Summary

Helcells-inspelning av Calcium Release-Aktivt Kalcium (CRAC) Strömmar i Human T-lymfocyter

Published: December 21, 2010
doi:

Summary

Vi erbjuder en steg-för-steg-protokoll för hel-cell patch clamp inspelning av kalcium Release-Aktivt Kalcium (CRAC) strömmar i perifera mononukleära celler som härrör från mänskliga T-lymfocyter.

Abstract

I T-lymfocyter, utarmning av Ca 2 + från intracellulära Ca 2 + butiken leder till aktivering av plasmalemmal Ca 2 +-kanaler, som kallas Kalcium Release-Aktivt Kalcium (CRAC) kanaler. CRAC kanalerna spelar en viktig roll i regleringen av T celltillväxt och genuttryck. Onormal CRAC-kanalen fungerar i T-celler har kopplats till svår kombinerad immunbrist och autoimmuna sjukdomar 1, 2. Studera CRAC kanal funktion i mänskliga T-celler kan avslöja nya molekylära mekanismer som reglerar normala immunsvaret och reda ut orsaker relaterade mänskliga sjukdomar. Elektrofysiologiska inspelningar av membranet strömmar ge den mest exakta bedömningen av funktionella kanal egenskaper och deras reglering. Elektrofysiologiska bedömning av CRAC kanal strömmar i Jurkat T-celler, en människa leukemi T-cell linjen, uruppfördes mer än 20 år sedan 3 är dock fortfarande CRAC aktuella mätningar i normala mänskliga T-celler en utmanande uppgift. Svårigheterna att inspelningen CRAC kanal strömmar i normala T-celler förvärras av det faktum att blodbaserade T-lymfocyter är mycket mindre i storlek än Jurkat T-celler, och därmed den endogena helcells-CRAC strömmar är mycket låg i amplitud. Här ger vi en steg-för-steg förfarande som vi rutinmässigt använder för att spela in Ca 2 + eller Na + strömmar via CRAC kanaler i vilande mänskliga T-celler som isolerats från perifert blod hos friska frivilliga. Den metod som beskrivs här antogs av de förfaranden som används för att registrera CRAC strömmarna i Jurkat T-celler och aktiverade mänskliga T-celler 4-8.

Protocol

1. Beredning av vila Human T-lymfocyter Använda RosetteSep Human T-cell Anrikning Cocktail och RosetteSep Densitet Medium, rena T-celler från mänskligt blod prover enligt tillverkarens anvisningar. Den resulterande cellpopulation ska innehålla 95% CD3 + vilande T-celler. Vi renar humana T-lymfocyter från perifert blod prover som tagits från friska försökspersoner i enlighet med det protokoll som godkändes av UC Davis Internal Review Board. Efter isolering resuspendera vilande T-c…

Discussion

Den elektrofysiologiska undersökning av CRAC strömningar i vilande mänskliga T-celler är en utmanande uppgift, eftersom den endogena CRAC strömamplituden i dessa celler är liten på grund av småcellig storlek (vilande mänskliga T-cell diameter är i storleksordningen 5-8 mikrometer). Här presenterar vi en steg-för-steg-förfarande för att tillförlitligt spela CRAC strömmar i vilande humana T-lymfocyter som isolerats från perifert blod mononukleära celler. Denna teknologi tillåter oss att undersöka fysio…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi är tacksamma till Institutionen för fysiologi och Membrane Biology, University of California Davis för att förse oss med resurser och en utmärkt miljö för studier av jonkanaler.

