الأشكال الركض الجذعية الجنينية البشرية خلية خطوط مع التربسين
Summary
في هذا الفيديو كيف نظهر مختبرنا الممرات بشكل روتيني الأشكال البشرية خطوط الخلايا الجذعية الجنينية مع التربسين.
Abstract
في هذا الفيديو كيف نظهر مختبرنا الممرات بشكل روتيني الأشكال البشرية خطوط الخلايا الجذعية الجنينية مع التربسين. الخلايا الجذعية الجنينية البشرية والفنية للثقافة الخلية ، وتميل الى اكتساب شذوذ karyotypic الأضعاف مع الكثافة السكانية العالية. الركض السليم أمر ضروري للحفاظ على ، غير متمايزة صحية ، والأشكال الطبيعية karyotypically الخلايا الجذعية الجنينية البشرية الثقافة. أولا ، يتم غسلها ثقافة التوسع في برنامج تلفزيوني وسائل الإعلام لإزالة بقايا وحطام الخلايا ، ثم يتم مضافين الخلايا مع الحد الأدنى من حجم 0.05 ٪ دافئة التربسين – EDTA. ترك التربسين على الخلايا لمدة تصل إلى خمس دقائق ، ثم يتم فكها بلطف مع خلايا ماصة a 2mL المصلية. يتم جمع نظام التعليق الخلية ومختلطة مع كمية كبيرة من الاشكال وسائل الإعلام ، ثم يتم جمع الخلايا بواسطة الطرد المركزي لطيف. تتم إزالة المعطل خليط سائل الإعلام التربسين ، وخلايا معلق في وسائل الاعلام الأشكال السابقة للحرارة. ويتم احتساب نسبة تقسيم المناسب (1:10 عموما 1:20) ، وخلايا إعادة مطلي على طبق من العمر 1-2 اليوم تحتوي على أحادي الطبقة من الماوس الجنينية الخلايا المغذية المشع الليفية. تبقى الثقافة الأشكال المصنفة حديثا لوحة دون عائق لمدة 48 ساعة ، ثم يتم تغيير وسائل الاعلام كل يوم بعد ذلك. فمن المهم عدم trpsinize الى تعليق خلية واحدة ، لأن ذلك يزيد من مخاطر إدخال karyotypic شذوذ.
Protocol
Discussion
في هذا الفيديو كيف أننا أثبتنا الأشكال مرور روتينية الإنسان خطوط الخلايا الجذعية الجنينية في المختبر لدينا. تقسيم فعالة ومنتظمة والركض أمر ضروري للحفاظ على صحة الإنسان الخلايا الجذعية الجنينية الخط. التربسين مرور توسط هو ميزة كبيرة من خطوط الخلايا الأشكال ، ومع ذلك ، فمن المهم…
Materials
References
- Edmond, M. B. Nosocomial bloodstream infections in United States hospitals: a three-year analysis. Clin. Infect. Dis. 29, 239-244 (1999).
- Ramage, G., Bachmann, S., Patterson, T. F., Wickes, B. L., Lopez-Ribot, J. L. Investigation of multidrug efflux pumps in relation to fluconazole resistance in Candida albicans biofilms. J. Antimicrob. Chemother. 49, 973-980 (2002).
- Srinivasan, A., Uppuluri, P., Lopez-Ribot, J., Ramasubramanian, A. K. Development of a High-Throughput Candida albicans Biofilm Chip. PLoS ONE. 6, 19036-19036 (2011).
- Ramage, G., Vandewalle, K., Wickes, B. L., Lopez-Ribot, J. L. Characteristics of biofilm formation by Candida albicans. Rev. Iberoam. Micol. 18, 163-170 (2001).
- Pierce, C. G. A simple and reproducible 96-well plate-based method for the formation of fungal biofilms and its application to antifungal susceptibility testing. Nat. Protoc. 3, 1494-1500 (2008).
- Lee, M. Y. Three-dimensional cellular microarray for high-throughput toxicology assays. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 105, 59-63 (2008).
- Meyerhofer, D. Characteristics of resist films produced by spinning. Journal of Applied Physics. 49, (1978).
- Ramage, G., Vande Walle, K., Wickes, B. L., Lopez-Ribot, J. L. Standardized method for in vitro antifungal susceptibility testing of Candida albicans biofilms. Antimicrob. Agents Chemother. 45, 2475-2479 (2001).
- Chandra, J. Biofilm formation by the fungal pathogen Candida albicans: Development, architecture, and drug resistance. Journal of Bacteriology. 183, 5385-5394 (2001).
- Jabra-Rizk, M. A., Falkler, W. A., Meiller, T. F. Fungal biofilms and drug resistance. Emerg. Infect. Dis. 10, 14-19 (2004).
- Tobudic, S., Lassnigg, A., Kratzer, C., Graninger, W., Presterl, E. Antifungal activity of amphotericin B, caspofungin and posaconazole on Candida albicans biofilms in intermediate and mature development phases. Mycoses. 53, 208-214 (2010).
