מלוטשת מחוזק דליל, הגולגולת חלון הדמיה לטווח ארוך של מוח עכבר

Summary

אנו מציגים שיטה ליצירת חלון הדמיה בגולגולת העכבר החובקת מילימטרים והוא יציב במשך חודשים ללא דלקת של המוח. שיטה זו גם מתאים מחקרים ארוכי טווח של זרימת דם, דינמיקה סלולריים, ותא / מבנה כלי הדם באמצעות שני פוטונים במיקרוסקופ.

Abstract

In vivo הדמיה של תפקוד קליפת המוח דורש גישה אופטית למוח ללא הפרעה של הסביבה תוך גולגולתי. אנו מציגים שיטה ליצירת הגולגולת דליל מלוטשת מחוזק (יציאות) חלון בגולגולת העכבר החובקת כמה מילימטרים בקוטר והוא יציב במשך חודשים. הגולגולת הוא דליל עד 10 עד 15 מיקרומטר עובי עם יד שנערך תרגיל כדי להשיג בהירות אופטית, והוא מעולף ואז עם דבק cyanoacrylate וכוס כיסוי ל: 1) לספק קשיחות, 2) לעכב לצמיחה מחודשת העצם 3) להפחית את פיזור אור מ חריגות על פני העצם. מאז הגולגולת לא פרוץ, דלקת העלולה להשפיע על תהליך הנלמד מופחת במידה ניכרת. בעומק הדמיה של עד 250 מיקרומטר מתחת לפני השטח של קליפת המוח יכולה להיות מושגת באמצעות שני פוטונים מיקרוסקופיית לייזר. חלון זה הוא גם מתאים ללמוד זרימת הדם במוח ותפקוד הסלולר ההכנות הן הרדים ו ער. זה עוד יותר מציעה אופportunity לתמרן פעילות התא באמצעות optogenetics או לשבש את זרימת הדם בכלי ממוקדות על ידי הקרנה של מחזורי פוטוסנסיטייזרים.

Protocol

1. הכנות לקראת ניתוח ^אני

1. נקו את כלי הניתוח על ידי sonicating בתערובת של חלב Maxizyme וכירורגי של שואב קולי. החיטוי כלי ניתוח לפני כל ניסוי.
2. ודא שכל ריאגנטים הדרושים מתכלים זמינים. רשימה של ריאגנטים מתכלה מסופק בטבלה 2. ריאגנטים מתכלים הבאים במגע עם רקמות נחשף צריך להיות סטרילי, במידת האפשר.
3. לגרום הרדמה. הרדמה אופייניות מתאימים ללימודים ההישרדות מתוארים בטבלה 1. ודא המטוס כירורגית של הרדמה על ידי סימון מחוסר רפלקס קמצוץ הבוהן. הגיל האופטימלי של העכבר הוא 3 עד 6 שבועות. גולגלות של עכברים צעירים יותר הם יותר רך ויותר קשה רזה. עכברים מבוגרים יותר יש גולגלות עבה אשר לדמם יותר במהלך ההליך דליל.
4. להבטיח חיים במסגרת stereotaxic ^1. רשימה של ציוד כירורגי מסופק בטבלה 2.
5. לשמור על הגוף טמפרהture על 37 מעלות צלזיוס באמצעות משוב מוסדר בדיקה רקטלית וכן משטח חום.
6. החל משחת עיניים לעיניים כדי לשמור על הלחות.
7. לגלח את הקרקפת בסכין גילוח חשמלי קטן.
8. לנקות את הקרקפת בבטאדין, ואחריו בניקוי עם 70% (V / V) אלכוהול איזופרופיל.
9. אם תרצה, לבדוק כי קצב הלב והנשימה הם בטווח הנורמה באמצעות oximeter הדופק. עבור העכבר, מספרים אלה צריך מרכז סביב 10 ל 2 הרץ, בהתאמה.
10. לחמם aliquot של נוזל סטרילי מלאכותית מסונן השדרה מוחין (ACSF) ל 37 ° C (125 mM NaCl, גלוקוז 10 מ"מ, 10 מ"מ HEPES, 3.1 mM CaCl _2, 1.3 mM MgCl _2, pH 7.4) (כל הכימיקלים של סיגמא) ^2.

