Summary

Kvantifisering av Fungal Colonization, Sporogenesis, og produksjon av mykotoksiner Bruk Kernel bioassay

Published: April 23, 2012
doi:

Summary

Ødeleggelsen av korn avlinger ved frø-smitte sopp har bedt en rekke forskningsinnsats for å bedre forstå plante-patogen interaksjoner. Å studere frø-sopp interaksjoner i et laboratorium setting, utviklet vi en robust metode for kvantifisering av sopp reproduksjon, biomasse, og mykotoksin forurensning ved hjelp av kernel bioassay.

Abstract

Den råtnende av korn ved frø-smitte sopp utgjør en av de største økonomiske utfordringene til kornproduksjon i verden, for ikke å nevne alvorlige risikoer for menneskers og dyrs helse. Blant kornproduksjon, er mais uten tvil den mest berørte avling, grunnet patogen-induserte tap i korn integritet og mykotoksin frø forurensning. De to mest utbredte og problematisk mykotoksiner for mais growers og mat og fôr prosessorer er aflatoksin og fumonisin, produsert av Aspergillus flavus og Fusarium verticillioides, henholdsvis.

Nyere studier i molekylære plante-patogen interaksjoner har vist lovende i å forstå spesifikke mekanismer knyttet til plante svar soppinfeksjon og mykotoksin forurensning 1,2,3,4,5,6. Fordi mange laboratorier bruker kernel-analyser for å studere plante-patogen interaksjoner, er det behov for en standardisert metode for å kvantifisere ulike biologiske parametre, såresultater fra ulike laboratorier kan kryss-tolket. For en robust og reproduserbar måte for kvantitative analyser på frø, har vi utviklet i-lab kernel analyser og påfølgende metoder for å kvantifisere soppvekst, biomasse, og mykotoksin forurensning. Fire steriliserte mais kjerner er inokulert i hetteglass med en sopp suspensjon (10 6) og inkubert for en forhåndsbestemt periode. Smak ampuller blir deretter valgt for telling av conidia av hemocytometer, ergosterol-basert biomasse analyse av høy ytelse væskekromatografi (HPLC), aflatoksin kvantifisering ved hjelp av en AflaTest fluorometer metode, og fumonisin kvantifisering av HPLC.

Protocol

1. Mais Kernel bioassay To uker før, kultur de sopp på potet Dextrose Agar (PDA) ved 28 ° C. Velg kjerner med samme størrelse og form, fortrinnsvis flate slik at de lå på nivå med bunnen av bioassay ampuller, og plass i 50 ml falcon rør. Kjerner utvalgte må ha blitt produsert samtidig i samme miljø for å sikre lik frø alder og metabolitt komposisjon. Overflaten sterilisere kjerner ved å riste rør i romtemperatur i 5 minutter med 70% etanol, 1 minutt med sterilt vann, og 10 mi…

Discussion

<p class="jove_content"> Metodene som beskrives her har blitt testet grundig og vist seg å være robust i den generasjonen av målbare resultater for sopp kolonisering, sporogenesis, og produksjon av mykotoksiner. Dessuten bør disse metodene være aktuelt å frø fra andre planter som er mottakelige for smitte med mycotoxigenic sopp (f.eks peanøtter, hvete, bomull, pistasjenøtter osv.). For kompetente plante-patogen samspill analyser, er det viktig at frøene skal holdes levende. En liten sårstedet på fosteret siden av kjernen forenkle…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi ønsker å takke Brandon Hassett og Carlos Ortiz for deres tekniske assistanse. Dette arbeidet ble støttet av NSF tilskudd IOB-0544428, IOS-0951272, og IOS-0925561 Dr. Michael Kolomiets, og av USDA National Institute of Food and Agriculture (NIFA), Afri planteforedling og utdanning Grant # 2010-85117 -20539 til legene. Seth Murray, Thomas Isakeit, og Michael Kolomiets.

Materials

Name of the reagent Company Catalog #
Potato Dextrose Agar Fisher Scientifc S71659A
Tween-20 Fisher Scientifc BP337-100
Plastic incubation container Sterilite 1713LAB06
Blender Vicam 20200
24 cm Fluted Filter Papers Vicam 31240
1.5 μm glass microfibre Vicam 31955
Afla Test column Vicam G1024
Afrla Test Developer Vicam 32010
Methanol Vicam 35016
Acetonitrile Fisher Scientifc AC14952-0025
Ethanol Fisher Scientifc AC39769-0025
C-18 solid phase extraction column (Prep SEP SPE C18 Column) Fisher Scientifc 60108-304
O-phthalaldehyde (OPA) Sigma Chemical Co 79760-5g
Boric acid Fisher Scientifc BP168-500
Sodium borate Fisher Scientifc RDCS0330500
Mercaptoethanol Fisher Scientifc 45-000-231
Shimadzu HPLC LC-20AT (Pump) Shimadzu Scientific Instruments, Inc. LC-20AT
Zorbax ODS column (4.6x150mm) Agilent Technologies 443905-902
Shimatzu RF-10Axl fluorescence detector Shimadzu Scientific Instruments, Inc. RF-10AXL
Sodium phosphate Fisher Scientifc AC38987-0010
FB1 standards Sigma Chemical Co. F1147-1mg
Chloroform VWR MK444410
13 mm syringe filter with 0.45 um nylon membrane (HPLC) Pall Life Science 4426
Ergosterol Sigma-Aldrich 45480-50G-F
Scintillation vials VWR 66021-602
Sodium Chloride Vicam G1124

