لفصل الأحماض النووية للكثافات مختلفة. باسترداد المسمى تنقية الحمض النووي من كلوريد السيزيوم ولا تحمل علامات الحمض النووي لالتوصيف الجزيئي لاحقة (مثل بصمات الأصابع ، ميكروأرس والمكتبات استنساخ ، metagenomics). إن الرب الفيديو هذا البروتوكول يوفر البصرية خطوة بخطوة تفسيرات للبروتوكول للتجزيء الكثافة تنبيذ فائق التدرج التدرج ، والانتعاش من الحمض النووي المسمى. البروتوكول يتضمن أيضا نموذج بيانات المسبار ويسلط الضوء على النصائح الهامة ويحذر التي يجب مراعاتها لضمان نجاح المسبار الحمض النووي التحليل.

Protocol

1. إعداد الكواشف DNA – SIP يتطلب استخدام الكواشف التي ينبغي أن تكون معدة مسبقا من الإجراء الفعلي. يتم سرد كل الاتجاهات لإعداد كاشف في هذا القسم ويتم تعديلها من بروتوكول SIP السابق 1. <li style=";text-align:right;direction:rtl…

Discussion

التصميم السليم للنظائر مستقرة ، يحقق التجارب ذات أهمية حاسمة للحصول على الحمض النووي المسمى أعلاه المجتمع الخلفية لا تحمل علامات. وقد نوقشت الاعتبارات المتصلة عينة مرات الحضانة ، وتركيزات الركيزة ، وشروط الحضانة (المواد الغذائية على سبيل المثال ، رطوبة التربة) ، عب?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

وأيد هذا العمل عن طريق المنح والمشاريع الاستراتيجية لاكتشاف JDN من العلوم الطبيعية والهندسة مجلس البحوث كندا (NSERC).

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
Bromophenol Blue Reagent Fisher Scientific BP115-25  
Cesium chloride Reagent Fisher Scientific BP210-500  
Ethanol, reagent grade Reagent Sigma-Aldrich 652261  
Ethidium bromide Reagent Sigma-Aldrich E1510  
Hydrochloric acid Reagent Fisher Scientific 351285212  
Linear polyacrylamide Reagent Applichem A6587  
Polyethylene Glycol 6000 Reagent VWR CAPX1286L-4  
Potassium Chloride Reagent Fisher Scientific AC42409-0010  
Sodium Chloride Reagent Fisher Scientific S2711  
Sodium Hydroxide pellets Reagent Fisher Scientific S3181  
Tris base Reagent Fisher Scientific BP1521  
Dark Reader Equipment Clare Chemical DR46B  
Microcentrifuge Equipment Eppendorf 5424 000.410  
Nanodrop 2000 Equipment Fisher Scientific 361013650  
Infusion pump Equipment Braintree Scientific N/A Model Number: BSP
See www.braintreesci.com for ordering details.
Tube sealer Equipment Beckman-Coulter 358312  
Ultracentrifuge Equipment Beckman-Coulter    
Ultracentrifuge rotor Equipment Beckman-Coulter 362754  
Ultraviolet light source Equipment UVP Inc. 95-0017-09 Any UV source will suffice
Ultraviolet light face shield Equipment Fisher Scientific 114051C  
Butyl rubber stoppers, gray Material Sigma-Aldrich 27232  
Centrifuge tubes Material Beckman-Coulter 342412  
Hypodermic needle, 23 gauge, 2” length Material BD 305145  
Microfuge tubes, 1.5 mL Material DiaMed AD151-N500  
Open center seals, 20 mm diameter Material Sigma-Aldrich 27230-U  
Pasteur pipettes, glass Material Fisher Scientific 13-678-6C  
Pipet tips Material DiaMed BPS340-1000 Catalogue number is for 200 μl tips. 10 or 20 μl tips may be purchased from the same source
Pump tubing 1.5 mm bore x 1.5 mm wall Material Appleton Woods    
Screw-cap tubes, 15 mL Material DiaMed AD15MLP-S  
Serum vials, 125 mL volume Material Sigma-Aldrich Z114014  
Syringe, 60 mL Material BD 309653  