2. הרכבה מסגרת ראש

1. הסר את הקרקפת על פני הגולגולת כולה הגב עם זוג מלקחיים ומספריים כירורגית. לחתוך את העור רוחבית את הקצוות של השרירים הזמני משני צדי הגולגולת ופוסטerior על שרירי הצוואר (איור 1 א).
2. השתמש בלהב סכין המנתחים להסיר את periosteum דק מפני השטח של הגולגולת.
3. לנקות את הגולגולת בצמר גפן לח נוטה המוליך ומייבשים פני הגולגולת עם זרם של אוויר ואבק יכול. ואז למרוח שכבה דקה של דבק cyanoacrylate אל פני השטח את הגולגולת כולה. אפשר הדבק להתייבש היטב. שכבה זו של דבק נדרשת עמידה נכונה של מלט שיניים בשלבים הבאים. דבק cyanoacrylate לא צריך לעבור עיקור.
4. צרף מחבר מתכת אל פני השטח את הגולגולת, הרחק מאזור החלון הרצוי. על ההכנות רדומה אגוז קטן עשוי להיות מאובטח כדי הגולגולת עם טיפה של דבק cyanoacrylate, שיכול להיות מאוחר יותר מוברג ההתקנה הדמיה באמצעות בורג (איור 1 ב, 1 ליטר ו - 1N). לאטום את הישבן של אגוז עם קלטת כדי להבטיח כי הדבק לא נכנס החוטים במהלך המצורף הגולגולת. אגוז והסרט יש לעקר על ידי מעוקר לפני הניתוח.
5. על ההכנות הדמיה ער, לצרף מחבר מותאם אישית נוקשה יותר עם ​​שתי נקודות צירוף קובץ (איור 1M ו 1N). לקדוח שני חורים בגולגולת מעל חצי הכדור קליפת המוח הנגדי עם מ"מ ½ תרגיל בר, ולאחר מכן להציג את שני # 000 העצמית הקשה ברגים. ברגים אלה יסייעו לעגן בראש הר לגולגולת. החל רק בסיבוב מלא של הבורג, על מנת למנוע הפעלת לחץ על קליפת המוח הבסיסית. לאחר מכן, לצרף את סרגל מותאם אישית צלב מתכת עם טיפה קטנה של דבק cyanoacrylate על המוח הקטן. אפשר דבק cyanoacrylate להתייבש היטב. זה מחבר מתכת מקטינה באופן משמעותי את דרגות החופש ומפשטת העתקת בתחום ההדמיה אותו מחקרים ארוכי טווח. בר צלב רחב נותן מספיק מקום מיקום האלקטרודה וגירוי של vibrissae. תכניות מפורטות ליצירת הר ראש מותאמים אישית למכשיר מצורף זמינים באופן מקוון (sics / links.html "> http://physics.ucsd.edu/neurophysics/links.html). הברגים ובר הצלב יש לעקר על ידי מעוקר לפני הניתוח.
6. לכסות את פני הגולגולת כולה, למעט המיקום של החלון, עם שכבה של דבק דנטלי (איור 1 ג ו 1D). להבטיח כי כל הקצוות החשופים של העור מכוסים על ידי מלט. מרכיבי הבטון שיניים לא צריך לעבור עיקור.

