Summary

Efter i realtid konsekvens av Pneumococcal Virulensfaktorer i en akut Mus Lunginflammation Modell Använda självlysande bakterier

Published: February 23, 2014
doi:

Summary

Streptococcus pneumoniae är den ledande patogen orsakar svår samhällsförvärvad lunginflammation och ansvarig för mer än 2 miljoner dödsfall i världen. Effekterna av bakteriella faktorer inblandade i fitness eller virulens kan följas i realtid på en akut mus lunginflammation eller bakteriemi modell med självlysande bakterier.

Abstract

Lunginflammation är en av de största hälso-och sjukvårdsproblem i utvecklingsländer och industrialiserade länder och är förenat med betydande morbiditet och mortalitet. Trots framsteg inom kunskap om denna sjukdom, tillgången på intensivvårdsavdelningar (IVA), och användning av potenta antimikrobiella medel och effektiva vaccin, dödligheten förblir hög 1. Streptococcus pneumoniae är den ledande patogen av samhällsförvärvad pneumoni (CAP) och en av de vanligaste orsakerna till bakteriemi hos människa. Denna patogen är utrustad med en arsenalen av yt-exponerade adhesinerna och virulensfaktorer som bidrar till lunginflammation och invasiv pneumokocksjukdom (IPS). Bedömningen av vilken roll in vivo av bakteriella fitness eller virulensfaktorer är av yttersta vikt för att riva upp S. pneumoniae patogenicitet mekanismer. Musmodeller av lunginflammation, bakteriemi och meningit används för att bedöma effekten av pneumokocker faktorer vid difka stadier av infektionen. Här beskriver vi ett protokoll för att övervaka i realtid pneumokock spridning i möss efter intranasal eller intraperitoneala infektioner med självlysande bakterier. Resultaten visar förökning och spridning av pneumokocker i de nedre luftvägarna och blod, som kan visualiseras och utvärderas med hjälp av ett bildsystem och medföljande analysprogram.

Introduction

Luftvägsinfektioner orsakade av virus eller bakterier förbli en av de vanligaste samhällsförvärvad eller kliniska problem världen över orsakar ungefär en tredjedel av alla dödsfall i världen. De viktigaste bakteriearter är Haemophilus influenzae och Streptococcus pneumoniae 2. Dessa bakteriearter är normalt vanliga beståndsdelarna i den naturliga luftvägsfloran. Bakteriell vagn är alltså också av viss risk för invasiv sjukdom och beroende på immunstatus eller anlag för individerna. Den asymtomatisk kolonisering utlöses till invasiva infektioner. Streptococcus pneumoniae är den ledande patogen av samhällsförvärvad pneumoni (CAP) och en av de vanligaste orsakerna till bakteriemi hos människor. Hos friska individer S. pneumoniae (pneumokocker) är ofta asymtomatiska och ofarliga kolonisatörer i de övre luftvägarna, där de konfronteras med icke-patogena bakterierav de inhemska växter men även med patogener som Haemophilus spp.. eller Staphylococcus aureus och den första raden i det mänskliga immunförsvaret. Transport är högst i små barn (37%) och ännu högre inom trånga daghem (58%) 3-5. Den yngsta befolkningen och de äldre, tar emot pneumokocker via transmission aerosol från transportörer och nasofaryngeala sekret 6, tillhör högriskgrupper och vaccination genom att använda en av konjugerat pneumokock vaccin (PCV10 eller PCV13 hos barn och 23-valent polysackarid PPSV23 hos vuxna) rekommenderas i USA (US) och många europeiska länder 4. Den PPSV23 omfattar serotyper som är ansvariga för ~ 90% av de bacteremic pneumokocksjukdomar i USA och Europa, hindrar därmed effektivt invasiva pneumokocksjukdomar (IPD) hos vuxna, medan PCVs täcker de vanligaste serotyperna hos barn. Följaktligen IPD grund av vaccintyper (VT) är reduced men nonvaccine serotyper visar en hög virulens potential och antibiotikaresistens har uppstått 4,7-12. Nasofarynx eftersom behållaren är utgångspunkten för pneumokocker att sprida sig till bihålorna eller mellersta öron initierar skadliga lokala infektioner. Viktigare, pneumokocker sprids direkt via luftvägarna till bronker och lungor vilket leder till livshotande CAP 4,13. Lunginfektioner är ofta tillsammans med vävnad och barriär förstörelse, så att patogenen att sprida sig in i blodet och orsakar IPD. Förekomsten av den gemensamma jordbrukspolitiken och IPD är högst i nedsatt immunförsvar personer eller i extremlägena för ålders 4,13. De omständigheter som ansvarar för omvandlingen från en kommen till en patogen med hög virulens är fortfarande under diskussion. Men förutom förändringar i värd känslighet och evolutionär anpassning tillsammans med högre virulens och ökningen av antibiotika resistanser har föreslagits att ha en avgörande inverkan på pneumococcal infektioner 14-16.

