Denne protokollen muliggjør en direkte sammenligning mellom planktonisk og biofilmmotstand for en bakteriestamme som kan danne en biofilm in vitro ved hjelp av en 96-brønns mikrotiterplate. Planktoniske eller biofilmbakterier er utsatt for serielle fortynninger av det antimikrobielle middelet du velger. Levedyktighet er analysert av vekst på agarplater.
Denne protokollen gir en direkte sammenligning mellom planktonisk og biofilmmotstand for en bakteriestamme som kan danne en biofilm in vitro. Bakterier inokulerer i brønnene til en 96-brønns mikrotiterplate. Når det gjelder den planktoniske analysen, legges serielle fortynninger av det antimikrobielle middelet til bakterielle suspensjoner. I biofilmanalysen, når de er inokulert, blir bakteriene igjen for å danne en biofilm over en bestemt tidsperiode. Uattrerte celler fjernes fra brønnene, mediet etterfylles og serielle fortynninger av det antimikrobielle middelet som velges, tilsettes. Etter eksponering for det antimikrobielle middelet blir de planktoniske cellene analysert for vekst. For biofilmanalysen oppdateres mediene med friske medier som mangler det antimikrobielle middelet, og biofilmcellene blir igjen for å komme seg. Biofilmcelle levedyktighet er analysert etter gjenopprettingsperioden. MBC-P for det antimikrobielle middelet er definert som den laveste konsentrasjonen av stoff som dreper cellene i den planktoniske kulturen. I motsetning bestemmes MBC-B for en stamme ved å utsette preformerte biofilmer for å øke konsentrasjonen av antimikrobielt middel i 24 timer. MBC-B er definert som den laveste konsentrasjonen av antimikrobielt middel som dreper cellene i biofilmen.
Antibiotisk resistensanalyser ble opprinnelig utviklet for å analyseresistens av planktoniske (frisvømming) kulturer av bakterier. Siden mange bakterielle infeksjoner involverer biofilmer (overflatetilknyttet celler), var vi interessert i å utvikle en metode for å analyse biofilmspesifikk antibiotikaresistens. Imidlertid er de fleste antibiotikaresistensanalyser dårlig egnet for å måle motstanden til biofilmer. For eksempel er det å bestemme den minimale hemmende konsentrasjonen (MIC) gullstandarden for å bestemme antibiotikaresistens av planktoniske bakteriekulturer 1. Denne analysen innebærer å blande en fortynnet planktonisk kultur med en fortynningsserie av antibiotika. Konsentrasjonen av antibiotika som hemmer den synlige veksten av de planktoniske cellene er MIC. Siden denne analysen er avhengig av inhibering av vekst, kan den per definisjon ikke fungere med biofilmkulturer, noe som krever å undersøke antibiotikafølsomheten til celler i en forgrodd biofilm. I stedet for å måle veksthemming, bestemmer MBC-B-analysen som er beskrevet her konsentrasjonen av antibiotika som dreper celler som allerede eksisterer i en biofilm. Dermed har denne analysen som mål å etterligne antibiotikabehandlinger av etablerte biofilminfeksjoner, og gi et mer relevant syn på bakteriell antibiotikaresistens in vivo.
Siden biofilmer generelt er mer antibiotikaresistente enn planktoniske kulturer 2-4 , var det nødvendig å utarbeide en metode som direkte relaterer antibiotikaresistensen til en biofilm til en planktonisk kultur. Dermed er et annet mål med denne metoden å kunne sammenligne nivået av antibiotikaresistens direkte mellom planktoniske og biofilmceller. MBC-P- og MBC-B-analysene som er beskrevet her, gjør dette mulig fordi cellene dyrkes under lignende forhold. Vi har brukt denne metoden til å studere flere gener som er viktige for biofilmspesifikk antibiotikaresistens 5-8 .
Antibiotikaresistens i planktoniske celler er definert som en økning i minimum hemmende konsentrasjon (MIC) av et antibiotikum på grunn av en permanent endring i cellene(f.eks. en mutasjon). Mekanismene for biofilmspesifikk motstand eller toleranse som hittil er identifisert, er et resultat av uttrykket av ville gen i biofilmer. Dermed gjelder den klassiske definisjonen av motstand ikke biofilmer. Imidlertid har et annet sett med definisjoner blitt presentert: motstandsmekanismer hindrer antibiotika i å få t…
The authors have nothing to disclose.
Forfatteren vil takke Li Zhang, Xian-Zhi Li, Aaron Hinz og Clayton Hall for redaksjonell hjelp med dette manuskriptet. Denne analysen ble opprinnelig utviklet i laboratoriet til George O’Toole, Geisel School of Medicine i Dartmouth. Forskning i Dr. Mahs laboratorium støttes av tilskudd fra Natural Sciences and Engineering Research Council of Canada og Cystic Fibrosis Canada.
1x M63 |
Prepare as a 5x M63 stock by dissolving 15g KH2PO4, 35g K2HPO4 and 10g (NH4)2SO4 in 1 L of water. This stock does not need to be autoclaved and can be stored at room temperature. Dilute 5x stock 1:5, autoclave, cool, then add the desired components. |
||
KH2PO4 |
Fisher |
P285-500 |
|
K2HPO4 |
Fisher |
P288-500 |
|
(NH4)2SO4 |
Sigma |
A5132 |
|
Magnesium sulfate |
Fisher |
M63-500 |
Add to 1 mM final concentration. Prepare as a 1 M stock in water and autoclave. |
Tobramycin |
Sigma |
Prepare 50 mg/m stock. Aliquot and store at –20°C. |
|
Arginine |
Sigma |
A5131 |
Add to 0.4% final concentration. Prepare as a 20% stock in water and filter sterilize. This alternative carbon/energy source can replace glucose and casamino acids |
96-well microtiter plates |
Corning |
3595 |
Sterile, flat-bottom, low evaporation |
Tranferpette (multichannel pipette) |
BrandTech |
2703610 |
8-channel, 20-200 μl |
Multiprong device |
Dan-Kar |
MC48 |
48 prongs fit into ½ of a 96-well microtiter plate |