References

  1. Tsitsigiannis, D. I., Keller, N. P. Oxylipins as developmental and host-fungal communication signals. Trends Microbiol. 15, 109-118 (2007).
  2. Gao, X., Shim, W. -. B., Göbel, C., Kunze, S., Feussner, I., Meeley, R., Balint-Kurti, P., Kolomiets, M. Disruption of a maize 9-lipoxygenase results in increased resistance to fungal pathogens and reduced levels of contamination with mycotoxin fumonisin. Mol. Plant-Microbe Interact. 20, 922-933 (2007).
  3. Brodhagen, M., Tsitsigiannis, D. I., Hornung, E., Goebel, C., Feussner, I., Keller, N. P. Reciprocal oxylipin-mediated cross-talk in the Aspergillus – seed pathosystem. Mol. Microbiol. 67, 378-391 (2008).
  4. Gao, X., Brodhagen, M., Isakeit, T., Brown, S. H., Göbel, C., Betran, J., Feussner, I., Keller, N. P., Kolomiets, M. V. Inactivation of the lipoxygenase ZmLOX3 increases susceptibility of maize to Aspergillus spp. Mol. Plant-Microbe Interact. 22, 222-231 (2009).
  5. Gao, X. Q., Kolomiets, M. V. Host-derived lipids and oxylipins are crucial signals in modulating mycotoxin production by fungi. Toxin Rev. 28, 79-88 (2009).
  6. Mukherjee, M., Kim, J. -. E., Park, Y. -. S., Kolomiets, M. V., Shim, W. -. B. Regulators of G protein signaling in F. verticillioides mediate differential host-pathogen responses on non-viable versus viable maize kernels. Mol. Plant Pathol. 12, 479-491 (2011).
  7. Zheng, M. Z., Richard, J. L., Binder, J. A review of rapid methods for the analysis of mycotoxins. Mycopathologia. 161, 261-273 (2006).
  8. Bacon, C. W., Bennett, R. M., Hinton, D. M., Voss, K. A. Scanning electron microscopy of Fusarium moniliforme within asymptomatic maize kernels and kernels associated with equine leukoencephalomalacia. Plant Dis. 76, 144-148 (1992).
  9. Munkvold, G. P., Hellmich, R. L., Rice, L. G. Comparison of fumonisin concentrations in kernels of transgenic Bt maize hybrids and nontransgenic hybrids. Plant Dis. 83, 130-138 (1999).
  10. Sagaram, U. S., Shaw, B. D., Shim, W. -. B. Fusarium verticillioides GAP!, a gene encoding a putative glycolipid-anchored surface protein, participates in conidiation and cell wall structure but not virulence. Microbiol. 153, 2850-2861 (2007).
  11. Shim, W. -. B., Flaherty, J. E., Woloshuk, C. P. Comparison of Fumonisin B1 biosynthesis in maize germ and degermed kernels by Fusarium verticillioides. J. Food Protect. 66, 2116-2122 (2003).
  12. Shim, W. -. B., Woloshuk, C. P. Regulation of fumonisin B1 biosynthesis and conidiation in Fusarium verticillioides by a cyclin-like (C-type) gene, FCC1. Appl. Environ. Micrbiol. 67, 1607-1612 (2001).
  13. Christensen, S. A. . Conversation with: Won-Bo Shim. , (2011).
  14. Shin, J. -. H., Shim, W. -. B. Characterization of PPR1 and PPR2, genes encoding regulatory subunits of protein phosphatase 2A in Fusarium verticillioides. Phytopathol. 99, S119 (2009).
  15. Breivik, O. N., Owades, J. L. Spectrophotometric Semimicrodetermination of Ergosterol in Yeast. Yeast. Agric. and Food Chem. 5, 360-363 (1957).
check_url/3727?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Christensen, S., Borrego, E., Shim, W., Isakeit, T., Kolomiets, M. Quantification of Fungal Colonization, Sporogenesis, and Production of Mycotoxins Using Kernel Bioassays. J. Vis. Exp. (62), e3727, doi:10.3791/3727 (2012).

View Video