Summary

الطريقة الثقافة القوارض باستخدام الأجنة الجامع للثقافة الدوار زجاجة من نوع النظام

Published: August 28, 2010
doi:

Summary

ثقافة بأكملها تقنية الجنين يسمح لنا الماوس الثقافة وأجنة الفئران<em> خارج الحي</em> حالة فترات محدودة خلال المقابلة الى مراحل midgestation. في هذا البروتوكول الفيديو ، ونظهر إجراءاتنا القياسية للثقافة الفئران الجنين كله بعد E12.5 باستخدام زجاجة الثقافة المدورة من نوع النظام.

Abstract

وقد وضعت كلها الجنين الثقافة (WEC) في عام 1950 أسلوب جديد من قبل وزملائه ، وقدم طلبا للعلم الأحياء التطوري 1. على الرغم من تطور ونمو أجنة من الثدييات التي تعتمد بشكل حاسم على وظيفة المشيمة ، WEC تقنية تسمح لنا الماوس الثقافة وأجنة الفئران السابقين شرط المجراة خلال فترات محدودة الموافق المراحل الجنينية midgestation خلال اليوم (E) 6.5 في E12.5 الماوس أو E8.5 – E14.5 في الفئران 2 ، 3 ، 4. في WEC ، يمكننا مباشرة الهدف المنشود مجالات الاجنة باستخدام الشعيرات الدموية الدقيقة الزجاج لأنه لا يمكن التلاعب بها أجنة تحت المجهر. لذلك ، WEC القوارض هو تقنية مفيدة جدا عندما نريد دراسة العمليات التنموية الحيوية للأجنة الثدييات postimplanted. حتى الآن ، وقد تم تطوير عدة أنواع من النظم WEC 1. من بين هؤلاء ، زجاجة الثقافة المدورة من نوع النظام هو الأكثر شعبية ومناسبة على المدى الطويل ثقافة أجنة في midgestation ، أي بعد وE9.5 E11.5 في الفأر والجرذان ، على التوالي 1. في هذا البروتوكول الفيديو ، ونظهر بمستوى إجراءاتنا WEC الفئران بعد E12.5 باستخدام نموذج راق في النظام المدورة الأصلي ، الذي صممه كوكروفت جديدة و 5 و 6 ، وإدخال مختلف تطبيقات تقنية WEC للدراسات الإنمائية في الثدييات البيولوجيا.

Protocol

1. إعداد نظام WEC مشترك غشاء 0.22 ميكرون تصفية لمدخل أنبوب السيليكون داخل النظام WEC أ). فتح صمام اسطوانة الغاز التي تحتوي على O 2 (95 ٪) وثاني أكسيد الكربون 2 (5 ٪). تدفق خليط الغاز في ?…

Discussion

هناك نوعان من الخطوات الحاسمة في WEC القوارض للنجاح. أولا ، ينبغي إجراء تشريح لا تكون دقيقة إلى الأجنة الضرر ، لا سيما الأوعية الدموية. ثانيا ، ينبغي أن يكون الإجراء في أسرع وقت ممكن لأن الاوكسجين والمغذيات لم تعد الموردة عبر المشيمة بعد العزلة من الرحم. هذا أمر بالغ ال?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

نشكر السيد هاجيمي Ichijo النصائح لتسجيل الفيديو ومفيدة لتحرير الفيديو. ونحن نشكر أيضا Drs.Yuji Tsunekawa وYoshizaki Kaichi لمساعد النوع لتسجيل الفيديو. ويدعم هذا العمل KAKENHI على B والعلماء الشباب على العلوم الأولوية مناطق الدماغ الجزيئية من وزارة التربية في اليابان. نعترف دعم البرنامج العالمي لمجلس أوروبا "مركز البحوث الأساسية وبالحركة العالمية للعلوم الدماغ" من وزارة التربية واليابان للأبحاث الأساسية للعلوم والتكنولوجيا تطوري (كريست) من العلوم اليابانية وشركة التكنولوجيا اليابانية من علوم والتكنولوجيا وكالة (JST) .