3. דור מלוטש וחיזקו דליל, גולגולת (יציאות) חלון

1. ודא הקוצים לקדוח חדים ולמנוע שימוש חוזר בהם. שימוש במהירות נמוכה על התרגיל שיניים, דקה 2 מ"מ לפי אזור 2 מ"מ מעל קליפת המוח somatosensory עם ½ מ"מ בר. לסירוגין להרטיב את הגולגולת עם ACSF ולאחר מכן לייבש את פני השטח הגולגולת בזרם עדין של אוויר מטלית גז; רטוב לקירור, ויבש עבור דליל. זה דורש דילול דרך שכבת שבכתי הגולגולת, אשר עלולים לדמם, אבל יכול להיות בשליטהאד על ידי שטיפה עם ACSF (איור 1E). הגולגולת מתחילה להגמיש בלחץ קל של התרגיל כאשר הוא ~ 50 מיקרומטר, וכלי pial צריך להיות גלוי דרך העצם רטוב (איור 1F). על עובי זה, כתמים לבנים קטנים בתוך העצם יהיה גלוי במשך כמה שניות מיד לאחר פני הגולגולת הוא יבש מורטב.
2. בשלב זה, עצם דק עוד יותר. השתמש מהירות התרגיל לאט יותר, כלומר, 1000 סל"ד, אשר מתגלח פני הגולגולת עם נגיעה קלה בלבד. השתמש בתנועות מבוקרים קטנים תוך כדי לחיצה תרגיל כמו עט ורק להפעיל כוח בכיוון לרוחב. בעצם יש ~~~V 10 עד 15 מיקרומטר על עובי הסופי (איור 1G). כאשר העצם הוא דק מספיק, כתמים לבנים קטנים בעצם כבר לא יהיה גלוי כאשר פני הגולגולת יבש הוא לח.
3. לצחצח את האזור חלון עם אבקת תחמוצת בדיל. צרף קצת מוכנות תרגיל כי כבר טבול איטום אקווריום עם סיליקוןנמשך, והשאיר שוט קוני (הבלעה, איור. 1H). שוט סיליקון יש להכין לפחות יום אחד לפני הניתוח, ולאחר עיקור עם 70% isopropanol לפני השימוש. מניחים צביטה קטנה של פודרה על החלון יחד עם ירידה של ACSF (איור 1H). להתסיס slurry על החלון של עד עשר דקות על ידי לגעת בעדינות את קצה השוט נע על פני הגולגולת. לשטוף ממנו את אבקת תחמוצת בדיל היטב מהחלון באמצעות ACSF ולייבש את העצם ביסודיות עם זרם עדין של אוויר. אי סדירות פני השטח שבבי עצם חסיד שהותירו קידוח בשלבים הקודמים יש להסיר לאחר ליטוש (איור 1H ו 1i). אבקת תחמוצת בדיל לא צריך לעבור עיקור.
4. חותכים ריבועי לא. 0 הזכוכית המכסה קצת יותר קטן מגודל החלון. השתמש הסופר בעדינות כדי להבקיע קווים אופקיים ואנכיים מופרדות בתחתונית כיסוי באמצעות קצה ישר. ואז למקם את תלוש כיסוי בצלחת פטרי ו KNock צלחת על קצה השולחן כדי להפריד את חתיכות זכוכית. צלחת פטרי כולו אז יכול להיות autoclaved כדי להבטיח סטריליות.
5. מניחים מכסה זכוכית בגודל מתאים הסמוך לחלון יבשים. החל טיפה קטנה של דבק cyanoacrylate על החלון באמצעות קצה של קצה המוליך שבור עץ, כותנה, ובמהירות לדחוף חתיכת precut של זכוכית המכסה על גבי הדבק. להימנע מיצירת בועות מתחת לזכוכית המכסה. דחף בעדינות את הזכוכית המכסה על פני הגולגולת, לחיצה ארוכה במשך כמה שניות (איור 1J ו 1o). אפשר הדבק להתייבש היטב מעל 15 דקות. דבק cyanoacrylate עודף ניתן להסיר מפני השטח העליון של הזכוכית המכסה עם להב אזמל אחרי זה הוא מיובש. סוגרים את הקצוות של זכוכית המכסה במלט שיניים וליצור מורם מעט גם להחזיק מים העדשה טבילה (1K איור ו 1o).

4. התאוששות

1. מניחים את החיה לכלוב ניתוח החם הבא. לפקח עלבעל חיים מעת לעת עד מלא מתאושש מן ההרדמה.
2. אם הכנת אמור לשרוד יותר מיום אחד, לספק עצירות (0.03 מיקרוגרם לכל מכרסם ז) על כאבים. אנחנו בדרך כלל תמונה חיה לפחות יום אחד לאחר ההשתלה הראשונית.

