Summary

Fabrication puce microfluidique et méthode pour la détection de la grippe

Published: March 26, 2013
doi:

Summary

Une puce microfluidique intégré thermoplastique a été mis au point pour une utilisation comme diagnostic moléculaire. La puce effectue l'extraction d'acide nucléique, la transcriptase inverse et la PCR. Des procédés de fabrication et le fonctionnement de la puce sont décrits.

Abstract

Diagnostics rapides et efficaces jouent un rôle important dans le contrôle des maladies infectieuses en permettant une gestion efficace des patients et le traitement. Ici, nous présentons une puce microfluidique intégré thermoplastique avec la capacité d'amplifier le virus grippal A dans les patients nasopharyngé (NP) des tampons et des ponctions. Lors du chargement de l'échantillon du patient, le dispositif microfluidique porte successivement sur la lyse des cellules sur puce, la purification de l'ARN et des étapes de concentration au sein de l'extraction en phase solide (SPE), la transcription inverse (RT) et la réaction en chaîne par polymérase (PCR) en RT-PCR chambres, respectivement. Point final de détection est réalisée à l'aide d'un Bioanalyzer hors puce (Agilent Technologies, Santa Clara, CA). Pour les périphériques, nous avons utilisé une pompe à seringue unique à conduire des réactifs et des échantillons, tandis que deux appareils de chauffage à couches minces ont été utilisés comme source de chaleur pour la RT et la PCR chambres. La puce est conçue pour être simple couche et adaptée pour la fabrication à haut débit pour réduire la fabricatile temps et le coût. La puce microfluidique offre une plateforme pour analyser une grande variété de virus et de bactéries, limitée seulement par des changements dans la conception des réactifs nécessaires à la détection de nouveaux agents pathogènes d'intérêt.

Introduction

Des millions de décès ont été rapportés au cours des trois pandémies de grippe du 20e siècle 1. En outre, la pandémie de grippe la plus récente a été déclarée par l'Organisation mondiale de la Santé (OMS) 2 en 2009, et à partir de Août 1, 2010, 18 449 décès ont été signalés par l'OMS 3. Cette pandémie a démontré encore une fois la forte charge de maladies infectieuses, et la nécessité d'une détection rapide et précise de la grippe pour permettre la confirmation des maladies rapide, appropriée réponse de santé publique et un traitement efficace 4.

Il existe plusieurs méthodes couramment utilisées pour le diagnostic de la grippe, il s'agit notamment de tests immunologiques rapides et directs tests immunofluorescence (DFAE) et les méthodes de culture virale. Immunoessais rapides considérablement manquent de sensibilité 5-8, tandis que les deux autres méthodes sont de main-d'œuvre et de temps 9. Les tests moléculaires offrent de multiples avantages, y compris un demi-tour peu de temps, SENSIT hauteivité, et une plus grande spécificité. Plusieurs entités commerciales ont travaillé à des tests moléculaires rapides (également appelés tests des acides nucléiques ou des NAT) pour les maladies infectieuses, et plusieurs ont des tests de la grippe dans leurs pipelines. Cependant, la plupart d'entre eux nécessitent la préparation d'échantillons hors puce. Aucun des amendements Clinical Laboratory Improvement (CLIA) a renoncé à des tests moléculaires incorporer la préparation des échantillons d'essai dans la cartouche ou module.

Lab-on-a-chip technologie joue un rôle important dans le développement de dispositifs de contrôle de point de soins. Après l'introduction de la première puce PCR en 1993 10, de nombreux efforts ont été consacrés au développement nucléiques puces de test d'acide. Cependant, seuls quelques-uns d'entre eux ont intégré la préparation des échantillons brut avec une amplification en aval.

