Summary

ヒトTリンパ球におけるカルシウム放出、活性化カルシウム(CRAC)電流のホールセル記録

Published: December 21, 2010
doi:

Summary

我々は、末梢血単核細胞由来のヒトTリンパ球におけるカルシウム放出、活性化カルシウム(CRAC)電流の全細胞パッチクランプ記録のためのステップバイステップのプロトコルを提供しています。

Abstract

Tリンパ球で、細胞内Ca 2 +ストアからのCa 2 +枯渇は、カルシウムのリリース-活性化カルシウム(CRAC)チャネルと呼ばれる細胞膜のCa 2 +チャネルの活性化につながる。 CRACチャネルは、T細胞の増殖と遺伝子発現の調節において重要な役割を果たしている。 T細胞の異常なCRACチャネル機能は、重症複合免疫不全や自己免疫疾患1、2にリンクされています。ヒトT細胞のCRACチャネルの機能を研究することは正常な免疫反応を調節する新たな分子メカニズムを明らかにし、関連するヒト疾患の原因を解明することができる。膜電流の電気生理学的記録は、機能的なチャネルのプロパティとその規制の最も正確な評価を行うこと。 Jurkat T細胞、ヒト白血病T細胞株、のCRACチャネル電流の電気生理学的評価が最初に20年以上前に3を実行された、しかし、正常なヒトT細胞におけるCRAC電流測定は困難な課題である。正常T細胞でCRACチャネル電流を記録するの難しさは、血液由来のTリンパ球は、Jurkat T細胞よりもはるかに小さいサイズと、従って、内因性の細胞全体のCRAC電流は振幅が非常に低いものであるという事実によって悪化されています。ここで、我々は日常的に健康なボランティアの末梢血から単離されたヒトT細胞の休止のCRACチャネル経由でのCa 2 +又はNa +電流を記録するために使用するステップバイステップの手順を与える。ここで説明する方法は、Jurkat T細胞および活性化ヒトT細胞4-8にCRAC電流を記録するために使用される手続きから導入されました。

Protocol

1。一休みするヒトTリンパ球の調製 RosetteSepヒトT細胞の濃縮カクテルとRosetteSep密度培地を用いて、製造元の指示に従って、人間の血液サンプルからT細胞を精製する。結果として得られる細胞集団は95%CD3 +安静時のT細胞が含まれている必要があります。私たちは、カリフォルニア大学デ​​ービス校の内部審査委員会によって承認されたプロトコールに従って健康なボランテ…

Discussion

これらの細胞中の内因性CRAC電流振幅が小さいセルサイズ(安静時のヒトT細胞の直径は5〜8μmの範囲にある)のために小さいため、ヒトT細胞の休止のCRAC電流の電気生理学的研究は困難な作業です。ここで、我々は確実に末梢血単核細胞から単離されたヒトTリンパ球を休んでCRAC電流を記録するためにステップバイステップの手順を示します。この技術は、私たちはより良い正常および病的な?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

私たちは、施設やイオンチャネルの研究のための優れた環境をご提供するための生理学と膜生物学、カリフォルニア大学デ​​ービス校の学科に感謝しています。

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
RosetteSep Human T Cell Enrichment Cocktail   StemCell Technologies, Vancouver, BC, Canada 15061  
RosetteSep Density Medium   StemCell Technologies 15705  
RPMI-in 1640 medium w/glutamine/HEPES   Fisher, Waltham, MA SH3025501  
Fetal Calf Serum   Omega Scientific, Tarzana, CA FB-01  
GlutaMAX-I (100X solution)   Invitrogen, Carlsbad, CA 35050  
RPMI 1640 vitamin solution (100X)   Sigma-Aldrich 7256  
1640 amino acids solution (50X)   Sigma-Aldrich R7131  
Sodium pyruvate   Sigma-Aldrich S8636  
β-Mercaptoethanol   Sigma-Aldrich M7522  
Inositol trisphosphate   Sigma-Aldrich 19766  
BAPTA   Sigma-Aldrich A4926  
Poly-L-Lysine Hydrobromide   Sigma-Aldrich P2636  
Lanthanum Chloride   Sigma-Aldrich 262072  
Thapsigargin   Calbiochem 586005  
Sylgard 184 Silicon Elastomer Kit   Dow Corning, Midland, MI 3097358-1004  
HIPEC R6101 Semiconductor Protective Coating   Dow Corning, Midland, MI    
63-500 Series High-Performance Vibration Isolation Lab Table   Technical Manufacturing, Peabody, MA 63-540  
EPC 10 patch clamp amplifier with headstage   HEKA Instruments, Bellmore, NY    
Micromanipulator   Sutter Instrument, Novato, CA MP-285  
Olympus 1X71 Inverted microscope with 40x oil immersion objective   Olympus America, Center Valley, PA 1X71  
Windows Computer   Dell    
Pulse software   HEKA Instruments    
Origin Scientific Graphing and Analysis Software   OriginLab, Northampton, MA    
Patch pipette puller   Sutter Instrument P-97  
Borosilicate glass with filament (O.D.: 1.5mm and I.D.: 1.10mm   Sutter Instrument BF150-110-7.5  
Narashige’s Microforge   Tritech Research, Los Angeles, CA MF-830  
Silicon O-rings   McMASTER-CARR, Santa Fe Springs, CA 111 S70  
Coverslips 25 mm   Fisher Scientific 12-545-102 25 mm 25CIR.-1  

References

  1. Parekh, A. B. Store-operated CRAC channels: function in health and disease. Nat Rev Drug Discov. 9, 399-410 (2010).
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  9. Sakmann, B., Neher, E. . Single-Channel Recording. , (1995).
  10. Neher, E. Correction for liquid junction potentials in patch clamp experiments. Methods Enzymol. 207, 123-1231 (1992).
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Cite This Article
Thakur, P., Fomina, A. F. Whole-Cell Recording of Calcium Release-Activated Calcium (CRAC) Currents in Human T Lymphocytes. J. Vis. Exp. (46), e2346, doi:10.3791/2346 (2010).

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