5. הדמיה הכנה

1. לייצב את חיה על קרש החיתוך אופטי הדמיה, באמצעות מסגרת כתמיכה הראש (איור 1 ליטר ו - 1M). מנגנון ריסון יכול להיות עשוי רכיבים optomechanical זמינים מסחרית של Qioptiq או ThorLabs. בצלחת נפרדת שלנו יכול להיות מועבר בין חבילות הדמיה כירורגיות שני פוטונים בעלי חיים וכל מערכות התראה פיזיולוגיים מורכבים כיחידה אחת ^3.
2. אם זרימת הדם הדמיה הוא הרצוי, להזרים 0.05 מ"ל של 5% (w / v) ניאון dextran הצבע מומס מלח סטרילית או דרך וריד הזנב או וריד infraorbital לתייג דם בסרום (איור 2 א ו 2 ג ל 2H 4-7. זה חייב להיעשות תחת הרדמה כללית. הממשל הוריד Infraorbital ייתכן שיהיה קל יותר למתחילים, כמו פתרונות dextran הם צמיגי יותר. וריד הזנב יכול להיות קשה לאתר בעכברים בצבע כהה, ואת הווריד נוטה לקרוס לאחר ההזרקה נכשל. הדמיה vasculature ירוק פליטה, השתמש isothiocyanate dextran fluorescein. עבור פליטת אדום, להשתמש האדום טקסס dextran. עם משקל מולקולרי גבוה dextrans, צבע יישארו במחזור למשך מספר שעות. לחילופין, בעלי חיים עם תוויות ניאון אנדוגניים ניתן הדמיה ישירות באורך גל שני הפוטונים עירור מתאים. פתרון dextran ניתן קפוא aliquots לשימוש עתידי.
3. לנקות בעדינות את משטח החלון עם צמר גפן לח נוטה המוליך.
4. הדמיה ממושכת של הכנות רדומה מזריקים intraperitoneally פתרון רינגר לקטט של סטרילית בהיקף של 3 μL לגרם כל 2 שעות כדי לשמור על נוזלי הגוף ודרישות האנרגיה. </ Li>
5. כאשר בעלי חיים הדמיה במצב ער, להגביל איפוק ראש רק כמה שעות בכל פעם, כדי להפחית את רמות הלחץ. להחזיר את החיה לכלוב בבית בין המפגשים הדמיה של מזון ומים.

6. נציג תוצאות

חלון מוצלח יאפשר הדמיה בעומק עד 250 מיקרומטר מתחת לפני השטח pial במשך כמה חודשים. בשיטה זו נעשה שימוש כדי ללמוד את זרימת הדם vivo נימי ^{4, 8,} הפעלת microglial ^{8, 9,} והמבנה הדנדריטים בתוך parenchyma קליפת המוח ^8. בדוגמה אחת, אנו משתמשים שני פוטונים הדמיה להראות vasculature קליפת המוח של העכבר הרדים Thy1 צהוב ניאון חלבון (YFP), לאחר בסרום הדם מסומן על ידי הזרקה תוך ורידית של טקסס האדום dextran (איור 2 א). כלי dural לעיתים נראה מעט מעל פני קליפת המוח של מאטר דורה (איור 2 ג, חץ). Arterioles pial גדולים venules li,דואר על פני קליפת המוח (איור 2 ד). ענף כלי חודר מהרשת זה השטח לצלול לתוך קליפת המוח, שם הם להסתעף למיטה נימי סמיך המזין את רקמת קליפת המוח (2E איור ל 2H). סוכות דנדריטים של YFP עמוק להביע נוירונים בקליפת המוח, אנדוגני האות לקו זה עכבר, ניתן הדמיה במקביל בערוץ 2 ¹⁰ (איור 2 ב ל 2H). האות ההרמוני השני של העצם נאסף בערוץ השלישי, והוא יכול לשמש כדי לאמוד את עובי הגולגולת דליל לאחר איסוף ערמות תמונה (איור 2 א ל 2 ג).

הדינמיקה של כלי הדם בקליפת המוח מושפעים עמוקות הרדמה ^11. בדוגמה 2, אנו מראים וידאו של vasoactivity ספונטנית שנאסף על ידי מיקרוסקופ שני הפוטונים של העכבר ער מורגל. תנודות vasomotor בולטים בקוטר לומן נראים עם עורקיק pial, אך לא עם ורדיד השכנה. זהטווח הבסיסי של vasoactivity היא פחתה עם ⁴ הרדמה urethane. כדי לכמת שינויים ספונטניים ועוררה את זרימת הדם, אנו משתמשים בטכניקות סריקה המותאמים קו ללכוד הן את קוטר כלי הדם ומהירות תא דם אדום של כלי בודדים. מקורות מפורטים על הדמיה זרימת הדם הכמותית באמצעות שני פוטונים מיקרוסקופיה זמינים ^{3, 12.}

