Summary

의 단백질 단지의 식별<em> 대장균</em> 직렬 질량 분석법과 함께 순차적 펩타이드의 동질 정화를 사용하여

Published: November 12, 2012
doi:

Summary

질량 분석법 (APMS)와 함께 태그 단백질의 친 화성 정화는 단백질 상호 작용 네트워크의 체계적인지도 및 생물학적 과정의 기계론의 기초를 조사하기위한 강력한 방법입니다. 여기, 우리는 세균 용으로 개발 된 최적화 된 연속 펩타이드 친 화성 (SPA) APMS 절차를 설명<em> 대장균</em>도 셀 당 낮은 사본 번호부터 근처의 동질성에 안정적인 멀티 단백질 복합체를 분리하고 특성화하는 데 사용할 수있는.

Abstract

대부분의 세포 프로세스 macromolecular 어셈블리, 단백질 – 단백질 상호 작용의 체계적인 식별 (PPI)와 단지는 유전자 기능에 대한 통찰력을 제공하고 생물 시스템 1, 2의 이해를 향상시킬 수 있습니다 다중 단백질의 subunit 구성의 식별에 의해 중재되기 때문입니다. 물리적 상호 작용 대량 분석법 (APMS)와 함께 chromosomally 태그 단백질의 친 화성 정화에 따라 거의 생리적 조건 하에서 내생 단백질 단지의 높은 신뢰 vialarge 규모의 절연 및 특성에 매핑 할 수 있습니다. 이러한 접근 방식이 성공적으로 효모, 파리, 웜, 포유류의 세포 및 박테리아 1-6 등의 evolutionarily 다양한 생물에 적용되었습니다. 특히, 우리는 GE를 사용하여 양식 그람 음성 대장균에서 선호도 – 정화 기본 단백질 단지의 카르복시 – 터미널 순차적 펩타이드 선호도 (SPA) 듀얼 태그 시스템을 생성 한기본 생물학, prokaryotes 1, 2, 7 보존 프로세스의 게놈 전체의 조사에 적합 아르 netically – 다루기 쉬운 호스트 실험실 변종. 우리 SPA 태그 시스템은 효모 8, 9 원래 개발 된 직렬 선호도 정화 방법 유사하며, calmodulin 바인딩 구체적인 담배 에칭 바이러스 (TEV) 단백 분해 효소의 절단 사이트에서 다음 펩타이드 (CBP) 및 사본 3 부를 구성되어 있습니다 연관성 농축의 연속 2 발을 허용 플래그 에피토프 (3 배 플래그)의. 카세트 증폭 후, SPA-태그와 선택 마커를 인코딩 순서 특정 선형 PCR 제품은 통합되어 transiently 고효율 heterologous 박테리오파지 람다 재결합 시스템 (10)을 표현하도록 유도하는 DY330 배경으로 카르복시 – 터미널 fusions와 같은 프레임으로 표현. calmodulin 및 안티 플래그 연관성 구슬을 사용하여 후속 듀얼 단계 정화는 높은 선택을 가능하게대규모 문화도 낮은 풍부한 단백질 단지의 효율적인 복구. 직렬 질량 분석법 그 다음 높은 감도 (낮은 nanogram 검출 한계)를 안정적으로 공동 정화 단백질을 식별하는 데 사용됩니다.

여기, 우리는 우리가 일반적으로 체계적인 단백질 태그, 정화 및 대량 E.에서 수용성 단백질 단지의 분석법 기반의 분석을 위해 사용하는 자세한 단계별 절차를 설명 까지 확장 될 가능성이 recombineering 의무가있는 특정 기회 병원균 등 다른 세균 종에 맞게 할 수 있습니다 대장균. 그 결과 물리적 상호 작용은 종종 재미있는 예상치 못한 구성 요소와 소설 기계론의 링크를 제안 연결을 공개 할 수 있습니다. 이러한 유전자 (유전자 유전자) 상호 작용과 예측은 이중에서 다중 단백질 단지의 글로벌 분자 조직의 해설을 촉진 할 수 게놈 – 컨텍스트 (GC)와 같은 다른 분자 협회 데이터와 PPI 데이터의 통합ological 경로. E.에 대해 생성 된 네트워크 대장균은 기능 주석이 현재 부족하는 다른 미생물의 orthologous 유전자 제품의 기능 구조에 대한 통찰력을 얻을하는 데 사용할 수 있습니다.

