Summary

の体系的な分析<em>体外</emマルチウェルプレートマイクロ流体システムを使用して>セルローリング

Published: October 16, 2013
doi:

Summary

この研究は、有意に生理学的に関連するせん断流の下で細胞ローリング研究のスループットを向上させる、マルチウェルプレート、マイクロ流体システムを用いる。カスケードおよび患者における細胞の外因集団の全身送達後の細胞のホーミングの重要性をホーミング多段階の細胞における細胞ローリングの重要性を考えると、このシステムは、細胞ベースの治療を改善するためのスクリーニングプラットフォームとしての可能性を提供しています。

Abstract

細胞ベースの治療のための主要な課題は、全身静脈内または動脈内注入後、目的の組織への高い効率での生存細胞を大量に標的とすることができないことである。従って、細胞ホーミングを増大は、現在細胞治療を改善するための戦略として検討されている。血管内皮上の細胞ローリングは、細胞ホーミングの過程における重要なステップであり、平行平板流動チャンバ(PPFC)を用いてインビトロで調べることができる。しかしながら、これは、コントロール不良のフロー条件で、非常に退屈な、低スループットアッセイである。代わりに、我々は正確に制御され、生理学的に関連するせん断流1,2の下で、より高いスループットで携帯圧延性質の研究が可能になり、マルチウェルプレートのマイクロ流体システムを使用していました。本論文では、HL-60の転がり特性(人間の前骨髄球性白血病)、P-およびE-セレクチンでコーティングされた表面上での細胞だけでなく、細胞の単層でコーティングされた表面にはreadilする方法を示しYは、検討した。良好な炎症状態をシミュレートするために、マイクロ流体チャネルの表面は、次いで、有意に動的条件下でのHL-60細胞との相互作用を増大させる、腫瘍壊死因子-α(TNF-α)で活性化した内皮細胞(EC)でコーティングした。強化されたスループットと、このような速度を圧延パス圧延などのパラメータの迅速な分析を可能にする統合されたマルチパラメータ解析ソフトウェアプラットフォームは、 インビトロの細胞ローリングの特性を評価するための重要な利点である。細胞ローリングおよびホーミングに影響を与えるように設計された工学的アプローチの迅速かつ正確な分析を可能にし、このプラットフォームは、あらかじめ、外因性細胞ベースの治療を助けるかもしれない。

Introduction

細胞ベースの治療の成功臨床翻訳の主要な課題の一つは、非効率的な配信や希望のサイト3,4に全身注入された細胞の標的である。従って、細胞ホーミングを改善するためのアプローチのための一定の探索があり、具体的には細胞療法を改善するための戦略として、ローリング細胞。血管に細胞ローリングは、古典的に疾患部位5に補充される白血球のために定義され、細胞のホーミングカスケードにおける重要なステップである。このステップは、すなわち 、内皮セレクチン間の特異的相互作用によって支配されるP-およびE-セレクチン(P-およびE-SEL)、及びそれらのカウンターリガンド白血球5,6の表面に。理解と細胞のホーミング、具体的には、圧延工程の効率改善は、細胞ベースの治療を改善するための新しいプラットフォームのための探求で非常に重要である。今日まで、この2つの平らなプラットフォームを含む、パラレルプレートフローチャンバー(PPFCs)を使用することによって達成されている細胞懸濁液をシリンジポンプ7,8、9を用いて灌流されたプレートを介して上部に位置する流入および流出ポートと、それらの間にガスケットを有するエス。底板の表面は、関連する細胞単層/基材で被覆することができ、せん断流下灌流細胞と表面との間の相互作用は、その後7を検討ている。しかし、PPFCは気泡形成、漏洩、および主要な欠点​​を提示するコントロール不良の流れと、低スループット、試薬がかかり、かなり面倒な方法です。

