Summary

Criblage à haut débit pour les petites molécules modulateurs de canaux potassiques entrants Rectifier

Published: January 27, 2013
doi:

Summary

Méthodes d'élaboration et de validation d'un dosage quantitatif de fluorescence pour mesurer l'activité de potassium redresseur actif (Kir) des canaux pour le criblage de composés à haut débit est présenté.

Abstract

Certains membres de la famille redresseur canal potassique vers l'intérieur (Kir) sont postulés cibles thérapeutiques pour une variété de troubles, y compris l'hypertension, la fibrillation auriculaire, et de 1,2 douleur. Pour la plupart, toutefois, les progrès vers la compréhension de leur potentiel thérapeutique, voire fonctions physiologiques a été ralentie par le manque de bons outils pharmacologiques. En effet, la pharmacologie moléculaire de la famille redresseur entrant est restée loin derrière celle de la superfamille S4 de potassium voltage-dépendants (Kv), les canaux pour lesquels un certain nombre d'affinité nanomolaire et très modulateurs sélectifs des toxines peptidiques ont été découverts 3. La toxine du venin d'abeille tertiapin et ses dérivés sont de puissants inhibiteurs de Kir1.1 et Kir3 canaux 4,5, mais peptides sont d'une utilité limitée thérapeutique ainsi que expérimentalement en raison de leurs propriétés antigéniques et la biodisponibilité médiocre, la stabilité métabolique et la pénétrance des tissus. Le développement de puissantset sélectifs de petites molécules sondes avec des propriétés pharmacologiques améliorées sera un élément clé pour bien comprendre la physiologie et le potentiel thérapeutique des canaux Kir.

La moléculaire bibliothèques Sondes de production Network Center (MLPCN) supportée par le National Institutes of Health (NIH) Fonds commun a créé des opportunités pour les scientifiques académiques pour initier des campagnes de sonde de découverte de cibles moléculaires et les voies de signalisation dans le besoin d'une meilleure pharmacologie 6. L'offre aux chercheurs l'accès MLPCN aux centres de dépistage l'échelle industrielle et la chimie médicinale et de l'informatique en charge de développer de petites molécules sondes pour élucider la fonction des gènes et des réseaux de gènes. L'étape critique pour gagner l'entrée à l'MLPCN est le développement d'un test robuste cible ou une voie spécifique qui est susceptible de criblage à haut débit (HTS).

Ici, nous décrivons comment développer une base de fluorescence thallium (Tl +) flux assaY sur Kir canal de fonction pour le criblage à haut débit composé 7,8,9,10. L'essai est basé sur la perméabilité de la chaîne K + pores de la Tl + K + congénère. Un disponibles dans le commerce fluorescent Tl + colorant reporter est utilisé pour détecter le flux transmembranaire de Tl + à travers le pore. Il ya au moins trois colorants disponibles dans le commerce qui sont appropriés pour Tl + tests de flux: BTC, FluoZin-2, 7,8 et Fluxor. Ce protocole décrit le développement de tests à l'aide FluoZin-2. Bien qu'à l'origine développés et commercialisés comme un indicateur de zinc, FluoZin-2 présente une augmentation forte et dose-dépendante de l'émission de fluorescence lors de Tl + contraignant. Nous avons commencé à travailler avec FluoZin-2 avant Fluxor était disponible 7,8 et ont continué à le faire 9,10. Cependant, les étapes de développement de tests sont essentiellement identiques pour les trois colorants, et les utilisateurs devraient déterminer quels colorant est le plus approprié pour leur propre needs. Nous discutons également des critères de performance de l'analyse qui doit être atteint à prendre en considération pour l'entrée à l'MLPCN. Depuis Tl + imprègne facilement la plupart des canaux K +, le dosage doit être adapté à la plupart des objectifs de canaux K +.