Den patogen är utrustad med en mångfald av adhesiner förmedlar intim kontakt till mukosala epitelceller. Efter att övervinna luftvägarna slem, är pneumokocker vidhäftning till värdceller underlättas genom direkta interaktioner av yt-exponerade adhesinerna med cellulära receptorer och genom att utnyttja extracellulära matrixkomponenter eller serumproteiner som överbryggande molekyler 4,17,18. Som mångsidiga patogener pneumokocker är också utrustade med faktorer som kringgående av värdimmun försvarsmekanismer. Dessutom har de förmågan att anpassa sig till olika värdmiljöer såsom lunga, blod och cerebrospinalvätska (CSF), respektive 5,17,19,20.

Effekterna av bakteriella faktorer på patogenes och inflammatorisk värdsvar undersöks i experimentella djurmodeller av lunginflammation, bakteriemi, eller meningit 21-25. Trots att en mänsklig patogen, dessa modeller är vill-etablerade dechiffrera pneumokock vävnad tropism, virulens mekanismer, eller protectivity av pneumokockvaccin kandidater. Den genetiska bakgrunden av inavlade musstammar bestämmer mottagligheten för pneumokocker. BALB / c-möss intranasalt infekterade med pneumokocker befanns vara resistent, medan CBA / Ca och SJL möss var mer känslig mot pneumokockinfektioner 22. Detta innebär att, i likhet med människor, den genetiska bakgrunden och värdförsvarsmekanismerna att avgöra resultatet av infektionen. Därför krävs ytterligare ansträngningar för att riva upp motstånds loci i genomet hos möss är mindre känsliga för pneumokockinfektioner. Resultaten har lett till förändringar i in vivo virulens protokoll. I stället för de inavlade BALB / c-möss som ofta används i det förflutna, är de mycket känsliga CD-1/MF1 utavlade musstammar numera ofta för att studera effekten av förlust-av-funktion pneumokock virulens eller lämplighet faktorer 26-28. Dessutom är tillgångenav bioluminescent pneumokocker och optiska avbildningstekniker gör det möjligt för realtids bioluminescens bioimaging av infektioner. I pneumokocker den optimerade luxABCDE genkassett (plasmid Paul-A Tn 4001 luxABCDE Km ^) har satts in i ett enda ställe på kromosomen genom transposonmutagenes integration. Bioluminescent pneumokocker har använts för att utvärdera dämpningen av pneumokock-mutanter med brist på virulens eller träningsfaktorer och dess translokation från en anatomisk plats till en annan 26,28-31.

Här ger vi ett protokoll för bioimaging av pneumokockinfektioner i en mus lunginflammation eller blodförgiftning modell. Amplifiering och spridning av bioluminescent pneumokocker i intranasalt eller intraperitonealt infekterade möss kan lätt följas över tid med användning av ett optiskt avbildningssystem och samma djur vid olika tidpunkter.