従来のPPFCの代替技術は、低消費1,10試薬と細胞アッセイ(PPFCsより最大10倍高い)正確な、コンピュータ制御されたせん断流の下で、より高いスループット性能を可能にする、マルチウェルプレート、マイクロ流体システムである。細胞ローリング実験は、マイクロ流体チャネル内で実行されている細胞単層または操作された基材で被覆することが可能とUSIをイメージngのローリング特性を有する顕微鏡は、容易に適切なソフトウェアを用いて分析した。本研究では、異なる表面上のヒト前骨髄球性白血病(HL-60)細胞のローリングの特性を研究することによって、このマルチウェルプレート、マイクロ流体システムの能力を実証する。 HL-60 P-およびE-selの様基板上の、ならびに異なるローリング受容体を発現する細胞単層上を転動を分析した。また、ブロッキング抗体(Ab)は、それらの表面上のHL-60の回転運動を媒介する特定のセレクチンの直接的な関与を実証した。ローリング実験は、圧延速度、ローリング細胞の数、および圧延パス特性などの主要圧延パラメータの効率的な解析を可能にする、最小限の試薬/細胞消費で、安定したせん断流の下で、増大したスループットを用いて行った。

Protocol

1。細胞培養ヒト前骨髄球性白血病(HL-60)細胞 75センチメートル培養HL-60細胞を20%(v / v)ウシ胎児血清(FBS)、1%(v / v)のL-グルタミンおよび1を補充したイスコフ改変ダルベッコ培地(IMDM)、15 mlの2フラスコ%(v / v)のペニシリン – ストレプトマイシン。 細胞懸濁液体積の半分を吸引し、完全IMDM培地に置き換えて3日毎に培地を変更します。 カルボ…

Representative Results

HL-60細胞は、フィブロネクチン上でP-およびE-セレクチンの表面上にロールではなく、 彼らはローリングリガンド、P-SEL糖タンパク質リガンド-1(PSGL-1)およびシアリル-ルイスX(のSLeX)を含むホーミングリガンドの様々 5,14( 図1(a)を表現するように、HL-60細胞は、ゴールドスタンダード"ローラー"と考えられている)。との特異的な相互作用?…

Discussion

外因性の細胞ベースの治療の成功翻訳の主要な課題の一つは、効率的に、高い生着効率3で ​​傷害や炎症部位 ​​に細胞を送達することができないことである。細胞ローリングは、最終的に組織5への内皮を通して、強固な接着および遊出を導く血管壁上のセルの減速を促進する、細胞のホーミングの過程における重要なステップを表している。候補セルタイプの圧延プロ?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

CHO-P細胞は博士バーバラ·フューリー(ベスイスラエルメディカルセンター、ハーバード大学医学部)からの親切な贈り物だった。この作品は、この作品にもJMKにMovember – 前立腺がん財団チャレンジ賞によって部分的にサポートされていましたJMKに健康グラントHL095722の国立研究所によってサポートされていました

Materials

Cells
Human Lung Microvascular Endothelial Cells Lonza CC-2527
P-selectin-expressing Chinese Hamster Ovary Cells (CHO-P) Kind gift by Dr. Barbara Furie11,12
HL-60 Cells ATCC CCL-240
[header]
Cell Culture Reagents
Endothelial Basal Medium Lonza CC-3156
EBM-2 Media Lonza CC-3156
Endothelial Basal Medium Supplements Lonza CC-4147
EGM-2 MV SingleQuots Lonza CC-4147
IMDM – Iscove's Modified Dulbecco's Medium 1x Gibco 12440
F-12 (1x) Nutrient Mixture (Ham) Gibco 11765-054
Penicillin Streptomycin (P/S) Gibco 15140
L-Glutamine (L/G) 200 mM Gibco 25030
Fetal Bovine Serum (FBS) Atlanta Biologicals Sa550
Petri Dishes BD Falcon BD-353003
100 mm Cell Culture Dish, Tissue-Culture Treated Polystyrene
Centrifuge Tubes (15 ml polypropylene conical tubes) MedSupply Partners TC1500
T75 Flasks BD Falcon 353136
Gelatin Solution (2%) Sigma G1393
dPBS (without calcium chloride and magnesium chloride) Sigma D8537
Trypsin-EDTA Solution (10x) Sigma T4174
[header]
Antibodies
Anti-hE-Selectin/CD62E R&D Systems BBA21
FITC Conjugated Mouse IgG1 R&D Systems BBA21
Anti-hP-Selectin R&D Systems BBA34
FITC Conjugated Mouse IgG1 R&D Systems BBA34
FITC Mouse IgG­1 κ Isotype Control BD Bioscience 555748
Anti-SLeX /CD15s Ab, Clone: 5F18 Santa Cruz SC70545
FITC Conjugated Santa Cruz SC70545
Normal Mouse IgM-FITC Isotype Control Santa Cruz SC2859
PE Mouse Anti-Human CD162, Clone: KPL-1 BD Pharmingen 556055
PE Mouse IgG1 k Isotype Control BD Pharmingen 550617
Anti-P-Selectin Ab (AK4) Santa Cruz SC19996
Anti-E-Selectin Ab, Clone P2H3 Millipore MAB2150
Mouse IgG1 Isotype Control Santa Cruz SC3877
[header]
Other Reagents
Recombinant Human TNF-alpha PeproTech 300-01A
Cell Trace CFSE Cell Proliferation Kit – For Flow Cytometry Invitrogen C34554
Human P-selectin-FC recombinant protein R&D Systems 137-PS-050
Human E-selectin-FC recombinant protein R&D Systems 724-ES-100
Fibronectin Human, Plasma Invitrogen 33016-015
[header]
Equipment
Bioflux 1000 Fluxion Biosciences Bioflux Montage was the software used to run the experiments and analyze the data
BioFlux 48-well plates Fluxion Biosciences
BD Accuri C6 Flow Cytometer BD Bioscience CFlow Plus was the software used to run the experiments and analyze the data
Nikon Eclipse Ti-S Nikon
CoolSnap HQ2 CCD camera Photometrics