Nous avons précédemment démontré la miniaturisation d'une colonne d'extraction en phase solide (SPE) dans une puce microfluidique en plastique 11 et la mise au pointment et l'optimisation d'une puce PCR à flux continu 12. Ici, nous étendons les travaux antérieurs d'intégrer la SPE avec RT et la PCR en une seule puce pour les diagnostics cliniques et démontrer sa capacité à amplifier les acides nucléiques de patients nasopharyngé (NP) des tampons et des ponctions.

Protocol

1. 12 Fabrication puce Faites deux plaques de pastilles 690R Zeonex: distribuer des pastilles de 8-9 grammes Zeonex uniformément dans le centre d'une plaque de métal, préchauffer à la presse chauffée à 198 ° C pendant 5 min, puis appliquer une pression lentement à 2.500 psi pour encore 5 min. Pour compléter cette étape, nous avons utilisé une presse Carver chaude. Gaufrer le canal microfluidique dans la plaque de moule avec une résine époxy. Détails sur le moule de fabri…

Representative Results

Un résultat typique est illustré à la figure 3 pour une grippe A spécimen infecté lavage nasopharyngé. En raison des quantités différentes de virus de la grippe dans chaque échantillon de patient, la concentration finale du produit de PCR est variable. Un bon résultat devrait avoir un faible bruit, deux pics échelle claires (35 et 10380 pb) et un pic seul produit à la taille du produit conçu (107 pb) pour l'échantillon positif. Alors que le pic du produit devrait théoriquement ?…

Discussion

La méthode de diagnostic présenté ici a démontré la capacité d'une puce microfluidique intégré en plastique pour amplifier l'ARN de la grippe A partir d'échantillons de patients avec une haute spécificité et une limite de détection plus bas depuis 13 Nous avons conçu cette puce pour le point de potentiel des tests précaution:. (A) la température et fluidique de contrôle ont été simplifiées, (b) la puce est peu coûteux et convenant à la fabrication à haut débit utilisant le m…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Cette recherche a été financée par les Instituts nationaux de la santé (NIH) subvention R01 EB008268.

Materials

Name of Reagent/Material Company Catalogue Number
1-dodecanol Sigma-Aldrich, St. Louis, MO 443816-500G
2,2-Dimethoxy-2-phenylacetophenone Sigma-Aldrich, St. Louis, MO 196118-50G
2100 Bioanalyzer Agilent Technologies, Santa Clara, CA G2943CA
2-Propanol Sigma-Aldrich, St. Louis, MO 19516
Benzophenone Sigma-Aldrich, St. Louis, MO 239852-50G
BSA Thermo Fisher Scientific,pittsburge, PA A7979-50ML
Butyl methacrylate Sigma-Aldrich, St. Louis, MO 235865-100 ml
Carrier RNA Qiagen, Valencia, CA 1017647
Cyclohexanol Sigma-Aldrich, St. Louis, MO 105899-1L
Ethanol Sigma-Aldrich, St. Louis, MO E7023
Ethylene dimethacrylate Sigma-Aldrich, St. Louis, MO 335861
Ethylene glycol dimethacrylate Sigma-Aldrich, St. Louis, MO 335681-100ML
Glass syringe 250 μl Hamilton, Reno, NV 81127
Guanidine thiocyanate Sigma-Aldrich, St. Louis, MO 50981
High Sensitivity DNA Kit Agilent Technologies, Santa Clara, CA 5067-4626
Hot press Carver,Wabash, IN 4386
J-B Weld Epoxies Mcmaster-Carr,Elmhurst, IL 7605A11
Luer-Lok syringes BD-Medical, Franklin Lakes, NJ 309628
Magnesium Chloride Thermo Fisher Scientific,pittsburge, PA AB-0359
Methanol Sigma-Aldrich, St. Louis, MO 494437
Methyl methacrylate Sigma-Aldrich, St. Louis, MO M55909
Nanoport Upchurch Scientific N-333-01
Nanoport Fitting Upchurch Scientific F-120x
Nuclease free water Thermo Fisher Scientific,pittsburge, PA PR-P1193
OneStep RT-PCR kit Qiagen, Valencia, CA 210210
PEG8000 Sigma-Aldrich, St. Louis, MO 41009
Power supply VWR,Radnor, PA 300V
RNAse Away Sigma-Aldrich, St. Louis, MO 83931-250ML
RNASecure Applied Biosystems, Foster City, CA AM7005
Silica microspheres Polysciences,Warrington, PA 24324-15
Syringe pump Harvard Apparatus,Holliston, MA HA2000P/10
Thermally Conductive Tape Mcmaster-Carr,Elmhurst, IL 6838A11
Thermocouple Omega Engineering, Stamford, CT 5SRTC-TT-J-40-36
Thin-film Heaters Minco,Minneapolis, MN HK5166R529L12A
Ultraviolet Crosslinker UPV, Upland, CA CL-1000
Zeonex Zeon Chemicals, Louisville, KY 690R