Protocol

1. E.의 유전자 별 SPA 태그 추가 구축 대장균 DY330 변형 플라스미드 pJL148은 SPA-태그 DNA 시퀀스와 kanamycin 항생제 저항 아이콘 카세트 (관 R)를 포함한는 중합 효소 연쇄 반응 (PCR) 증폭 7의 템플릿으로 사용됩니다. 27 BP (5'-AGCTGGAGGATCCATGGAAAAGAGAAG -3 ') 태그 특정 앞으로 프라이머와 프레임에서 대상 유전자 정지 코돈 즉시 상류에 위치한 45 NT 유전자 특정 앞으로 …

Representative Results

Once tagged bait proteins, which are expressed at endogenous levels are affinity-purified from logarithmic phase cultures the samples were run on a silver-stain gel to visualize the individual polypeptide components of the isolated stable complexes. We also subjected a second portion of the affinity-purified protein samples to gel-free tandem mass spectrometry (LCMS) to identify the corresponding polypeptide sequences. The effectiveness of this APMS procedure is shown with a representative SDS-PAGE analysis of the compon…

Discussion

여기에 설명 된 SPA 기반 APMS 방식의 핵심 부분은 태그가함으로써 정상적인 유전자 조절을 보장하는 것은 유지 (예. 기본 미끼업자의 앞 표현 수준이 어리둥절하지 않습니다, 보존) 및 안정적-관련 기본입니다, 자연 염색체 컨텍스트 내에서 수행되는 것입니다 단백질 단지는 거의 내생 수준에서 회수하고 있습니다. 오페론 극성 문제도 선택 마커의 외측 중심의 발기인을 포함하여 피할 수 있…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

이 작품은 혁신 게놈 캐나다, 온타리오 유전체학 연구소, 혁신의 온타리오 교육부, 그리고 JG에 건강 연구 기금의 캐나다 연구소와 AE 적목 표현 E.에 대한 캐나다 재단에서 기금에 의해 지원되었다 대장균은 변형 DY330는 도널드 L. 법원 (국립 암 연구소, 프레데릭, MD)에서 일종의 선물이었다.

Materials

Materials Vendor and Catalog Numbers  
      I. Antibiotics
Kanamycin Bioshop #KAN201  
Ampicillin Bioshop #AMP201  
      2. Terrific-Broth medium
Bio-Tryptone Bioshop #TRP 402  
Yeast extract Bioshop #YEX 555  
Glycerol Bioshop #GLY 002  
K2HPO4 Bioshop #PPM 302  
KH2PO4 Bioshop #PPM 303  
      3. Bacterial Strain and Plasmid
DY330   Yu et al. (2000)10  
pJL148   Zeghouf et al. (2004)7  
      4. PCR and Electrophoresis Reagents
Taq DNA polymerase Fermentas # EP0281  
10 X PCR buffer Fermentas # EP0281  
10 mM dNTPs Fermentas # EP0281  
25 mM MgCl2 Fermentas # EP0281  
Agarose Bioshop # AGA002  
Loading dye NEB #B7021S  
Ethidium bromide Bioshop # ETB444  
10X TBE buffer Thermo Scientific #28355  
Tris Base Bioshop #TRS001  
Boric acid Bioshop #BOR001  
0.5 M EDTA (pH 8.0) Sigma # E6768  
DNA ladder NEB #N3232L  
      5. Plasmid isolation and Clean-up Kits
Plasmid Midi kit Qiagen #12143  
QIAquick PCR purification kit Qiagen #28104  
      6. PCR and Transformation Equipments
Thermal cycler BioRad iCycler  
Agarose gel electrophoresis BioRad    
Electroporator Bio-Rad GenePulser II  
0.2 cm electroporation cuvette Bio-Rad    
42 °C water bath shaker   Innova 3100  
Beckman Coulter TJ-25 centrifuge Beckman Coulter TS-5.1-500  
32 °C Shaker New Brunswick Scientific, USA    
32 °C large Shaker New Brunswick Scientific, USA    
32 °C plate incubator Fisher Scientific    
      7. Electrophoresis and Western blotting
Acrylamide monomer, N,N’- methylenebis-acrylamide Bio-Rad #161-0125  
Ammonium persulfate Bioshop # AMP001  
n-butanol Sigma # B7906  
TEMED Bioshop #TEM001  
Whatman No. 1 filter paper Fischer Scientific #09-806A  
Mini protean 3 cell Bio-Rad #165-3301  
iBlot gel transfer device Invitrogen #IB1001  
Nitrocellulose membranes Bio-Rad #162-0115  
Monoclonal Anti-Flag M2 antibody Sigma #F3165  
Horseradish peroxidase Amersham #NA931V  
Pre-stained protein molecular weight standards Bio-Rad #161-0363  
Chemiluminescence reagent PIERCE #1856136  
Autoradiography film Clonex Corp #CLEC810  
Quick Draw blotting paper Sigma #P7796  
C2 platform rocking shaker New Brunswick Scientific, USA    
      8. Sonication Equipment and Reagents
Sonicator Branson Ultrasonic #23395  
NaCl Bioshop #SOD001  
Protease inhibitors Roche #800-363-5887  
0.5 mM TCEP-HCl Thermo Scientific #20490  
      9. Affinity Purification Reagents and Equipment
0.8 x 4 cm Bio-Rad polypropylene column Bio-Rad #732-6008  
Benzonase nuclease Novagen #70746  
Anti-FLAG M2 agarose beads Sigma #A2220  
Calmodulin-sepharose beads GE Healthcare #17-0529-01  
TEV protease Invitrogen #12575-015  
Triton X-100 Sigma #T9284  
CaCl2 Sigma #C2661  
EGTA Sigma #E3889  
LabQuake Shaker Thermolyne #59558  
      10. Silver Staining Reagents
Methanol Bioshop #MET302  
Acetic acid Bioshop t#ACE222  
Sodium-thiosulfate Sigma #S-7143  
Silver nitrate Fischer Scientific #S181-100  
Formaldehyde Bioshop #FOR201  
Sodium carbonate Bioshop #SOC512  
      11. Reagents and Equipment for Protein Identification
Trypsin Gold, Mass Spectrometry Grade Promega # V5280  
50 mM NH4HCO3 Bioshop #AMC555  
1 mM CaCl2 Bioshop #CCL302  
Acetonitrile Sigma #A998-4  
Formic acid Sigma #F0507  
HPLC grade water Sigma #95304  
Iodoacetamide Sigma #16125  
Millipore Zip-Tip Millipore # ZTC18M960  
~10 cm of 3 μm Luna-C18 resin Phenomenex    
Proxeon nano HPLC pump Thermo Fisher Scientific    
LTQ Orbitrap Velos mass spectrometer   Thermo Fisher Scientific  
      12. Labware
4 liter conical flasks VWR #89000-372  
50 ml polypropylene falcon tubes Any Vendor    
1.5 ml micro-centrifuge tubes Any Vendor    
250 ml conical flaks VWR #29140-045  
15 ml sterile culture tubes Thermo Scientific #366052  
Cryogenic vials VWR #479-3221  
-80 °C freezer Fisher Scientific #13-990-14  
Speed vacuum system Thermo Scientific    
     

