Summary

Rhizotomy 후 도설 루트 Axons의 라이브 영상

Published: September 01, 2011
doi:

Summary

<em> 생체내에</em> 이미징 프로토콜 등의 루트 호감 다음과 같은 기본 감각 axons를 모니터가 설명되어 있습니다. 절차는 넓은 필드 형광 현미경 및 thy1 – YFP 유전자 변형 생쥐를 활용하고, CNS의 인터페이스와 PNS와 축삭의 상호 작용에서 4cm 이상의 축삭 재생의 반복 영상을 허용합니다.

Abstract

척추 루트 부상에 의해 부상을 기본 감각 axons 만성 통증과 영구 감각 상실로 이어지는, 척수로 재생하기 위해 실패합니다. 척수로 등의 루트 (DR) axons의 재생은 지느러미 루트 항목 영역 (DREZ), CNS와 PNS 사이의 인터페이스에 방지합니다. 신경 손상과 관련된 복잡한 변화가 사후 분석에서 유추되어 있기 때문에 DREZ에서 중생을 방지 분자 및 세포 사건에 대한 우리의 이해는 부분적으로 완전하지 않습니다. 같은 축삭 재생과 같은 동적 세포 공정, 최상의 각 생활 동물의 여러 관찰과 실시간 이벤트를 캡처하는 기술을 연구하고 있습니다. 순차적으로 생체내에서 뉴런을 모니터링하는 우리의 능력은 광학 마우스 트렌스 제닉의 혁명적인 혁신을 대폭 때문에 증가했다. thy1 – GFP 형질 전환 마우스의 몇 라인은, 뉴런의 일부가 유전자 뚜렷한 형광 색상으로 표시하는 개별 뉴런은 생체내 1 군데로 허용합니다. 이 생쥐는 근육 2-4과 5-7 두뇌의 ​​생체내 이미징에 대해 광범위하게 사용되고 있고, 정적 분석을 확인할 수 없었다는 것을 생리적 메커니즘에 새로운 통찰력을 제공하고 있습니다. 생활 척수에서 뉴런의 이미징 연구는 최근에 시작했다. Lichtman와 그의 동료는 먼저 넓은 필드 현미경 8,9와 부상 등의 열 (DC) axons를 추적하여 가능성을 보여주었다. 깊이 위치 직류 axons의 생체내 이미징에서 다중 광자, microglia 및 혈관도 10 성취되었습니다. 지난 몇 년 동안, 우리는 넓은 분야 현미경과 thy1 – YFP 마우스의 H 라인을 사용하여 DR의 axons의 재생을 모니터 생체내 이미징에서 신청 개척했습니다. 이러한 연구는 DR의 axons은 척수 11 시간 재생 방해하는 이유에 대해 소설 가설 우리를 이끌고있다.

thy1 – YFP 마우스의 H 라인에서 뚜렷한 YFP + axons은 피상적으로 여러 axons 동시에 모니터링할 수 있도록하는, 위치가 결정됩니다. 우리는 DREZ에 도착 DR의 axons가 더 경추 척수에 비해 요추에 몇 군데 있다고 배웠습니다. 현재 보고서에서 우리는 재생 DR의 axons의 성공적인 장기 반복 영상을 확인하는 데 유용 발견되는 몇 가지 전략을 설명합니다. 이들은 반복 삽관법 및 호흡 중단을 제거하는 방법을 포함, 수술 – 관련 스트레스와 흉터 형성을 최소화하고, phototoxicity없이 높은 해상도에서 안정적인 이미지를 획득.

Protocol

1. 현미경 설정하고 이미지 준비 우리의 이미지가 빠른 셔터 및 Metamorph 소프트웨어에 의해 제어 냉각 CCD 카메라와 Leica MZ16 형광 stereomicroscope 구성되어 설정할 수 있습니다. thermostatically 제어 난방 패드를 준비하고 ° C 동물​​의 체온을 유지하는 동안, 그리고 수술에 따라 32.5 출력을 조정할 수 있습니다. 32.5 ° C로 수술 중 척수의 관개를 위해 사전에 따뜻한 살균 링어의 솔…

Discussion

직접 살아있는 생쥐의 영상 DR 재생, 특히 그것이 이후 이미지 세션에 여러 침략 수술 및 마취 절차에 의해 다음 넓은 영역 축삭의 성장을 모니터링하는 상당한 등의 laminectomy을 필요로하기 때문에 도전이다. 몇몇 전략은 이러한 과제를 극복하기 위해 도움이되었습니다. 첫째, 성공적인 이미지는 마취와 출혈의 기간을 최소화하여 마우스 사망률 (약 25 %) 감소 필요하고, 세심한 수술 치료로. 사망률…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

우리는 의견과 편집에 도움 박사 앨런 Tessler 감사합니다. 이 작품은 NIH NS062320에 의해 지원되었다.