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
RosetteSep Human T Cell Enrichment Cocktail   StemCell Technologies, Vancouver, BC, Canada 15061  
RosetteSep Density Medium   StemCell Technologies 15705  
RPMI-in 1640 medium w/glutamine/HEPES   Fisher, Waltham, MA SH3025501  
Fetal Calf Serum   Omega Scientific, Tarzana, CA FB-01  
GlutaMAX-I (100X solution)   Invitrogen, Carlsbad, CA 35050  
RPMI 1640 vitamin solution (100X)   Sigma-Aldrich 7256  
1640 amino acids solution (50X)   Sigma-Aldrich R7131  
Sodium pyruvate   Sigma-Aldrich S8636  
β-Mercaptoethanol   Sigma-Aldrich M7522  
Inositol trisphosphate   Sigma-Aldrich 19766  
BAPTA   Sigma-Aldrich A4926  
Poly-L-Lysine Hydrobromide   Sigma-Aldrich P2636  
Lanthanum Chloride   Sigma-Aldrich 262072  
Thapsigargin   Calbiochem 586005  
Sylgard 184 Silicon Elastomer Kit   Dow Corning, Midland, MI 3097358-1004  
HIPEC R6101 Semiconductor Protective Coating   Dow Corning, Midland, MI    
63-500 Series High-Performance Vibration Isolation Lab Table   Technical Manufacturing, Peabody, MA 63-540  
EPC 10 patch clamp amplifier with headstage   HEKA Instruments, Bellmore, NY    
Micromanipulator   Sutter Instrument, Novato, CA MP-285  
Olympus 1X71 Inverted microscope with 40x oil immersion objective   Olympus America, Center Valley, PA 1X71  
Windows Computer   Dell    
Pulse software   HEKA Instruments    
Origin Scientific Graphing and Analysis Software   OriginLab, Northampton, MA    
Patch pipette puller   Sutter Instrument P-97  
Borosilicate glass with filament (O.D.: 1.5mm and I.D.: 1.10mm   Sutter Instrument BF150-110-7.5  
Narashige’s Microforge   Tritech Research, Los Angeles, CA MF-830  
Silicon O-rings   McMASTER-CARR, Santa Fe Springs, CA 111 S70  
Coverslips 25 mm   Fisher Scientific 12-545-102 25 mm 25CIR.-1  

References

  1. Parekh, A. B. Store-operated CRAC channels: function in health and disease. Nat Rev Drug Discov. 9, 399-410 (2010).
  2. Feske, S. CRAC channelopathies. Pflugers Arch. , (2010).
  3. Lewis, R. S., Cahalan, . Mitogen-induced oscillations of cytosolic Ca2+ and transmembrane Ca2+ current in human leukemic T cells. Cell Regul. 1, 99-112 (1989).
  4. Zweifach, A., Lewis, R. S. Rapid inactivation of depletion-activated calcium current (ICRAC) due to local calcium feedback. J Gen Physiol. 105, 209-226 (1995).
  5. Zweifach, A., Lewis, R. S. Slow calcium-dependent inactivation of depletion-activated calcium current. Store-dependent and -independent mechanisms. J Biol Chem. 270, 14445-1451 (1995).
  6. Zweifach, A., Lewis, R. S. Calcium-dependent potentiation of store-operated calcium channels in T lymphocytes. J Gen Physiol. 107, 597-610 (1996).
  7. Prakriya, M., Lewis, R. S. Separation and characterization of currents through store-operated CRAC channels and Mg2+-inhibited cation (MIC) channels. J Gen Physiol. 119, 487-507 (2002).
  8. Fomina, A. F., Fanger, C. M., Kozak, J. A., Cahalan, . Single channel properties and regulated expression of Ca(2+) release-activated Ca(2+) (CRAC) channels in human T cells. J Cell Biol. 150, 1435-1444 (2000).
  9. Sakmann, B., Neher, E. . Single-Channel Recording. , (1995).
  10. Neher, E. Correction for liquid junction potentials in patch clamp experiments. Methods Enzymol. 207, 123-1231 (1992).

Play Video

Cite This Article
Thakur, P., Fomina, A. F. Whole-Cell Recording of Calcium Release-Activated Calcium (CRAC) Currents in Human T Lymphocytes. J. Vis. Exp. (46), e2346, doi:10.3791/2346 (2010).

View Video