Buffers and Solutions

1. 1 liter Terrific Broth (TB) media

11 g Bio-Tryptone
22 g Yeast Extract
2% Glycerol
50 ml potassium salt stock solution

2. Potassium Salt Stock Solution

1.5 M K2HPO4
0.35 M KH2PO4

3. Sonication Buffer

20 mM Tris-HCl (pH 7.9)
150 mM NaCl
0.2 mM EDTA
10% Glycerol
Before use add protease inhibitor (PI) and 0.1-0.5 mM TCEP

4. AFC buffer

30 mM Tris-HCl (pH 7.9)
150 mM NaCl
0.1% detergent
Before use add PI and 0.1-0.5 mM TCEP

5. TEV cleavage buffer

30 mM Tris-HCl (pH 7.9)
150 mM NaCl
0.2 mM EDTA
0.1% detergent
Before use add PI and 0.1-0.5 mM TCEP

6. Calmodulin binding buffer

30 mM Tris-HCl (pH 7.9)
150 mM NaCl
2 mM CaCl2
0.1% detergent
Before use add PI and 0.1-0.5 mM TCEP

7. Calmodulin wash buffer

30 mM Tris-HCl pH 7.9
150 mM NaCl
2 mM CaCl2
0.1-0.5 mM TCEP

8. Calmodulin elution buffer

30 mM Tris-HCl (pH 7.9)
100 mM NaCl
10 mM EGTA
0.1-0.5 mM TCEP

9. Developing solution (1L)

37% Formaldehyde
30 g sodium carbonate
1000 ml distilled water

10. Digestion buffer

50 mM NH4HCO3
1 mM CaCl2

11. Wetting and Equilibration solution

70% acetonitrile (ACN) in 0.1% formic acid

12. Washing solution

100% H2O in 0.1% formic acid

References

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Cite This Article
Babu, M., Kagan, O., Guo, H., Greenblatt, J., Emili, A. Identification of Protein Complexes in Escherichia coli using Sequential Peptide Affinity Purification in Combination with Tandem Mass Spectrometry. J. Vis. Exp. (69), e4057, doi:10.3791/4057 (2012).

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