Materials

Name of the reagent Company Catalogue number Comments
H line thy1-YFP (2-4 months old, either sex) Jackson Laboratory (Bar Harbor, ME) 003782  
Xylazine (AnaSed injection, sterile solution) Lloyd Laboratories, (Shenandoah, LA) 4811 8 mg/kg
Ketamine (Ketamine hydrochloride injection, USP) Hospira, Inc. (Lake Forest, IL) 2051 120 mg/kg
Buprenorphine (Buprenex injectable) (0.05 mg/kg) Reckitt Benckiser Pharmaceuticals Inc.(Richmond, VA) 7571  
Small animal hair clippers Oster Professional, (McMinnville, TN) 76059-030  
Hair removal lotion Church & Dwight Co (Princeton, NJ) NAIR with Baby Oil  
Gauze sponges Fisher Scientific, (Pittsburgh, PA) 22-362-173  
Cotton-tipped swabs Fisher Scientific, (Pittsburgh, PA) 14-960-3Q  
1 mL syringes Becton, Dickson and Company Franklin Lakes, NJ) 309602  
Subcutaneous (Sub-Q) needles, 26ga. Becton, Dickson and Company (Franklin Lakes, NJ) 305115  
Spring scissors and forceps Fine Science Tools, (Foster City, CA)    
2.5-mm curved rongeurs Fine Science Tools, (Foster City, CA) 16221-14  
Lactated Ringer’s Injection USP B. Braun Medical Inc., (Irvine, CA) BBR-L7502  
Sterile saline solution APP Pharmaceuticals, (Schaumburg, IL) 918610  
Thin synthetic matrix membrane (Biobrane) Bertek Pharmaceuticals, (Morgantown, WV) 62794-096-251  
Artificial dura Gore Preclude MVP Dura Substitute, W.L. Gore and Associates, (Flagstaff, AZ) 1MVP40  
5-0 silk sutures Ethicon, Inc. (Somerville, NJ) K-580  
Wound clips Perfect – Ets Bruneau, (Burnea, France) A75  
Fluorescent stereomicroscope Leica Microsystems, (Wetzlar, Germany) MZ16  
CCD camera Hamamatsu, (Bridgewater, NJ) ORCA-Rx2  
Temperature Controller World Precision Instruments (Sarasota, FL) ATC 1000  
Metamorph software Molecular Devices, (Sunnyvale, CA)    
Photoshop Adobe Systems, San Jose, CA    

References

  1. Feng, G. Imaging neuronal subsets in transgenic mice expressing multiple spectral variants of GFP. Neuron. 28, 41-51 (2000).
  2. Lichtman, J. W., Sanes, J. R. Watching the neuromuscular junction. J Neurocytol. 32, 767-775 (2003).
  3. Bishop, D. L., Misgeld, T., Walsh, M. K., Gan, W. B., Lichtman, J. W. Axon branch removal at developing synapses by axosome shedding. Neuron. 44, 651-661 (2004).
  4. Balice-Gordon, R. J., Lichtman, J. W. in vivo visualization of the growth of pre- and postsynaptic elements of neuromuscular junctions in the mouse. J Neurosci. 10, 894-908 (1990).
  5. Trachtenberg, J. T. Long-term in vivo imaging of experience-dependent synaptic plasticity in adult cortex. Nature. 420, 788-794 (2002).
  6. Pan, F., Gan, W. B. Two-photon imaging of dendritic spine development in the mouse cortex. Dev Neurobiol. 68, 771-778 (2008).
  7. Grutzendler, J., Gan, W. B. Two-photon imaging of synaptic plasticity and pathology in the living mouse brain. NeuroRx. 3, 489-496 (2006).
  8. Kerschensteiner, M., Schwab, M. E., Lichtman, J. W., Misgeld, T. in vivo imaging of axonal degeneration and regeneration in the injured spinal cord. Nat Med. 11, 572-577 (2005).
  9. Misgeld, T., Nikic, I., Kerschensteiner, M. in vivo imaging of single axons in the mouse spinal cord. Nat Protoc. 2, 263-268 (2007).
  10. Davalos, D. Stable in vivo imaging of densely populated glia, axons and blood vessels in the mouse spinal cord using two-photon microscopy. J Neurosci Methods. 169, 1-7 (2008).
  11. Maio, D. D. i. in vivo imaging of dorsal root regeneration: Rapid immobilization and presynaptic differentiation at the CNS/PNS border. Journal of Neuroscience. 31, 4569-4582 (2011).
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Cite This Article
Skuba, A., Himes, B. T., Son, Y. Live Imaging of Dorsal Root Axons after Rhizotomy. J. Vis. Exp. (55), e3126, doi:10.3791/3126 (2011).

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