באיור 1. נוהל חלון בנמלי הים. (ל-K) תמונות של צעדים עוקבים בהליך להפקת חלון בנמלי הים. לראות את הטקסט כדי לקבל הוראות מפורטות. β = גבחת ו λ = למבדה. (L) הבריח אגוז מערכת לאבטחת ראש במהלך ההדמיה של ההכנות בהרדמה. (M) מותאם אישית במכונה הר צלב בראש רף ההכנות ערים. בדוגמה זו, מחבר הושתלה גם הקלטות electrocorticogram חוזרות ונשנות. (N)תרשים סכמטי המציג נוף של הר הגב הראש ואת המיקום של הרכיבים השונים. אגוז שימוש L הפאנל נועד כתחליף לבר צלב באמצעות בלוח מ דו # 000 עצמית הקשה ברגים נוספים עם בר חוצה הר ליציבות הוסיף בהכנות הדמיה ערים. (O) תרשים סכמטי המציג חתך של חלון בנמלי הים.

איור 2. הדמיה דו פוטון של מבנה כלי הדם ואת העצבית בקליפת המוח העכבר. כל התמונות נאספו דרך החלון בנמלי הים של העכבר Thy1-YFP ב 2 ימים לאחר ההשתלה חלון ^10. הקרנת מקסימלי מעל 150 מיקרומטר של רקמת בכיוון העטרה מראה הגולגולת דליל ביחס בכלי הדם (A) דנדריטים (ב '). העצם (כחול) זוהה על ידי איסוף הקרינה הרמוני 2 על פליטת 450 ננומטר עם עירור 900 ננומטר 6. שדות דנדריטים של נוירונים (ירוק) הם אנדוגניים לקו מהונדס Thy1-YFP העכבר. (CH) תחזיות מקסימלי מעל 50 מיקרומטר של רקמת בכיוון אופקי בעומקים שונים מתחת פיא. הנתונים מתוך ערימה אותה תמונה המוצגת לוחות א 'וב' כלי dural יכול להיות גלוי מעל פני קליפת המוח (חץ ב-C).

סימני קצור

ACSF = מלאכותית נוזל השדרה מוחין
= Ports מלוטשים מחוזקים הגולגולת דליל חלון
YFP = חלבון פלואורסצנטי צהוב

^אני לוודא את הנהלים המתוארים מאושרים על ידי טיפול בבעלי חיים מוסדי מקומי ולהשתמש הוועדה.

Discussion

שני פוטונים הדמיה דרך החלון בנמלי הים דורש שידור דרך העצם דליל ואת דורה, אשר פוחתת אור לייזר ומוסיף סטיות אופטיות בעומקים גדולים יותר ^8. עם זאת, למרות החיסרון הזה, במעמקי הדמיה עד 250 מיקרומטר מתחת לפני השטח pial ניתן להשיג עם עירור 900 ננומטר. בעומק הדמיה גדולים יותר יכולים באופן עקרוני להיות אפשרי עם אורכי גל ארוכים יותר עירור ^13. היתרון העיקרי של שיטה זו הוא העדר דלקת קליפת המוח שעלולה להתקיים זמני בשיטות הכרוכות craniotomy מלא ^{14, 15.} חלון בנמלי הים מוכן היטב צריך להראות שום סימנים גלויים של היווצרות כלי דם או דלקת לאחר ההשתלה ^8. זה עשוי להיות מוערך in vivo במהלך הניסוי על ידי מבנה vasculature הדמיה, או על ידי איתור שינויים מורפולוגיים של microglia ב CX (3) CR1-GFP העכבר קו ^{8, 16, 17.} יתר על כן, לאחר מעשה immunohistology צריך להיות לכלנוצר כדי לאשר העדר astrogliosis בקליפת שטחית, למשל, באמצעות נוגדן לחלבון חומצי fibrillary גליה ^8.

השלב התובעני ביותר ביצירת חלון היציאות דילול העצם 10 עד 15 מיקרומטר עובי. בדיקה תקופתית של החלון תחת מיקרוסקופ פלואורסצנטי בתחום רחב לנתיחה שימושית גם כדי לאמוד את עובי הגולגולת במהלך הליך דילול. תוויות ניאון ליד משטח קליפת המוח צריך להיות בבירור דרך הגולגולת רטוב. כנגד מידה מדויק יותר של עובי הגולגולת, אות הרמוני 2 מעצם ניתן למדוד בערימה תלת מימדי תחת מיקרוסקופ שני הפוטונים (איור 2 א ל 2 ג). אם זה נעשה לפני יישום של דבק זכוכית המכסה, העצם יכול להיות דליל יותר במידת הצורך. אין מספיק דליל תוצאות לעומק הדמיה עניים. ליטוש תמשיך לדלל את הגולגולת, כאשר הקידוח כבר לא אפשרי, יעזורלהפחית חריגות משטח שבבי עצם חסיד. במחקרים מוקדמים, מצאנו כי ליטוש משפר את עומק הדמיה שבועות לאחר ההשתלה הראשונית. עם זאת, ניתוח קפדני על לטובת ליטוש לא שבוצעה.

