Summary

Long Term Kronisk<em> Pseudomonas aeruginosa</em> Luftveisinfeksjon i Mus

Published: March 17, 2014
doi:

Summary

Vi beskriver agar-kuler fremgangsmåte for å etablere vedvarende langvarig kronisk luftveisPseudoMonas aeruginosa-infeksjon i mus-modellen.

Abstract

En musemodell av kronisk luft infeksjon er et nøkkelfelt i cystisk fibrose (CF) forskning, men det er en rekke problemer vedrørende selve modellen. Tidlige fasene av inflammasjon og infeksjon har vært mye studert ved å bruke Pseudomonas aeruginosa agar-perler mus modell, mens bare noen få rapporter har fokusert på langvarig kronisk infeksjon in vivo. Hovedutfordringen for langsiktig kronisk infeksjon forblir lavt bakterie byrden ved P. aeruginosa, og den lave prosentandelen av infiserte mus uker etter utfordring, som indikerer at bakteriecellene blir progressivt fjernet av verten.

Dette papir presenterer en metode for å erholde effektiv langvarig kronisk infeksjon i mus. Denne metoden er basert på innstøping av P. aeruginosa kliniske stammer i agar-kuler in vitro, etterfulgt av intratrakeal instillasjon i C57Bl/6NCrl mus. Bilateral lungeinfeksjon er assosiert med sevtater målbare read-outs inkludert vekttap, dødelighet, kronisk infeksjon, og inflammatorisk respons. The P. aeruginosa RP73 klinisk belastningen ble foretrukket framfor den PAO1 referanselaboratorium belastning siden det resulterte i en relativt lavere dødelighet, mer alvorlige skader, og høyere kronisk infeksjon. P. aeruginosa kolonisering kan vedvare i lungen i over tre måneder. Murine lunge patologi minner om CF pasienter med avansert kronisk lungesykdom.

Denne murine modellen etterligner nærmest løpet av sykdom hos mennesker, og kan brukes både for undersøkelser av patogenesen, og for evaluering av nye behandlingsformer.

Introduction

Cystisk fibrose (CF) er en genetisk sykdom forårsaket av mutasjoner i cystisk fibrose transmembran konduktans regulator (CFTR) genet. Dette genet koder for et klorid-kanal uttrykt på membranen av de epiteliale celler. Bronchiectasis, slim plugging og parenchymal ødeleggelse forårsaket hovedsakelig av Pseudomonas aeruginosa infeksjoner gradvis føre til alvorlig lungesykdom og dødelighet i de fleste av CF pasienter en. Forståelse CF patogenesen og videreutvikling av nye behandlingsformer er avhengige av dyremodell med karakteristiske trekk ved CF. Flere mus, genetisk modifiserte for CFTR-genet, har blitt generert, men begrensninger i evnen til disse artene å rekapitulere CF-lignende lungesykdom og flere andre organ abnormaliteter sett i CF pasienter har blitt mye dokumentert 2.

Utvikling av infeksjon er en av de store utfordringene i CF dyremodell. De litteratur cltidlig antyder at en kronisk infeksjon som varer mer enn en måned kan oppnås bare dersom musene inokulert med bakterier innebygd i et immobiliseringsmiddel slik som agar, agarose, alginat eller tang 3-5. Disse immobilisering av agenter gi microaerobic / anaerobe forhold som gjør at bakterier å vokse i form av-mikro, på samme måte som veksten i slimet av CF-pasienter seks. Denne modellen for kronisk infeksjon fører til persistens av bakterier i lungene forårsaker luftveisinflammasjon og skade 7.. Imidlertid, avhengig av hvilken metode som brukes, bakteriestammen og dosen inokulert i lungene, kan prosentandelen av kronisk infiserte mus og bakteriemengde gjenvunnet i lungene ved ulike tidspunkt variere betraktelig. Spesielt den viktigste utfordringen for langvarig kronisk infeksjon forblir lavt bakterie byrden ved P. aeruginosa, og den lave prosentandelen av infiserte mus uker etter utfordring, som indikerer that bakterieceller blir progressivt fjernet av verten. Ved å velge P. aeruginosa RP73 klinisk belastningen fra en samling av CF isolerer åtte vi hell ervervet lav dødelighet, mer alvorlige skader, og høy andel av kronisk infeksjon med en stabil bakteriemengde opp til en måned i C57Bl/6NCrl mus.

