Summary

Intrastriatal Injektion af autologt blod eller Clostridial Collagenase som murine modeller af intracerebral blødning

Published: July 03, 2014
doi:

Summary

Preclinical models of intracerebral hemorrhage are utilized to mimic certain aspects of clinical disease. Thus, mechanisms of injury and potential therapeutic strategies may be explored. In this protocol, two models of intracerebral hemorrhage are described, intrastriatal (basal ganglia) injections of autologous blood or collagenase.

Abstract

Intracerebral blødning (ICH) er en almindelig form af cerebrovaskulær sygdom, og er forbundet med betydelig morbiditet og mortalitet. Mangel på effektiv behandling og svigt af store kliniske forsøg med henblik på hæmostase og blodprop fjernelse demonstrere behovet for yderligere mekanisme drevet undersøgelse af ICH. Denne forskning kan udføres gennem de rammer, som prækliniske modeller. To murine modeller i populære brug omfatter intrastriatal (basalganglierne) injektion af enten autolog fuldblod eller Clostridium collagenase. Da hver model repræsenterer klart forskellige patofysiologiske funktioner i forbindelse med ICH kan vælges anvendelse af en bestemt model, baseret på, hvad aspekt af sygdommen, der skal undersøges. For eksempel autologt blod injektion mest nøjagtigt repræsenterer hjernens reaktion på tilstedeværelsen af ​​intraparenchymal blod, og kan bedst replikere lobar blødning. Clostridialt collagenase injektion mest præcist repræsenterer de sindkøbscenter fartøj brud og hæmatom evolution karakteristisk for dybe blødninger. Således hver modelresultater i forskellige hæmatom dannelse, neuroinflammatoriske svar, hjerneødem udvikling og neurobehavioral resultater. Robusthed af en påstået terapeutisk intervention kan bedst vurderes ved hjælp af begge modeller. I denne protokol, er induktion af ICH med begge modeller, øjeblikkelig postoperativ demonstration af skade, og tidlige postoperative pleje teknikker demonstreret. Begge modeller resulterer i reproducerbare skader, hæmatom mængder og neurobehavioral underskud. På grund af heterogenitet menneskelig ICH, er der behov for flere prækliniske modeller til grundigt at undersøge patofysiologiske mekanismer og afprøve mulige terapeutiske strategier.

Introduction

Intracerebral blødning (ICH) er en forholdsvis almindelig form for cerebrovaskulær sygdom med ca 40-50% af ramte patienter dør inden for 30 dage 1. Desværre er en lille forbedring er sket i dødeligheden i de sidste 20 år 2. Rapporter fra National Institutes of Health 3 og retningslinjer fra American Heart Association 4 understregede vigtigheden af at udvikle klinisk relevante modeller af ICH til at udvide forståelsen af patofysiologien og udvikle mål for nye terapeutiske tilgange.

Flere modeller eksisterer for at efterligne menneskelige ICH 5. Som forståelse af ICH patofysiologi modnes, er det blevet klart, at en bred vifte af modeller, kan benyttes til at undersøge forskellige aspekter af sygdommen. Tidligere anvendte modeller omfatter murine amyloidangiopati 6, intraparenchymal mikroballonsfyldstof isætning og inflation 7 og direkte arterieblodinfiltration 8,9. Lobar blødning fra amyloidangiopati er modelleret med anvendelsen af ​​transgene mus og udgør en særskilt ICH subtype. Mikroballonsfyldstof modeller efterligne akut masse fra dannelse af hæmatomer, men undlader at fange hjernens cellulære respons på tilstedeværelsen af ​​blod. Endelig direkte arteriel blod infiltration udsætter hjernen til arterielle pres fra den femorale arterie. Således Denne model efterligner arterielle tryk og tilstedeværelsen af ​​blod, men ikke udsætte hjernen til mikrovaskulære skader fra små blodkar brud. Endvidere har denne model i sagens natur stor variation. Interessant, spontant hypertensive rotter 10 udvikle spontan ICH som de bliver ældre. Undersøgelse af disse dyr efter ICH udvikling kan efterligne sygdommen i overværelse af en af ​​de store følgesygdomme som disponerer mennesker til ICH. Selv om disse andre modeller findes, intrastriatal injektion af Clostridium collagenase 11 eller instrastiatal injektion af enutologous fuldblod 12 er, i øjeblikket, bruges de to mest almindelige modeller i præklinisk ICH forskning.