יישום של דבק cyanoacrylate וזכוכית מכסה על גבי העצם הוא שלב קריטי כדי להפחית את פיזור אור ולאפשר דימות עמוק יותר. בעקבות תהליך הקידוח, את פני השטח של העצם יהיה לא סדיר, גם לאחר ליטוש, ואת פיזור אור כן. יישום של דבק cyanoacrylate ממלא סדרים אלה מכסה זכוכית שמעליה משאיר משטח שאינו מפזר חלק. חשוב לציין, המדדים השבירה של הדבק וזכוכית המכסה, שהם 1.45 ו 1.52 על פי מפרט היצרן, הם מתאימים הדוק צמודים לזה של העצם על 1.55 ^18. זהו שיפור לעומת שיש אוויר או מים מעל הגולגולת דליל, אשר יש מדדים השבירה של 1.00ד 1.33. אנושות, דבק cyanoacrylate עוד עוזר לעכב העצם מחדש את הצמיחה. זה מאפשר הדמיה האורך עד שלושה חודשים, ללא צורך בתחזוקה נוספת לאחר הניתוח הראשוני.

הגורם השני של עומק הדמיה עני הוא נזק לכלי pial המובילים דימום או בצקת. תנודות של התרגיל צריך להיות ממוזער. בשיעור קטן של מקרים, דימום תוך דורה תהיה בלתי נמנעת. הסיבה לכך היא בכלי הדם של מאטר דורה רציף עם מקלעת כלי הדם של הגולגולת, אשר מופרת במהלך הליך דילול. ההכנות עם סימן של דימום תת dural אמור להיות מושלך כמו עיבוי אנגיוגנזה dural ו ייווצר. שיעור ההצלחה של חלון הנמלים יכול להיות גבוה ככל 80% עם בפועל.

בניסויים מסוימים, ייתכן שיהיה צורך להזריק צבעים / וירוסים או להכניס אלקטרודות לתוך הרקמה מתחת לחלון הנמלים. ניתן ליצור קטןסמוך לחלון, שדרכו בטפי להחדרת נוזלים או אלקטרודות יכול להיות מוצג באמצעות זרוע סאטר stereotaxic או מניפולטור ¹⁹ חור. חור זה ניתן resealed בשעווה העצם אם בעל החיים הוא להיות צילמו שוב בפגישות הבאות. עם זאת, הכנסת אלקטרודות כמובן להוביל לדלקת של הפתולוגיה קליפת וחריף כגון הפצת דיכאון יכול.

חלון בנמלי הים יש גם מתאים לערוץ כלשהו הדמיה אופטית הדורשת גישה אל המוח. זה כולל הדמיה פני טכניקות כגון דימות אופטי פנימי ²⁰ לייזר רבב הדמיה ^21, או טכניקות חתך אופטיים כגון confocal ²² או 2 פוטון מיקרוסקופיה ^23. יתר על כן, הכנת בנמלי הים צריך לשפר את הרזולוציה רחב transcranial שדה שיטות הדמיה כגון טומוגרפיה קוהרנטיות אופטית ²⁴ ו מיקרוסקופיה photoacoustic ^25.

לבסוף, חלון היציאותמתאים הדמיה של בעלי חיים ער הזכוכית המכסה מוסיף קשיחות אל החלון ^4. הר ראש מתייצב עוד יותר על ידי השקת שני עצמית הקשה # 000 ברגים בחצי הכדור הנגדי לפני היישום של מלט שיניים (איור 1 ליטר). הרגלה את קיבוע הראש חשוב תנועת בעלי חיים מופחת במהלך ההדמיה. בעל חיים חדש ניתן רגילים בהדרגה איפוק ראש על פני תקופה של 3 עד 7 ימים לפני הדמיה, החל 15 דקות פגישות ועבודה עד כמה שעות.