Summary

Whole-cell opname van calcium release-Activated Calcium (CRAC) Stromingen in menselijke T-lymfocyten

Published: December 21, 2010
doi:

Summary

Wij bieden een stap-voor-stap protocol voor whole-cell patch clamp opname van calcium release-Activated Calcium (CRAC) stromingen in het perifere bloed mononucleaire cel afkomstige menselijke T-lymfocyten.

Abstract

In T-lymfocyten, uitputting van Ca 2 + van de intracellulaire Ca 2 + op te slaan leidt tot activatie van plasmalemmal Ca 2 +-kanalen, de zogenaamde Calcium Release-Activated Calcium (CRAC) kanalen. CRAC kanalen spelen een belangrijke rol in de regulatie van de T-cel proliferatie en genexpressie. Abnormale CRAC kanaal functie in T-cellen is in verband gebracht met ernstige gecombineerde immunodeficiëntie en auto-immuunziekten 1, 2. Studeren CRAC kanaal functie in menselijke T-cellen kunnen ontdekken nieuwe moleculaire mechanismen tot regeling van een normale immuunrespons en ontrafelen van de oorzaken van verwante ziekten bij de mens. Elektrofysiologische registraties van membraan stromen de meest accurate beoordeling van de functionele kanaal eigenschappen en hun regelgeving. Elektrofysiologische beoordeling van de CRAC kanaal stromingen in Jurkat T-cellen, een menselijke leukemie T-cellijn, werd voor het eerst uitgevoerd meer dan 20 jaar geleden 3, echter, CRAC huidige metingen in normale menselijke T-cellen blijft een uitdagende taak. De moeilijkheden in de opname CRAC kanaal stromen in normale T-cellen worden nog verergerd door het feit dat op basis van bloed T-lymfocyten zijn veel kleiner in omvang dan Jurkat T-cellen en dus de endogene whole-cell CRAC stromingen zijn zeer laag in amplitude. Hier geven we een stap-voor-stap procedure die we regelmatig gebruiken om de Ca 2 + plaat of Na + stromen via CRAC kanalen in rustende humane T-cellen geïsoleerd uit het perifere bloed van gezonde vrijwilligers. De hier beschreven methode is overgenomen uit de procedures voor de registratie van de CRAC stromingen in Jurkat T-cellen en geactiveerde humane T-cellen 4-8.

Protocol

1. De voorbereiding van Resting Human T-lymfocyten Met behulp van RosetteSep humane T-cel Verrijking Cocktail en RosetteSep Density Medium, te zuiveren T-cellen uit menselijk bloed monsters volgens de instructies van de fabrikant. De resulterende celpopulatie moet bevatten 95% CD3 + rustende T-cellen. We zuiveren humane T-lymfocyten uit het perifere bloed monsters van gezonde vrijwilligers in overeenstemming met het protocol dat is goedgekeurd door de UC Davis interne Review Board. Na iso…

Discussion

De elektrofysiologische onderzoek van CRAC stromingen in rustende humane T-cellen is een uitdagende taak, omdat de endogene CRAC huidige amplitude in deze cellen is klein door de kleine celgrootte (de rustende humane T-cel met een diameter in het bereik van 5-8 um). Hier geven we een stap-voor-stap procedure om betrouwbaar te nemen CRAC stromingen in rustende humane T-lymfocyten geïsoleerd uit perifeer bloed mononucleaire cellen. Deze technologie stelt ons in staat om de fysiologie en de functionele expressie van CRAC …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

We zijn dankbaar aan de afdeling Fysiologie en Membrane Biology, University of California Davis voor het aanbieden van ons met faciliteiten en een uitstekende omgeving voor de studie van ion-kanalen.