Protocol

1. Génération de lignées stables de cellules polyclonales La mise en place d'une lignée cellulaire stable exprimant de haute qualité du canal Kir d'intérêt est une première étape importante vers l'élaboration d'un test de criblage à haut débit robuste. Constitutif canal K + surexpression peut conduire à l'activation de voies de mort cellulaire, la dégénérescence lignée cellulaire stable et la perte de performance du test. Pour éviter ces problèmes potentiels e…

Representative Results

L'utilisation d'un système d'expression inductible par la tétracycline permet un contrôle pratique interne pour distinguer Tl + flux à travers les voies endogènes et le canal Kir d'intérêt. Figure 1 montre quelques exemples de cartes de placage de cellules utilisées dans différents types d'expériences. Les positions des puits contenant les cellules non induites ou induite par la tétracycline sont indiquées par des couleurs différentes. Figure 2A</stron…

Discussion

Traitement des données: Une fois les données recueillies, une étape commune dans l'analyse consiste à normaliser réponse de fluorescence de chaque puits, F, à sa valeur initiale au début de l'expérience, F 0. Ceci est communément appelé le "rapport statique» et symbolisé "F / F 0". Dans le cas où F 0 est dominé par le colorant indicateur du fonctionnement rapport statique pour corriger sensiblement nombreux facteurs tels qu…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Ce travail a été soutenu par un financement du National Institutes of Health des subventions 1R21NS073097-01 et 1R01DK082884 (JSD) et la Fondation pour la PIER11VCTR instituts nationaux de subvention.

Materials

Name of the reagent Company Catalog number Comments
pcDNA5/TO Invitrogen V1033-20 Tetracycline-inducible expression vector
T-REx-HEK293 cells Invitrogen R71007 Tetracycline-inducible cell line
Lipofectamine LTX/Plus Reagent Invitrogen 15338100 Transfection reagent
FBS ATLANTA Biologicals S11550 Cell culture media
DMEM Invitrogen 11965 Cell culture media
Hygromycin B Invitrogen 10687-010 Cell culture media
Blasticidin S Invitrogen R210-01 Cell culture media
Penicillin/Streptomycin Invitrogen 15140 Cell culture media
HBSS-divalent free Mediatech 21022CV Cell washing
Trypsin-0.25% Mediatech 25053CI Cell dissociation
Tetracycline-HCl Sigma T9823 Induction reagent
Dialyzed FBS ATLANTA Biologicals S12650 Plating media
FluoZin-2 Invitrogen F24189 Fluorescent dye
Pluronic F-127 Invitrogen P-3000MP Dye loading
HBSS Invitrogen 14175 Assay buffer
HEPES Invitrogen 15630 Assay buffer
NaHCO3 Sigma S6297 Tl+ stimulus buffer
MgSO4 Sigma M2643 Tl+ stimulus buffer
CaSO4•2H2O Sigma C3771 Tl+ stimulus buffer
D-Glucose Sigma G7528 Tl+ stimulus buffer
Thallium sulfate Aldrich 204625 Tl+ stimulus buffer
HEPES Sigma H4034 Tl+ stimulus buffer
DMSO Sigma D4540 Solvent
Eight-channel electronic pipettor Biohit E300 Cell plating in 384-well plates
BD PureCoat amine-coated 384-well plates BD Biosciences 356719 Assay microplates
Echo qualified 384-Well polypropylene microplate (384PP) Labcyte P-05525 Compound source microplates
384-well polypropylene microplates Greiner Bio-One 781280  
Multidrop Combi reagent dispenser Thermo Scientific 5840300  
ELx405 microplate washer BioTek ELx405HT Automated cell washing
Echo liquid handler Labcyte Labcyte Echo 550  
Bravo automated liquid handling platform Agilent Technologies Standard model  
Hamamatsu FDSS 6000 Hamamatsu   Kinetic imaging plate reader

Table 1. List of Materials and Reagents.

References

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  4. Jin, W., Lu, Z. A novel high-affinity inhibitor for inward-rectifier K+ channels. Biochemistry. 37 (38), 13291 (1998).
  5. Jin, W., Lu, Z. Synthesis of a stable form of tertiapin: a high-affinity inhibitor for inward-rectifier K+ channels. Biochemistry. 38 (43), 14286 (1999).
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Cite This Article
Raphemot, R., Weaver, C. D., Denton, J. S. High-throughput Screening for Small-molecule Modulators of Inward Rectifier Potassium Channels. J. Vis. Exp. (71), e4209, doi:10.3791/4209 (2013).

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