Dette notatet beskriver metode for å bygge P. aeruginosa i agarkulene, vi har smittet mus ved intratrakeal drypping, målt bakteriemengde og cytokiner i lungene, samlet BAL væske og utført histologisk undersøkelse. Samlet sett vil dette protokollen hjelpe forskerne i å ta fundamentalt viktige spørsmål om patogenesen 8,9 og teste nye behandlingsformer mot P. aeruginosa kronisk infeksjon 10,11.

Protocol

En. Forbereder Bakterier for kronisk infeksjon (tre og to dager før Mouse Challenge) Velg riktig P. aeruginosa stamme som skal testes. Vaksinere en loopful av P. aeruginosa fra en -80 ° C lagerkultur av en Trypticase Soy Agar (TSA) plate og inkuberes ved 37 ° C over natten. Plukk en enkelt koloni og inokuler i 5 ml Trypticase Soy Broth (TSB) i en 15 ml snap-lukket rør og inkuberes ved 37 ° C over natten i en risteinkubator ved 200 rpm. <p class="jove_title"…

Representative Results

Når protokollen er gjort riktig, P. aeruginosa agar-kuler vil måle mellom 100 til 200 mikrometer, og kan observeres med en invertert lysmikroskop ved å pipettere et lite volum av agar-perler suspensjonen på et lysbilde. Enkelt bakterielle celler er synlige i agarkulene, som vist i detalj i figur 1. Valget av P. aeruginosa stamme brukes i agar-kuler preparat er kritisk. Figur 2 og Tabell 1 viser data oppnådd ved å føl…

Discussion

De kritiske trinn i P. aeruginosa-perler forberedelse og mus utfordring rapporteres nedenfor.

The P. aeruginosa stamme brukt for mus utfordring er kritisk. Dødelighet, kronisk infeksjon eller klaring kan variere betydelig avhengig av bakteriestammen som brukes for utfordringen. The P. aeruginosa RP73 kliniske belastningen ble foretrukket framfor den PAO1 referanselaboratorium belastning siden det resulterte i en relativt lavere dødelighet, mer alvorlige skader, o…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forskning i Bragonzi laboratorium har vært finansiert av det italienske Cystisk fibrose Foundation (CFaCore) og EU-F7-2009-223670. En del av dette arbeidet ble utført i Alembic, en avansert mikroskopi laboratorium og mus histopatologi ble utført i Enhet for patologisk anatomi (San Raffaele Scientific Institute).

Materials

Bacto Tryptic Soy Broth Becton Dickinson 211823
Difco Agar, granulated Becton Dickinson 214510
Heavy mineral oil Sigma-Aldrich 330760-1L
S-(+)-Ketamine hydrochloride Sigma-Aldrich K1884
Xylazine hydrochloride Sigma-Aldrich X1251
1 ml syringe 25 G 5/8'' 0.5 x 16 mm PIC 3071250300350
Catheter 22GA 0.9 x 25 mm Becton Dickinson 381223
Graefe Forceps – 0.5 mm Tips Curved Fine Science Tools 11152-10
Scissors, Iris, 11 cm, straight World Precision Instruments 501758
Suture clips Fine Science Tools 12040-01
Suture thread Fine Science Tools 18020-40
RPMI 1640 Lonza BE12-167F
Complete protease inhibitor cocktail Roche 11836145001
Fast-Read 102 Burker disposable chamber Biosigma 390497
Tuerk solution Fluka 93770
RBC lysis buffer Biolegend 420301
Fetal bovine serum Lonza DE14-801F
EZ cytofunnel Thermo Scientific A78710021
Superfrost ultra plus microscope slides Thermo Scientific J3800AMNZ
Diff-Quik Romanowsky staining set Medion Diagnostics 130832
Hexadecyltrimethylammonium chloride Sigma-Aldrich 52366-10G
96-well EIA/RIA plate Costar 3590
3,3’,5,5’- tetramethylbenzidine Sigma-Aldrich T8665-1L
Sulfuric acid Sigma-Aldrich 320501-1L
10% neutral buffered formalin Bio-optica 05-01005Q
Harris haematoxylin non Papanicolau Bio-optica 05-M06004
Eosin plus alcoholic solution Bio-optica 05-M11007
[header]
Equipment
Shaking incubator Amerex Instruments Steady Shake 757
Water bath Grant SUB14
Homogenizer Ystral
Precision balance KERN 440-47N
Cytocentrifuge Thermo Scientific A78300003
Low Cost Heating Pad 2biol LCHP
Homogenization probe Ystral 2366931(great)
2366925(small)
Inverted optical microscope Zeiss Axioplan2
Camera (microscope) Zeiss Axiocam MRc5
Rotary microtome Leica RM2255