References

  1. Conant, C. G., et al. Well plate microfluidic system for investigation of dynamic platelet behavior under variable shear loads. Biotechnol. Bioeng. 108, 2978-2987 (2011).
  2. Conant, C. G., Schwartz, M. A., Ionescu-Zanetti, C. Well plate-coupled microfluidic devices designed for facile image-based cell adhesion and transmigration assays. J. Biomol. Screen. 15, 102-106 (2010).
  3. Ankrum, J., Karp, J. M. Mesenchymal stem cell therapy: Two steps forward, one step back. Trends Mol. Med. 16, 203-209 (2010).
  4. Karp, J. M., Leng Teo, G. S. Mesenchymal stem cell homing: the devil is in the details. Cell Stem Cell. 4, 206-216 (2009).
  5. Luster, A. D., Alon, R., von Andrian, U. H. Immune cell migration in inflammation: present and future therapeutic targets. Nat. Immunol. 6, 1182-1190 (2005).
  6. Ley, K. The role of selectins in inflammation and disease. Trends Mol. Med. 9, 263-268 (2003).
  7. Sperandio, M., Pickard, J., Unnikrishnan, S., Acton, S. T., Ley, K. Analysis of leukocyte rolling in vivo and in vitro. Methods Enzymol. 416 (06), 346-371 (2006).
  8. Brown, D. C., Larson, R. S. Improvements to parallel plate flow chambers to reduce reagent and cellular requirements. BMC Immunol. 2, 9 (2001).
  9. Lawrence, M. B., McIntire, L. V., Eskin, S. G. Effect of flow on polymorphonuclear leukocyte/endothelial cell adhesion. Blood. 70, 1284-1290 (1987).
  10. Conant, C. G., Schwartz, M. A., Nevill, T., Ionescu-Zanetti, C. Platelet adhesion and aggregation under flow using microfluidic flow cells. J. Vis. Exp. (10), e1644 (2009).
  11. Furie, B., Furie, B. C. Role of platelet P-selectin and microparticle PSGL-1 in thrombus formation. Trends Mol. Med. 10, 171-178 (2004).
  12. Tchernychev, B., Furie, B., Furie, B. C. Peritoneal macrophages express both P-selectin and PSGL-1. J. Cell Biol. 163, 1145-1155 (2003).
  13. Conant, C. G., et al. Using well-plate microfluidic devices to conduct shear-based thrombosis assays. J Lab Autom. 16, 148-152 (2011).
  14. Larsen, G. R., et al. P-selectin and E-selectin. Distinct but overlapping leukocyte ligand specificities. J. Biol. Chem. 267, 11104-11110 (1992).
  15. Varki, A. Selectin ligands: will the real ones please stand up. J. Clin. Invest. 100, S31-S35 (1997).
  16. Bohnsack, J. F., Chang, J. Activation of beta 1 integrin fibronectin receptors on HL60 cells after granulocytic differentiation. Blood. 83, 543-552 (1994).
  17. Lawrence, M. B., Kansas, G. S., Kunkel, E. J., Ley, K. Threshold levels of fluid shear promote leukocyte adhesion through selectins (CD62L,P,E). J. Cell Biol. 136, 717-727 (1997).
  18. Moore, K. L., et al. P-selectin glycoprotein ligand-1 mediates rolling of human neutrophils on P-selectin. J. Cell Biol. 128, 661-671 (1995).
  19. Lawrence, M. B., Springer, T. A. Neutrophils roll on E-selectin. J Immunol. 151, 6338-6346 (1993).
  20. Yao, L., et al. Divergent inducible expression of P-selectin and E-selectin in mice and primates. Blood. 94, 3820-3828 (1999).
