Summary

Scheiding van muis embryonale Facial ectoderm en mesenchym

Published: April 12, 2013
doi:

Summary

Een protocol voor het scheiden van embryo gezichts ectoderm en mesenchym beschreven. We gebruiken Dispase II om eerst te behandelen hele embryo's, hele gezicht protuberansen ontleden, en dan scheiden de gezichts-ectoderm en mesenchym.

Abstract

Orofaciale schisis zijn de meest voorkomende craniofaciale defecten, waarvan 1,5 op 1.000 pasgeborenen wereldwijd 1,2. Orofaciale clefting wordt veroorzaakt door abnormale gezichtskenmerken ontwikkeling 3. Bij mens en muis, initiële groei en patroonvorming van het gezicht voert verschillende knopjes weefsel, het gezicht protuberansen 4,5. Het gezicht is afgeleid van zes grote protuberansen: gepaarde frontale neus processen (FNP), maxillaire protuberansen (MXP) en mandibulaire protuberansen (MDP). Deze uitsteeksels bestaan ​​uit zwellingen mesenchym die zijn ingekapseld in een bovenliggende epitheel. Studies in meerdere species is gebleken dat signalering overspraak tussen gezichts ectoderm en mesenchym is cruciaal voor het vormen van het vlak 6. Toch zijn mechanistische gegevens over de genen die betrokken zijn bij deze signalering relais ontbreekt. Een manier om een ​​beter begrip van gen-expressie te krijgen, transcriptiefactor binding en chromatine markeringen in verband met de ontwikping gezichts ectoderm en mesenchym is het isoleren en karakteriseren van de gescheiden weefselcompartimenten.

Hier wordt een werkwijze voor het scheiden gezichts ectoderm en mesenchym op embryonale dag (E) 10.5 kritisch ontwikkelingsstadium muis gezicht formatie fusie van de uitsteeksels voorafgaat. Onze methode is een bewerking van de aanpak die we eerder hebben gebruikt voor het ontleden van het gezicht uitsteeksels 7. In deze eerdere studie hadden we werkzaam inteelt C57BL / 6 muizen als deze stam is uitgegroeid tot een standaard voor de genetica, genomics en gezicht morfologie 8. Hier echter, vanwege de beperktere hoeveelheden weefsel beschikbaar hebben we gebruik gemaakt van de outbred CD-1 stam die goedkoper in aanschaf, robuuster voor veeteelt, en de neiging om meer embryo (12-18) per nest dan inteelt produceren muizenstam 8. Na isolatie embryo werd neutraal protease Dispase II gebruikt om de hele embryo behandelen. Vervolgens werden de gezichts uitsteeksels ontledened uit en het gezicht ectoderm werd gescheiden van het mesenchym. Deze methode houdt zowel de gezichts ectoderm en mesenchym intact. Monsters die met deze methode kan worden gebruikt voor technieken zoals eiwitdetectie, chromatine immunoprecipitatie (ChIP) assay, microarray studies en RNA-seq.

Protocol

1. Bereid Dispase II Bereid Hepes-gebufferde zoutoplossing (HBS) (50 mM Hepes / KOH pH 7,4, 150 mM NaCl). Voeg 2 ml 0,5 M Hepes / KOH pH 7,4 en 1,2 ml 2,5 M NaCl in 16,8 ml Ultrapure H 2 O. Maak 10 mg / ml Dispase II. Weeg 0,2 g Dispase II (Roche, Cat # 4942078001) en los op in 20 ml HBS. Bereid 1,0 ml aliquots in individuele Eppendorf buizen en bij -20 ° C voor lange termijn opslag. Verdun 10 mg / ml Dispase II 1:10 in PBS voor gebruik. Zet de verdunde Dispase II op ijs. …

Representative Results

Na Dispase II behandeling, het ectoderm van het embryo meestal los. Het gezicht uitsteeksels moet intact na sectie (Figuur 2A). De geïsoleerde gezicht ectoderm is helder en vrij van mesenchym weefsel (figuur 2B). De werkzaamheid van het protocol bepalen en kruisbesmetting we getest voorhersenen detecteren uitgedrukt Zic3 9, ectodermale specifieke CDH1 5 en mesenchymale specifieke sox10 10 met reverse transcriptase PCR. Ons onderzoek bevestigde dat zowel…

Discussion

Dit protocol biedt een eenvoudige methode om embryonale muis gezicht ectoderm en mesenchym op basis van een eerste Dispase II behandeling stap te scheiden. In eerdere studies hebben we uitgevoerd ontleding van het gezicht verhevenheden vóór Dispase II behandeling, maar we hebben consistent gevonden dat het mesenchym wordt "sticky" en moeilijk te manipuleren. Onze nieuwe protocol voorkomt dit probleem. Combinatie Dispase II behandeling met zachte fysieke geweld door en neer te pipetteren maakt scheiding van e…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

De auteurs willen graag Irene Choi bedanken voor het illustreren van embryo hoofden in figuur 1 en de andere leden van het laboratorium voor hulp en discussie. Dit werk wordt ondersteund door NIH subsidie ​​DE012728 (TW)

Materials

Name of Reagent/Material Company Catalog Number Comments
Dispase II (neutral protease, grade II) Roche 4942078001 Make 10 mg/ml Dispase II stock solution in HBS. Aliquot and store at -20 °C .
RNAlater Ambion AM7021  

References

  1. Wilkie, A. O., Morriss-Kay, G. M. Genetics of craniofacial development and malformation. Nat. Rev. Genet. 2, 458-468 (2001).
  2. Gritli-Linde, A. Chapter 2 – The Etiopathogenesis of cleft lip and cleft palate: usefulness and caveats of mouse models. Current Topics in Developmental Biology. 84, 37-138 (2008).
  3. Schutte, B. C., Murray, J. C. The many faces and factors of orofacial clefts. Human Molecular Genetics. 8, 1-7 (1999).
  4. Chai, Y., Maxson, R. E. Recent advances in craniofacial morphogenesis. Dev. Dyn. 235, 2353-2375 (2006).
  5. Jiang, R., Bush, J. O., Lidral, A. C. Development of the upper lip: Morphogenetic and molecular mechanisms. Dev. Dyn. 235, 1152-1166 (2006).
  6. Reid, B. S., Yang, H., Melvin, V. S., Taketo, M. M., Williams, T. Ectodermal WNT/β-catenin signaling shapes the mouse face. Developmental Biology. 349, 261-269 (2011).
  7. Feng, W., et al. Spatial and temporal analysis of gene expression during growth and fusion of the mouse facial prominences. PLoS ONE. 4, e8066 (2009).
  8. Chia, R., Achilli, F., Festing, M. F., Fisher, E. M. The origins and uses of mouse outbred stocks. Nat. Genet. 37 (11), 1181-1186 (2005).
  9. Nagai, T., Aruga, J., Takada, S., et al. The expression of the mouse Zic1, Zic2, and Zic3 gene suggests an essential role for Zic genes in body pattern formation. Developmental Biology. 182, 299-313 (1997).
  10. Britsch, S., et al. The transcription factor Sox10 is a key regulator of peripheral glial development. Genes Dev. 15 (1), 66-78 (2001).
check_url/50248?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Li, H., Williams, T. Separation of Mouse Embryonic Facial Ectoderm and Mesenchyme. J. Vis. Exp. (74), e50248, doi:10.3791/50248 (2013).

View Video