References

  1. Gibson, R., Burns, J. L., Ramsey, B. W. Pathophysiology and management of pulmonary infections in cystic fibrosis. Am. J. Respir. Crit. Care. 168, 918-951 (2003).
  2. Bragonzi, A. Murine models of acute and chronic lung infection with cystic fibrosis pathogens. IJMM. 300, 584-593 (2010).
  3. Cash, H. A., McCullough, B., Johanson, W. G., Bass, J. A. A rat model of chronic respiratory infection with Pseudomonas aeruginosa. Am. Rev. Respir. Dis. 119, 453-459 (1979).
  4. Starke, J. R., Langston, C., Baker, C. J. A mouse model of chronic pulmonary infection with Pseudomonas aeruginosa and Pseudomonas cepacia. Pediatr. Res. 22, 698-702 (1987).
  5. Pedersen, S. S., Hansen, B. L., Hansen, G. N. Induction of experimental chronic Pseudomonas aeruginosa lung infection with P. aeruginosa entrapped in alginate microspheres. APMIS. 98, 203-211 (1990).
  6. Bragonzi, A., et al. Nonmucoid Pseudomonas aeruginosa expresses alginate in the lungs of patients with cystic fibrosis and in a mouse model. J. Infect. Dis. 192, 410-419 (2005).
  7. van Heeckeren, A. M. Murine models of chronic Pseudomonas aeruginosa lung infection. Lab. Anim. 36, 291-312 (2002).
  8. Bragonzi, A., et al. Pseudomonas aeruginosa microevolution during cystic fibrosis lung infection establishes clones with adapted virulence AJRCCM. 180, 138-145 (2009).
  9. Kukavica-Ibrulj, I., Facchini, M., Cigana, C., Levesque, R. C., Bragonzi, A., Filloux, S., Ramos, J. L. Assessing Pseudomonas aeruginosa virulence and the host response using murine models of acute and chronic lung infection. Methods in Pseudomonas aeruginosa: Humana Press. , (2014).
  10. Moalli, F., et al. The Therapeutic Potential of the Humoral Pattern Recognition Molecule PTX3 in Chronic Lung Infection Caused by Pseudomonas aeruginosa. J. Immunol. 186, 5425-5534 .
  11. Paroni, M. Response of CFTR-deficient mice to long-term Pseudomonas aeruginosa chronic infection and PTX3 therapeutic treatment. J. Infect. Dis. In press, .
  12. Maxeiner, J., Karwot, R., Hausding, M., Sauer, K. A., Scholtes, P., Finotto, S. A method to enable the investigation of murine bronchial immune cells, their cytokines and mediators. Nat. Protoc. 2, 105-112 (2007).
  13. Bragonzi, A., et al. Pseudomonas aeruginosa microevolution during cystic fibrosis lung infection establishes clones with adapted virulence.. AJRCCM. In press, (2009).
  14. Pirone, L., et al. Burkholderia cenocepacia strains isolated from cystic fibrosis patients are apparently more invasive and more virulent than rhizosphere strains. Environ. Microbiol. 10, 2773-2784 (2008).
  15. Bragonzi, A., et al. Modelling co-infection of the cystic fibrosis lung by Pseudomonas aeruginosa and Burkholderia cenocepacia reveals influences on biofilm formation and host response. PLoS One. 7, .
  16. Bianconi, I., et al. Positive signature-tagged mutagenesis in Pseudomonas aeruginosa: tracking patho-adaptive mutations promoting long-term airways chronic infection. PLoS Pathog.. 7, (2011).
check_url/51019?article_type=t&slug=long-term-chronic-pseudomonas-aeruginosa-airway-infection-in-mice

Play Video

Cite This Article
Facchini, M., De Fino, I., Riva, C., Bragonzi, A. Long Term Chronic Pseudomonas aeruginosa Airway Infection in Mice. J. Vis. Exp. (85), e51019, doi:10.3791/51019 (2014).

View Video