References

  1. Nicholls, H. Pandemic Influenza: The Inside Story. PLoS Biol. 4, (2006).
  2. Wenzel, J. J., et al. Analytical performance determination and clinical validation of the novel roche realtime ready influenza A/H1N1 detection set. Journal of Clinical Microbiology. 48, 3088-3094 (2010).
  3. Chan, K. H., et al. Analytical sensitivity of rapid influenza antigen detection tests for swine-origin influenza virus (H1N1. Journal of Clinical Virology: the. 45, 205-207 (2009).
  4. Ginocchio, C. C., et al. Evaluation of multiple test methods for the detection of the novel 2009 influenza A (H1N1) during the New York City outbreak. Journal of. 45, 191-195 (2009).
  5. Aeron, C. H., et al. Performance of influenza rapid point-of-care tests in the detection of swine lineage A(H1N1) influenza viruses. Influenza and Other Respiratory Viruses. 3, 171-176 (2009).
  6. Takahashi, H., Otsuka, Y., Patterson, B. Diagnostic tests for influenza and other respiratory viruses: determining performance specifications based on clinical setting. Journal of Infection and Chemotherapy. 16, 155-161 (2010).
  7. Selvaraju, S. B., Selvarangan, R. Evaluation of Three Influenza A and B Real-Time Reverse Transcription-PCR Assays and a New 2009 H1N1 Assay for Detection of Influenza Viruses. Journal of Clinical Microbiology. 48, 3870-3875 (2009).
  8. Northrup, M. A., Ching, M. T., White, R. M., Watson, R. T. . Transducer’93, seventh international conference on solid state sensors and actuators. , 924-926 (1993).
  9. Bhattacharyya, A., Klapperich, C. M. Thermoplastic microfluidic device for on-chip purification of nucleic acids for disposable diagnostics. Analytical Chemistry. 78, 788-792 (2006).
  10. Cao, Q., Kim, M. -. C., Klapperich, C. Plastic microfluidic chip for continuous-flow polymerase chain reaction: Simulations and experiments. Biotechnology Journal. 6, 177-184 (1002).
  11. Cao, Q., et al. Microfluidic Chip for Molecular Amplification of Influenza A RNA in Human Respiratory Specimens. PLoS ONE. 7, e33176 (2012).
  12. Rådström, P. Purification and Characterization of PCR-Inhibitory Components in Blood Cells. J. Clin. Microbiol. 39, 485-493 (2001).
  13. Boddinghaus, B., Wichelhaus, T. A., Brade, V., Bittner, T. Removal of PCR Inhibitors by Silica Membranes: Evaluating the Amplicor Mycobacterium tuberculosis Kit. J. Clin. Microbiol. 39, 3750-3752 (2001).
  14. Andreasen, D., et al. Improved microRNA quantification in total RNA from clinical samples. Methods. 50, S6-S9 (2010).
check_url/50325?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Cao, Q., Fan, A., Klapperich, C. Microfluidic Chip Fabrication and Method to Detect Influenza. J. Vis. Exp. (73), e50325, doi:10.3791/50325 (2013).

View Video