Protocol

Djur infektion experiment som beskrivs här måste utföras helt i enlighet med den lokala och internationella (t.ex. European Health Law av federationen av Laboratory Animal Science föreningar (FELASA)) riktlinjer och bestämmelser för användning av ryggradsdjur. Försöken måste godkännas av den lokala etiska styrelse och Institutional Animal Care kommittén. Alla experiment med S. pneumoniae i laboratorium eller djurinfektioner genomförs på ett klass II biosäkerhet skåp. <p class="jove_…

Representative Results

Förvärvet och upptag av metionin är av central betydelse för pneumokocker att bibehålla konditionen i värd nisch 32,33. Den metionin ABC transportör lipoprotein kodas i D39 av spd _ 0151-genen (TIGR4: sp_0149) och namngav MetQ 32. Pneumokocker producera ytterligare metionin biosyntetiska enzymer (D39: Spd_0510 – Spd_0511, TIGR4 Sp_0585 – Sp_0586, Mete och MetF). Bristen på metionin i ett kemiskt definierat medium påverkar tillväxten av pneumokocker och liknande,…

Discussion

Alla experiment som utförts på djur måste godkännas av lokala myndigheter och etikkommissioner. I in vivo-infektionsexperiment den bakteriella belastningen i de olika värd nischer av infekterade djur måste bestämmas vid olika tidpunkter efter infektion. Under dessa experimentella förhållanden djuren måste offras innan isolering av bakterier från blod, nasofarynx, bronchoalvelar sköljning, eller organ såsom lungor, mjälte och hjärna. För att beräkna antalet bakterier per värd nisch och be…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forskning i labbet har finansierats med bidrag från Deutsche Forschungsgemeinschaft (DFG HA 3125/3-2, DFG HA 3125/4-2) och förbundsministeriet för utbildning och forskning (BMBF) Medicinsk Infektion Genomics (FKZ 0315828A) till SH.

Materials

Todd Hewitt broth Carl Roth, Karlsruhe, Germany X936.1
Yeast extract Carl Roth, Karlsruhe, Germany 2363.2
Blood agar plates Oxoid, Wesel, Germany PB5039A
Kanamycin Carl Roth, Karlsruhe, Germany T832.2
Erythromycin Sigma-Aldrich,Taufkirchen, Germany E6376
fetal bovine serum (FBS) PAA Laboratories, Coelbe, Germany A11-151
CD-1 mice, female Charles River, Sulzfeld, Germany CD1SIFE06W08W female CD-1 mice, six to eight weeks old
Ketamin 500mg, Curamed injection solution Schwabe-Curamed, Karlsruhe, Germany
Rompun 2%, injection solution Bayer Animal Health, Monheim, Germany
BD Plastipak 1 ml syringes Becton Dickinson, Heidelberg, Germany 300015 sterile Luer-Lok™ syringes with needle
Gel Loader Tips peqlab 81-13790 MµltiFlex™ Tips
Hyaluronidase Sigma-Aldrich H3884-100mg Hyaluronidase Type IV-S from Bovine test
Oxygen Air Liquide, Düsseldorf, Germany M1001L50R2A001
Isofluoran Baxter, Unterschleißheim, Germany
pGEM-T Easy Promega, Mannheim, Germany
Oligonucleotides Eurofins MWG, Ebersberg, Germany
Qiaprep Spin Midiprep Kit Qiagen, Hilden, Germany 27104
PCR DNA purification kit Qiagen, Hilden, Germany 28106
Equipment
Living Image 4.1 software Caliper Life Sciences/PerkinElmer, Rodgau, Germany
XGI-8 Gas Anesthesia System Caliper Life Sciences/PerkinElmer, Rodgau, Germany
IVIS Spectrum Imaging System Caliper Life Sciences/PerkinElmer, Rodgau, Germany
Biophotometer Eppendorf AG, Hamburg, Germany

