Summary

初代ヒトケラチノサイトからカドヘリン文化の生成

Published: February 22, 2012
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Summary

不定冠詞<em> in vitroで</em模倣する>メソッド<emin vivoでの></em>上皮分化が記載されている。多くのウイルスは、ウイルスのライフサイクルの一環として、上皮細胞を標的とし、この方法は、ウイルスを調べる手段を提供します。ホストの相互作用より密接に発生することに似ている<emin vivoでの></em>。この技術は、主ケラチノサイト、確立された細胞株と同様に、正常なまたは病気の生検組織で使用することができます。

Abstract

器官上皮いかだの文化の発展は、in vitroの系を忠実に繰り返すという上皮分化効率的に研究を提供しています。このシステムには多くの用途があります。例えば、ケラチノサイトの三次元カドヘリンの文化を成長させる能力は、ヒトパピローマウイルス(HPV)1の研究において重要なマイルストーンであった。 HPVのライフサイクルは、しっかりと扁平上皮の2分化にリンクされています。器官上皮いかだ培養は、ウイルス産生3,4,5を含む全体のパピローマウイルスのライフサイクルを再現ここで示された。さらに、これらのラフト文化はHPVを用い in vivo感染観察されたものと同様の異形成病変を示す。したがって、このシステムは、上皮細胞がんと同様に、一般に上皮細胞の分化に及ぼす薬物の効果を研究するために使用することができます。もともとAsselineauとPrunierasによって開発された<sアップ> 6とKopan によって変更されます。7、器官上皮いかだ培養システムは、コラーゲンに細胞の増殖を伴う一般的な、比較的容易に培養モデル、へと成長した気液界面(図1A)を維持し接続します。 10-14日の間に、細胞が層別化と差別化、分化特異的なケラチンを生成する完全な厚さの上皮を形成する。収穫ラフトと同様に標準的な分子生物学的および生化学的手法により、組織学的に調べることができます。本稿では、初代ヒトケラチノサイトからいかだ文化の生成方法を説明します。同じ手法が確立され上皮細胞株で使用でき、かつ容易に正常または病気の生検8から上皮組織での使用に適合させることができます。その複製のライフサイクルの一環として、多くのウイルスのターゲットのいずれかの皮膚または粘膜上皮。過去数年間、カドヘリンカルトを使用しての可能性ウイルス-宿主細胞の相互作用を研究する方法としてURESは、いくつかのヘルペスウイルスと同様に、アデノウイルス、パルボウイルス、およびポックスウイルス9に示されている。カドヘリンの文化は、このようにウイルスの病原性を調べるために適応し、永続的な細胞株での耕作ではありませんこれらのウイルスのための新規な抗ウイルス剤をテストする唯一の手段であることができます。

Protocol

1。カドヘリンの文化のための準備金属製のいかだグリッドは、多くの第一分化過程を妨げる可能性のある残留物を除去するためにクロム硫酸で処理することができます。一時間のために硫酸を含有するガラスビーカーに浸した金属グリッドは、その後継続的に水道水で一晩洗浄した。すすぎ一晩後、いかだグリッドは、蒸留水で3-5時間のためにリンスする必要があります。 ラ…

Discussion

ここでは一般的には上皮分化を研究するために使用できるメソッドを記述するだけでなく、容易にウイルスの病原性と同様に、潜在的な治療薬の有効性を研究するために適応させることができます。多くのウイルスは、ヘルペスウイルスと同様に、HPVの場合のように、またはウイルスのライフサイクルのある時点で、感染症のプライマリサイトのいずれかとして上皮細胞を標的とする。宿主?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

著者らは、E1E4抗体の種類のギフト用サリー·ロバーツ(バーミンガム大学、バーミンガム、英国)に感謝したいと思います。この作品は、国立がん研究所(4R00CA137160-03)からの助成金によってサポートされていました。

Materials

Name of Reagent Company Catalog number
Rat Tail Collagen type 1 (4-5mg/ml) BD Biosciences 354236
DMEM without NaHC03 Invitrogen 12100-061
NaHC03 Sigma S5761
Hepes Calbiochem 391338
Stainless Steel metal grids Williams and Mettle Co. CR-03063-040-100-S
E medium11    
Epidermal Growth Factor BD Biosciences 354010

References

  1. Andrei, G., Duraffour, S., VandenOord, J., Snoeck, R. Epithelial raft cultures for investigations of virus growth, pathogenesis and efficacy of antiviral agents. Antiviral Research. 85, 431-449 (2010).
  2. Asselineau, D., Prunieras, M. Reconstruction of ‘simplified’ skin: control of fabrication. The British Journal of Dermatology. 111, 219-222 (1984).
  3. Bodily, J., Alam, S., Chen, H., Meyers, C. . Organotypic epithelial raft cultures and the study of the natural history of human papillomavirus. , (2006).
  4. Cheng, S., Schmidt-Grimminger, D. C., Murant, T., Broker, T. R., Chow, L. T. Differentiation-dependent up-regulation of the human papillomavirus E7 gene reactivates cellular DNA replication in suprabasal differentiated keratinocytes. Genes & Development. 9, 2335-2349 (1995).
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  6. Frattini, M. G., Lim, H. B., Laimins, L. A. In vitro synthesis of oncogenic human papillomaviruses requires episomal genomes for differentiation-dependent late expression. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 93, 3062-3067 (1996).
  7. Kopan, R., Traska, G., Fuchs, E. Retinoids as important regulators of terminal differentiation: examining keratin expression in individual epidermal cells at various stages of keratinization. The Journal of Cell Biology. 105, 427-440 (1997).
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  10. Wilson, R., Laimins, L. A. . Differentiation of HPV-Containing Cells Using Organotypic Raft Culture or Methylcellulose. , 119-119 (2006).
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Cite This Article
Anacker, D., Moody, C. Generation of Organotypic Raft Cultures from Primary Human Keratinocytes. J. Vis. Exp. (60), e3668, doi:10.3791/3668 (2012).

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