  21. Sackstein, R. Glycoengineering of HCELL, the human bone marrow homing receptor: sweetly programming cell migration. Ann. Biomed. Eng. 40, 766-776 (2012).
  22. Wiese, G., Barthel, S. R., Dimitroff, C. J. Analysis of physiologic E-selectin-mediated leukocyte rolling on microvascular endothelium. J. Vis. Exp. , e1009 (2009).
  23. Muller, W. A., Luscinskas, F. W. Assays of transendothelial migration in vitro. Methods Enzymol. 443, 155-176 (2008).
  24. Bakker, D. P., vander Plaats, A., Verkerke, G. J., Busscher, H. J., vander Mei, H. C. Comparison of velocity profiles for different flow chamber designs used in studies of microbial adhesion to surfaces. Appl. Environ. Microbiol. 69, 6280-6287 (2003).
  25. Benoit, M. R., Conant, C. G., Ionescu-Zanetti, C., Schwartz, M., Matin, A. New device for high-throughput viability screening of flow biofilms. Appl. Environ. Microbiol. 76, 4136-4142 (2010).
  26. Varki, A. Selectin ligands. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 91, 7390-7397 (1994).
  27. Ramos, C. L., et al. Direct demonstration of P-selectin- and VCAM-1-dependent mononuclear cell rolling in early atherosclerotic lesions of apolipoprotein E-deficient mice. Circ. Res. 84, 1237-1244 (1999).
  28. Yago, T., et al. Core 1-derived O-glycans are essential E-selectin ligands on neutrophils. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 107, (2010).
  29. Yago, T., et al. E-selectin engages PSGL-1 and CD44 through a common signaling pathway to induce integrin alphaLbeta2-mediated slow leukocyte rolling. Blood. 116, 485-494 (2010).
  30. Simone, G., et al. Cell rolling and adhesion on surfaces in shear flow. A model for an antibody-based microfluidic screening system. Microelectronic Eng. 98, 668-671 (2012).
  31. Perozziello, G., et al. Microfluidic devices modulate tumor cell line susceptibility to NK cell recognition. Small. 8, 2886-2894 (2012).
  32. Perozziello, G., et al. Microfluidic biofunctionalisation protocols to form multivalent interactions for cell rolling and phenotype modification investigations. Electrophoresis. , (2013).
  33. Simone, G., et al. A facile in situ microfluidic method for creating multivalent surfaces: toward functional glycomics. Lab Chip. 12, 1500-1507 (2012).
  34. Sarkar, D., et al. Engineered cell homing. Blood. 118, e184-e191 (2011).
  35. Cheng, Z., et al. Targeted Migration of Mesenchymal Stem Cells Modified With CXCR4 Gene to Infarcted Myocardium Improves Cardiac Performance. Mol. Ther. 16, 571-579 (2008).
  36. Enoki, C., et al. Enhanced mesenchymal cell engraftment by IGF-1 improves left ventricular function in rats undergoing myocardial infarction. Int. J. Cardiol. 138, 9-18 (2010).
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Cite This Article
Levy, O., Anandakumaran, P., Ngai, J., Karnik, R., Karp, J. M. Systematic Analysis of In Vitro Cell Rolling Using a Multi-well Plate Microfluidic System. J. Vis. Exp. (80), e50866, doi:10.3791/50866 (2013).

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