References

  1. Niederman, M. S., et al. Guidelines for the management of adults with community-acquired pneumonia. Diagnosis, assessment of severity, antimicrobial therapy, and prevention. Am. J. Respir. Crit. Care Med. 163, 1730-1754 (2001).
  2. WHO, The global burden of disease: 2004 update. World Health Organization. , (2008).
  3. Bogaert, D., et al. Colonisation by Streptococcus pneumoniae and Staphylococcus aureus in healthy children. Lancet. 363, 1871-1872 (2004).
  4. Gamez, G., Hammerschmidt, S. Combat pneumococcal infections: adhesins as candidates for protein-based vaccine development. Curr. Drug Targets. 13, 323-337 (2012).
  5. Mook-Kanamori, B. B., Geldhoff, M., vander Poll, T., Dvan de Beek, D. Pathogenesis and pathophysiology of pneumococcal meningitis. Clin. Microbiol. Rev. 24, 557-591 (2011).
  6. Musher, D. M. How contagious are common respiratory tract infections. N. Engl. J. Med. 348, 1256-1266 (2003).
  7. Brueggemann, A. B., Pai, R., Crook, D. W., Beall, B. Vaccine escape recombinants emerge after pneumococcal vaccination in the United States. PLoS Pathog. 3, (2007).
  8. Munoz-Almagro, C., et al. Emergence of invasive pneumococcal disease caused by nonvaccine serotypes in the era of 7-valent conjugate vaccine. Clin. Infect. Dis. 46, 174-182 (2008).
  9. Whitney, C. G. Impact of conjugate pneumococcal vaccines. Pediatr. Infect. Dis. J. 24, 729-730 (2005).
  10. Whitney, C. G., et al. Decline in invasive pneumococcal disease after the introduction of protein-polysaccharide conjugate vaccine. N. Engl. J. Med. 348, 1737-1746 (2003).
  11. Lynch, J. P., Zhanel, G. G. Streptococcus pneumoniae: epidemiology and risk factors, evolution of antimicrobial resistance, and impact of vaccines. Curr. Opin. Pulm. Med. 16, 217-225 (2010).
  12. Singleton, R. J., et al. Invasive pneumococcal disease caused by nonvaccine serotypes among Alaska native children with high levels of 7-valent pneumococcal conjugate vaccine coverage. JAMA. 297, 1784-1792 (2007).
  13. Dockrell, D. H., Whyte, M. K., Mitchell, T. J. Pneumococcal pneumonia: mechanisms of infection and resolution. Chest. 142, 482-491 (2012).
  14. Lieberman, T. D., et al. Parallel bacterial evolution within multiple patients identifies candidate pathogenicity genes. Nat. Genet. 43, 1275-1280 (2011).
  15. Yang, J., Tauschek, M., Robins-Browne, R. M. Control of bacterial virulence by AraC-like regulators that respond to chemical signals. Trends Microbiol. 19, 128-135 (2011).
  16. Young, B. C., et al. Evolutionary dynamics of Staphylococcus aureus during progression from carriage to disease. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 109, 4550-4555 (2012).
  17. Kadioglu, A., Weiser, J. N., Paton, J. C., Andrew, P. W. The role of Streptococcus pneumoniae virulence factors in host respiratory colonization and disease. Nat. Rev. Microbiol. 6, 288-301 (2008).
  18. Voss, S., Gamez, G., Hammerschmidt, S. Impact of pneumococcal microbial surface components recognizing adhesive matrix molecules on colonization. Mol. Oral Microbiol. 27, 246-256 (2012).
  19. Koppe, U., Suttorp, N., Opitz, B. Recognition of Streptococcus pneumoniae by the innate immune system. Cell. Microbiol. 14, 460-466 (2012).
  20. Paterson, G. K., Mitchell, T. J. Innate immunity and the pneumococcus. Microbiology. 152, 285-293 (2006).