Materials

Name Type Company Catalog Number Comment
Setting up WEC
WEC system (10-0310) Tool Ikemoto Rika 010-0310 Another small model is also available.
Silicon plug without a hole Tool Ikemoto Rika 010-032-08  
Gas mixture cylinder Tool Nikko Sanso Containing 95% oxygen & 5% carbon dioxide. Custom order.
Gas regulator Tool Ono Seisakusho WR-11  
0.22 μm filter Millex GS Tool Millipore SLGS033SS  
Anesthesia and isolation of the uterus
Large scissors Tool Napox B-7H  
Forceps Tool Napox A-3-2  
Disposal Petri dish
(90 mm x 15 mm)
Tool Iwaki SH90-15 Deep-type dish is the best for dissection.
Isoflurane Reagent Abbott B506 For anesthesia
Pentobarbital sodium Reagent Schering-Plough Animal Health For anesthesia
Tyrode’s saline Reagent According as the protocol in Ref. 2. Save at 4°C.
Timed-pregnant Sprague-Dawley rat Animal Charles Rivers Laboratories Japan  
Preparation of culture medium
Culture glass bottle Tool Ikemoto Rika 010-032-05  
Disposal culture bottle Tool Ikemoto Rika 010-032-06  
Silicon plug with hole Tool Ikemoto Rika 010-032-07  
Aluminum foil Tool Any company  
Autoclaving bag Tool Hogy HM-26 For culture bottles
Autoclaving bag Tool Hogy HM-14A For silicon plugs
0.45 μm filter Millex HA Tool Millipore SLHA033SS  
50 ml conical tube Tool Becton Dickinson 352070  
100 ml beaker Tool Iwaki TE-32  
Rat IC serum Reagent Charles Rivers Laboratories Japan Refer to: Mr. Kunihiko Morisaki,
TEL: +81-(0) 45-474-9336; FAX: +81-(0) 45-474-9340
D(+)-Glucose Reagent Wako 041-00595  
Antibiotic-antimyotic liquid Reagent Gibco 15240  
Dissection of embryos
Ophthalmic straight scissors Tool Napox MB50-7 For cutting the uterine wall
Ophthalmic curved scissors Tool Napox MB54-2 For cutting the yolk sac
Forceps #5 Tool Vigor T6715  
Forceps #5F Tool Regine T6819  
Glass pipette Tool Made by hand using Pasteur pipette.
Autoclaving bag Tool Hogy HM-4 For glass pipettes
Binocular microscope Tool Leica Mz7s  
Light Tool Leica CLS 150XD  
Oil stone Tool Uchida Yoko 833-2000 For sharpening of forceps
Machine oil Tool Uchida Yoko 835-0000 For sharpening of forceps

References

  1. New, D. A. T., Copp, A. J., Cockroft, D. L. Intoroduction. In mammalian postimplantation embryos. In Mammalian Postimplantation Embryos A Practical Approach. , 1-14 (1990).
  2. Cockroft, D. L., Copp, A. J., Cockroft, D. L. Dissection and culture of post implantation embryos. In Mammalian Postimplantation Embryos A Practical Approach. , 15-40 (1990).
  3. Morris-Kay, G. M. Postimplantation mammalian embryos. Essential Developmental Biology A Practical Approach. , 55-66 (1993).
  4. Fujinaga, M., Tuan, R. S., Lo, C. W. In vitro culture of rodent embryos during the early postimplantation period. Developmental Biology Protocols. , 53-76 (2000).
  5. Eto, K., Takakubo, F. Improved development of rat embryos in culture during the period of craniofacial morphogenesis. J. Craniofac. Genet. Dev. Biol. 5, 351-355 (1985).
  6. New, D. A., Cockroft, D. L. A rotating bottle culture method with continuous replacement of the gas phase. Experientia. 35, 138-140 (1979).
  7. Osumi-Yamashita, N., Ninomiya, Y., Eto, K. Mammalian craniofacial embryology in vitro. Int. J. Dev. Biol. 41, 187-194 (1997).
  8. Inoue, T., Nakamura, S., Osumi, N. Fate mapping of the mouse prosencephalic neural plate. Dev. Biol. 219, 373-383 (2000).
  9. Nomura, T., Holmberg, J., Frisen, J., Osumi, N. Pax6-dependent boundary defines alignment of migrating olfactory cortex neurons via the repulsive activity of ephrin A5. Development. 133, 1335-1345 (2006).
  10. Inoue, Y. U., Asami, J., Inoue, T. Genetic labeling of mouse rhombomeres by Cadherin-6::EGFP-BAC transgenesis underscores the role of cadherins in hindbrain compartmentalization. Neurosci. Res. 63, 2-9 (2009).
  11. Calegari, F., Huttner, W. B. An inhibition of cyclin-dependent kinases that lengthens, but does not arrest, neuroepithelial cell cycle induces premature neurogenesis. J. Cell Sci. 116, 4947-4955 (2003).
  12. Osumi, N., Inoue, T. Gene transfer into cultured mammalian embryos by electroporation. Methods. 24, 35-42 (2001).
  13. Arai, Y. Role of Fabp7, a downstream gene of Pax6, in the maintenance of neuroepithelial cells during early embryonic development of the rat cortex. J. Neurosci. 25, 9752-9761 (2005).
  14. Takahashi, M., Nomura, T., Osumi, N. Transferring genes into cultured mammalian embryos by electroporation. Dev. Growth Differ. 50, 485-497 (2008).
check_url/2170?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Takahashi, M., Osumi, N. The Method of Rodent Whole Embryo Culture using the Rotator-type Bottle Culture System. J. Vis. Exp. (42), e2170, doi:10.3791/2170 (2010).

View Video