References

  1. Neufeld, J. D. DNA stable-isotope probing. Nat. Protocols. 2, 860-866 (2007).
  2. Neufeld, J. D., Boden, R., Moussard, H., Schäfer, H., Murrell, J. C. Substrate-specific clades of active marine methylotrophs associated with a phytoplankton bloom in a temperate coastal environment. Appl. Environ. Microbiol. 74, 7321-7328 (2009).
  3. Nercessian, O., Noyes, E., Kalyuzhnaya, M. G., Lidstrom, M. E., Chistoserdova, L. Bacterial populations active in metabolism of C1 compounds in the sediment of Lake Washington, a freshwater lake. Appl. Environ. Microbiol. 71, 6885-6899 (2005).
  4. Padmanabhan, P. Respiration of 13C-labelled substrates added to soil in the field and subsequent 16S rRNA gene analysis of 13C-labelled soil DNA. Appl. Environ. Microbiol. 69, 1614-1622 (2003).
  5. Bernard, L. Dynamics and identification of soil microbial populations actively assimilating carbon from 13C-labelled wheat residue as estimated by DNA- and RNA-SIP techniques. Environ. Microbiol. 9, 752-764 (2007).
  6. Haichar, e. l. Z. a. h. a. r., F, . Identification of cellulolytic bacteria in soil by stable isotope probing. Environ. Microbiol. 9, 625-634 (2007).
  7. Addison, S., McDonald, I., Lloyd-Jones, G. Stable isotope probing: Technical considerations when resolving 15N-labelled RNA in gradients. J. Microbiol. Meth. 80, 70-75 (2009).
  8. Buckley, D. H., Huangyutitham, V., Hsu, S. -. F., Nelson, T. A. Stable isotope probing with 15N achieved by disentangling the effects of genome G + C content and isotope enrichment on DNA density. Appl. Environ. Microbiol. 73, 3189-3195 (2007).
  9. Schwartz, E. Characterization of growing microorganisms in soil by stable isotope probing with H218O. Appl. Environ. Microbiol. 73, 2541-2546 (2007).
  10. Neufeld, J. D., Dumont, M. G., Vohra, J., Murrell, J. C. Methodological considerations for the use of stable isotope probing in microbial ecology. Microb. Ecol. 53, 435-442 (2007).
  11. Martineau, C., Whyte, L., Greer, C. Development of a SYBR safe technique for the sensitive detection of DNA in cesium chloride density gradients for stable isotope probing assays. J. Microbiol. Meth. 73, 199-202 (2008).
  12. Bartram, A. K., Poon, C., Neufeld, J. D. Nucleic acid contamination of glycogen used in nucleic acid precipitation and assessment of linear polyacrylamide as an alternative co-precipitant. Biotechniques. 47, 1019-1022 (2009).
  13. Chen, Y. Revealing the uncultivated majority: combining DNA stable-isotope probing, multiple displacement amplification and metagenomic analyses of uncultivated Methylocystis in acidic peatlands. Environ. Microbiol. 10, 2609-2622 (2008).
  14. Neufeld, J. D., Chen, Y., Dumont, M. G., Murrell, J. C. Marine methylotrophs revealed by stable-isotope probing, multiple displacement amplification and metagenomics. Environ. Microbiol. 10, 1526-1535 (2008).
  15. Kalyuzhnaya, M. High-resolution metagenomics targets specific functional types in complex microbial communities. Nat. Biotechnol. 26, 1029-1034 (2008).
  16. Binga, E. K., Lasken, R. S., Neufeld, J. D. Something from (almost) nothing: the impact of multiple displacement amplification on microbial ecology. ISME J. 2, 233-241 (2008).
  17. Green, S. J., Leigh, M. B., Neufeld, J. D., Timmis, K. N. . Microbiology of Hydrocarbon and Lipid Microbiology. , 4137-4158 (2010).
  18. Neufeld, J. D., Wagner, M., Murrell, J. C. Who eats what, where and when? Isotope-labelling experiments are coming of age. ISME J. 1, 103-110 (2007).
  19. Gallagher, E., McGuinness, L., Phelps, C., Young, L. Y., Kerkhof, L. J. DNA shortens the incubation time needed to detect benzoate-utilizing denitrifying bacteria by stable-isotope probing. Appl. Environ. Microbiol. 71, 5192-5196 .
check_url/2027?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Dunford, E. A., Neufeld, J. D. DNA Stable-Isotope Probing (DNA-SIP). J. Vis. Exp. (42), e2027, doi:10.3791/2027 (2010).

View Video