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
RosetteSep Human T Cell Enrichment Cocktail   StemCell Technologies, Vancouver, BC, Canada 15061  
RosetteSep Density Medium   StemCell Technologies 15705  
RPMI-in 1640 medium w/glutamine/HEPES   Fisher, Waltham, MA SH3025501  
Fetal Calf Serum   Omega Scientific, Tarzana, CA FB-01  
GlutaMAX-I (100X solution)   Invitrogen, Carlsbad, CA 35050  
RPMI 1640 vitamin solution (100X)   Sigma-Aldrich 7256  
1640 amino acids solution (50X)   Sigma-Aldrich R7131  
Sodium pyruvate   Sigma-Aldrich S8636  
β-Mercaptoethanol   Sigma-Aldrich M7522  
Inositol trisphosphate   Sigma-Aldrich 19766  
BAPTA   Sigma-Aldrich A4926  
Poly-L-Lysine Hydrobromide   Sigma-Aldrich P2636  
Lanthanum Chloride   Sigma-Aldrich 262072  
Thapsigargin   Calbiochem 586005  
Sylgard 184 Silicon Elastomer Kit   Dow Corning, Midland, MI 3097358-1004  
HIPEC R6101 Semiconductor Protective Coating   Dow Corning, Midland, MI    
63-500 Series High-Performance Vibration Isolation Lab Table   Technical Manufacturing, Peabody, MA 63-540  
EPC 10 patch clamp amplifier with headstage   HEKA Instruments, Bellmore, NY    
Micromanipulator   Sutter Instrument, Novato, CA MP-285  
Olympus 1X71 Inverted microscope with 40x oil immersion objective   Olympus America, Center Valley, PA 1X71  
Windows Computer   Dell    
Pulse software   HEKA Instruments    
Origin Scientific Graphing and Analysis Software   OriginLab, Northampton, MA    
Patch pipette puller   Sutter Instrument P-97  
Borosilicate glass with filament (O.D.: 1.5mm and I.D.: 1.10mm   Sutter Instrument BF150-110-7.5  
Narashige’s Microforge   Tritech Research, Los Angeles, CA MF-830  
Silicon O-rings   McMASTER-CARR, Santa Fe Springs, CA 111 S70  
Coverslips 25 mm   Fisher Scientific 12-545-102 25 mm 25CIR.-1  

References

  1. Parekh, A. B. Store-operated CRAC channels: function in health and disease. Nat Rev Drug Discov. 9, 399-410 (2010).
  2. Feske, S. CRAC channelopathies. Pflugers Arch. , (2010).
  3. Lewis, R. S., Cahalan, . Mitogen-induced oscillations of cytosolic Ca2+ and transmembrane Ca2+ current in human leukemic T cells. Cell Regul. 1, 99-112 (1989).
  4. Zweifach, A., Lewis, R. S. Rapid inactivation of depletion-activated calcium current (ICRAC) due to local calcium feedback. J Gen Physiol. 105, 209-226 (1995).
  5. Zweifach, A., Lewis, R. S. Slow calcium-dependent inactivation of depletion-activated calcium current. Store-dependent and -independent mechanisms. J Biol Chem. 270, 14445-1451 (1995).
  6. Zweifach, A., Lewis, R. S. Calcium-dependent potentiation of store-operated calcium channels in T lymphocytes. J Gen Physiol. 107, 597-610 (1996).
  7. Prakriya, M., Lewis, R. S. Separation and characterization of currents through store-operated CRAC channels and Mg2+-inhibited cation (MIC) channels. J Gen Physiol. 119, 487-507 (2002).
  8. Fomina, A. F., Fanger, C. M., Kozak, J. A., Cahalan, . Single channel properties and regulated expression of Ca(2+) release-activated Ca(2+) (CRAC) channels in human T cells. J Cell Biol. 150, 1435-1444 (2000).
  9. Sakmann, B., Neher, E. . Single-Channel Recording. , (1995).
  10. Neher, E. Correction for liquid junction potentials in patch clamp experiments. Methods Enzymol. 207, 123-1231 (1992).
check_url/2346?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Thakur, P., Fomina, A. F. Whole-Cell Recording of Calcium Release-Activated Calcium (CRAC) Currents in Human T Lymphocytes. J. Vis. Exp. (46), e2346, doi:10.3791/2346 (2010).

View Video