Summary

High Throughput Screening da atividade endoglucanase de fungos em Escherichia coli</em

Published: August 13, 2011
doi:

Summary

Nós descrevemos um baixo custo, o método de alto rendimento para a tela para a atividade endoglucanase fúngicas em<em> E. coli.</em> O método se baseia em uma leitura visual simples de degradação do substrato, não necessita de purificação de enzimas, e é altamente escalável. Isto permite a avaliação rápida de grandes bibliotecas de variantes da enzima.

Abstract

Celulase enzimas (endoglucanases, cellobiohydrolases e β-glicosidases) hidrolisar a celulose em açúcares componente, que por sua vez podem ser convertidos em álcoois combustíveis 1. O potencial para hidrólise enzimática da biomassa celulósica para fornecer energia renováveis ​​tem se intensificado os esforços para engenheiro de celulases para 2 econômica de produção de combustíveis. De particular interesse são celulases fúngicas 08/03, que já estão sendo utilizados industrialmente para alimentos e processamento de têxteis.

Identificar variantes ativa entre uma biblioteca de celulases mutante é fundamental para o processo de engenharia; mutantes ativa ainda pode ser testado para propriedades melhoradas e / ou sujeitos a mutagênese adicionais. Engenharia eficiente de celulases fúngicas tem sido dificultada pela falta de ferramentas genéticas para os organismos nativos e pelas dificuldades em expressar as enzimas em hospedeiros heterólogos. Recentemente, Morikawa e colaboradores desenvolveram um método para expressar em E. coli os domínios catalíticos de endoglucanases de H. jecorina 3,9, um fungo industrial importante, com a capacidade de secretar celulases em grandes quantidades. Funcional E. expressão coli também foi relatada por celulases de fungos, incluindo Macrophomina phaseolina 10 e Phanerochaete chrysosporium 11-12.

Nós apresentamos um método para triagem de alto rendimento da atividade endoglucanase fúngicas em E. coli. (Fig. 1) Este método usa o comum microbiana corante Congo Red (CR) para visualizar a degradação enzimática da carboximetilcelulose (CMC) de células que crescem em meio sólido. O ensaio de atividade requer reagentes de baixo custo, a manipulação mínima, e dá resultados inequívocos como zonas de degradação ("halos") no local da colônia. Embora uma medida quantitativa da atividade enzimática não pode ser determinado por este método, nós descobrimos que o tamanho do halo se correlaciona com atividade enzimática total do celular. Uma melhor caracterização de cada um dos clones positivos irá determinar, fitness proteína relativa.

Tradicionais bacteriana toda célula ensaios CMC / CR 13 envolvem a atividade derramando CMC agar contendo em colônias, que está sujeita a contaminação cruzada, ou culturas incubadas em poços de agar CMC, que é menos passível de experimentação em larga escala. Aqui nós relatamos um protocolo melhorado que modifica métodos de lavagem existentes 14 para atividade da celulase: células cultivadas em placas de ágar CMC são removidos antes da coloração CR. Nosso protocolo reduz significativamente a contaminação cruzada e é altamente escalável, permitindo a avaliação rápida de milhares de clones. Além de H. enzimas jecorina, temos expressa e selecionados variantes endoglucanase do Thermoascus aurantiacus e decumbens Penicillium (mostrado na Figura 2), sugerindo que este protocolo é aplicável às enzimas a partir de uma variedade de organismos.

Protocol

1. Preparação placa de triagem Adicionar meio de crescimento 25g LB, ágar 15g e 1,5 g de carboximetil celulose substrato (CMC) em água destilada 1L, e autoclave para esterilizar. Após autoclavagem, permitir que o meio para esfriar e adicione os antibióticos apropriados, e IPTG para uma concentração final de 100μM. Despeje 200 ml cada médio em 5 grandes placas de Petri quadrado / bandejas bioensaio (240 x 240 x 20mm ou maior). Permitir que as placas para secar completamente. …

Discussion

O protocolo aqui descrito permite a identificação rápida e alta taxa de transferência de enzimas ativas, com manipulação mínima. Detecção de atividade é bastante sensível, e qualitativamente reflete a quantidade de atividade dentro da célula. Sua facilidade de uso torna este método adequado para uma ampla gama de bibliotecas de enzima, limitado apenas pela expressão funcional em E. coli. Além disso, o rastreio deste tipo de atividade não se restringe a celulases fúngicas, mas pode ser adaptado …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Este trabalho foi financiado pelo Gordon e Betty Moore Foundation e pela Iniciativa Ciência UNCF / Merck.

Materials

Reagent Company Product number
IPTG Sigma I1284
Congo Red Sigma C6277
Carboxymethyl Cellulose Sigma 360384
NaCl Sigma S1679
Bacto-agar BD Biosciences 214030
Bioassay plates Thermo Scientific 240845

References

  1. Atsumi, S., Hanai, T., Liao, J. C. Non-fermentative pathways for synthesis of branched-chain higher alcohols as biofuels. Nature. 451, 86-89 (2008).
  2. Wilson, D. B. Cellulases and biofuels. Curr Opin Biotechnol. 20, 295-299 (2009).
  3. Qin, Y. Engineering endoglucanase II from Trichoderma reesei to improve the catalytic efficiency at a higher pH optimum. J Biotechnol. 135, 190-195 (2008).
  4. Nakazawa, H. Directed evolution of endoglucanase III (Cel12A) from Trichoderma reesei. Appl Microbiol Biotechnol. 83, 649-657 (2009).
  5. Heinzelman, P. A family of thermostable fungal cellulases created by structure-guided recombination. Proc Natl Acad Sci. 106, 5610-5615 (2009).
  6. Heinzelman, P. SCHEMA recombination of a fungal cellulase uncovers a single mutation that contributes markedly to stability. J Biol Chem. 284, 26229-26233 (2009).
  7. Lantz, S. E. Hypocrea jecorina CEL6A protein engineering. Biotechnol Biofuels. 8, 3-20 (2010).
  8. Mahadevan, S. A. Site-directed mutagenesis and CBM engineering of Cel5A (Thermotoga maritima). FEMS Microbiol Lett. 287, 205-211 (2008).
  9. Nakazawa, H. Characterization of the catalytic domains of Trichoderma reesei endoglucanase I, II, and III, expressed in Escherichia coli. Appl Microbiol Biotechnol. 81, 681-689 (2008).
  10. Wang, H., Jones, R. W. Properties of the Macrophomina phaseolina endoglucanase (EGL 1) gene product in bacterial and yeast expression systems. Appl Biochem Biotechnol. 81, 153-160 (1999).
  11. Howard, R. L. Enzyme activity of a Phanerochaete chrysosporium cellobiohydrolase (CBHI.1) expressed as a heterologous protein from Escherichia coli. Afr J Biotechnol. 2, 296-300 (2003).
  12. Howard, . Characterisation of a chimeric Phanerochaete chrysosporium cellobiohydrolase expressed from Escherichia coli. Afr J Biotechnol. 3, 349-352 (2004).
  13. Teather, R. M., Wood, P. J. Use of Congo red-polysaccharide interactions in enumeration and characterization of cellulolytic bacteria from the bovine rumen. Appl Env Microbiol. 43, 777-780 (1982).
  14. Gilkes, N. R. Mode of action and substrate specificities of cellulases from cloned bacterial genes. J Bio Chem. 259, 10455-10459 (1984).

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Cite This Article
Farrow, M. F., Arnold, F. H. High Throughput Screening of Fungal Endoglucanase Activity in Escherichia coli. J. Vis. Exp. (54), e2942, doi:10.3791/2942 (2011).

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