  21. Gerber, J., et al. A mouse model of Streptococcus pneumoniae meningitis mimicking several features of human disease. Acta Neuropathol. 101, 499-508 (2001).
  22. Gingles, N. A., et al. Role of genetic resistance in invasive pneumococcal infection: identification and study of susceptibility and resistance in inbred mouse strains. Infect. Immun. 69, 426-434 (2001).
  23. Holmes, A. R., et al. The pavA gene of Streptococcus pneumoniae encodes a fibronectin-binding protein that is essential for virulence. Mol. Microbiol. 41, 1395-1408 (2001).
  24. Koedel, U., Klein, M., Pfister, H. W. New understandings on the pathophysiology of bacterial meningitis. Curr. Opin. Infect. Dis. 23, 217-223 (2010).
  25. Medina, E. Murine model of pneumococcal pneumonia. Methods Mol. Biol. 602, 405-410 (2010).
  26. Hartel, T., et al. Impact of glutamine transporters on pneumococcal fitness under infection-related conditions. Infect. Immun. 79, 44-58 (2011).
  27. Hermans, P. W., et al. The streptococcal lipoprotein rotamase A (SlrA) is a functional peptidyl-prolyl isomerase involved in pneumococcal colonization. J. Biol. Chem. 281, 968-976 (2006).
  28. Jensch, I., et al. PavB is a surface-exposed adhesin of Streptococcus pneumoniae contributing to nasopharyngeal colonization and airways infections. Mol. Microbiol. 77, 22-43 (2010).
  29. Kadioglu, A., et al. Pneumococcal protein PavA is important for nasopharyngeal carriage and development of sepsis. Mol. Oral Microbiol. 25, 50-60 (2010).
  30. Orihuela, C. J., Gao, G., Francis, K. P., Yu, J., Tuomanen, E. I. Tissue-specific contributions of pneumococcal virulence factors to pathogenesis. J. Infect. Dis. 190, 1661-1669 (2004).
  31. Francis, K. P., et al. Visualizing pneumococcal infections in the lungs of live mice using bioluminescent Streptococcus pneumoniae transformed with a novel gram-positive lux transposon. Infect. Immun. 69, 3350-3358 (2001).
  32. Basavanna, S., et al. The effects of methionine acquisition and synthesis on Streptococcus pneumoniae growth and virulence. PLoS One. 8, (2013).
  33. Hartel, T., et al. Characterization of central carbon metabolism of Streptococcus pneumoniae by isotopologue profiling. J. Biol. Chem. 287, 4260-4274 (2012).
  34. Hammerschmidt, S., et al. The host immune regulator factor H interacts via two contact sites with the PspC protein of Streptococcus pneumoniae and mediates adhesion to host epithelial cells. J. Immunol. 178, 5848-5858 (2007).
  35. Voss, S., et al. The choline-binding protein PspC of Streptococcus pneumoniae interacts with the C-terminal heparin-binding domain of vitronectin. J. Biol. Chem. , (2013).
  36. Cartwright, K. Pneumococcal disease in western Europe: burden of disease, antibiotic resistance and management. Eur. J. Pediatr. 161, 188-195 (2002).
  37. vander Linden, M., Al-Lahham, A., Nicklas, W., Reinert, R. R. Molecular characterization of pneumococcal isolates from pets and laboratory animals. PLoS One. 4, (2009).
  38. Brehm, , et al. Sequence of the adenine methylase gene of the Streptococcus faecalis plasmid pAM beta 1. Nucleic Acids Res. 15, 3177 (1987).

Play Video

Cite This Article
Saleh, M., Abdullah, M. R., Schulz, C., Kohler, T., Pribyl, T., Jensch, I., Hammerschmidt, S. Following in Real Time the Impact of Pneumococcal Virulence Factors in an Acute Mouse Pneumonia Model Using Bioluminescent Bacteria. J. Vis. Exp. (84), e51174, doi:10.3791/51174 (2014).

View Video