ICH model udvælgelse bør ske på grundlag af formålet med den eksperimentelle spørgsmål, herunder arter udvælgelse og fremgangsmåde til at inducere dannelse af hæmatomer. For eksempel grise er store dyr med relativt store hvide substans i hjernen mængder sammenlignet med mus. Således er grisemodeller velegnet til at studere hvide substans patofysiologi efter hjerneblødning. I modsætning hertil hjerner gnaver er stort set grå materie, men transgene systemer gør gnavere nyttigt at vurdere molekylære mekanismer for skade og bedring efter hjerneblødning. Hver model har sine iboende styrker og svagheder (tabel 1), som bør overvejes nøje, før eksperimenter.

Følgende protokoller demonstrere de autologe blod og collagenase injektion modeller i mus. Disse modeller har hver især blevet oversat fra modeller, der oprindeligt er udviklet i rotter13,14 og tillade anvendelse af almindeligt tilgængelige transgen teknologi til at udforske molekylære mekanismer, der er forbundet med celledød efter hjerneblødning. Begge repræsenterer klart forskellige skade mekanismer fra menneskelig ICH, og begge har tydeligt forskellige udfald forventede i form af adfærdsmæssige og histologiske foranstaltninger. Således kan visse hypoteser egner sig til én model frem for den anden, men mange ideer kan kræve validering i begge modeller.

Tabel 1.. Sammenligning af karakteristika collagenase-og autologe blod injektion intracerebral blødning modeller.

<tr>
Collagenase Injektion Blood Injektion
Brugervenlighed + + + + +
Reproducerbarhed + + + +
Kontrol af Blødninger Størrelse + + + + +
Blood Refluks + + +
Simulerer menneskelig sygdom +
Enkelhed + + + +
Anvendelse i flere arter, + + + +

Protocol

Etik Erklæring: Denne protokol er blevet godkendt af Duke University Institutional Animal Care og brug Udvalg og følger alle retningslinjer for etisk brug af dyr. 1.. Forberedelse af udstyr Autoklaver de kirurgiske værktøjer forud for operationen. Desinficer stereotaktisk apparat med 70% ethanol. Tænd vandbad og holde vandtemperaturen ved 42 ° C. Opløs Type IV-S klostridial kollagenase i normalt saltvand i en koncentration på 0,075 U pr 0.4 pi…

Representative Results

Grund af forskelle i hæmatom dannelse (figur 1), er ipsilateral drejning vises umiddelbart efter vågne op til autolog blod injicerede mus og inden 2 – 4 timer efter collagenase injektion, som hæmatom ekspansion forekommer (figur 2). Fravær af ipsilateral drejning bør rejse bekymring for mangel på væsentlig skade. På det første indlæg skade dag, bør mus i begge modeller demonstrere væsentlige neurologiske underskud (Figur 3). På 24 timer efter injektion, ips…

Discussion

Trods nye prækliniske forskning og deraf følgende store kliniske forsøg for lovende lægemidler 15-18, er der ingen farmakologiske interventioner vist sig at forbedre resultatet i ICH, og pleje er stadig stort set støttende. Lister over mulige behandlinger kan genereres ved high throughput teknologier, såsom transkriptom og proteom arbejde. Mens disse teknologier fortsætter med at fremme vores viden af potentielle terapeutiske mål, frem og tilbage oversættelse af lovende mål kan bedst undersøges gen…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

This work was supported by the American Heart Association Scientist Development Grant and the Foundation for Anesthesia Education and Research (MLJ). We would like to thank Talaignair N. Venkatraman PhD for his assistance with magnetic resonance imaging.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Stereotactic frame Stoelting Co. 51603
Probe holder with corner clamp Stoelting Co. 51631
Mini grinder Power Glide Model 60100002
0.5 µl Hamilton syringe Hamilton Co. 86259 25 gauge needle
50 µl Hamilton syringe Hamilton Co 7637-01
26G Hamilton needle Hamilton Co 7804-03
Syringe pump KD Scientific Model 100
Heat therapy water pump Gaymar Industries, Inc. Model# TP650
Circulating waterbed CMS Tool & Die, Inc.
Rodent ventilator Harvard Apparatus Model 683
Isoflurane vaporizer Drager Vapor 19.1
Air flowmeter Cole Parmer Model PMR1-010295
Induction chamber Self made
Otoscope Welch Allyn 22820
intravenous catheter Becton-Dickinson 381534 20-gauge, 1.16 inch Insyte-W
Isoflurane Baxter Healthcare Corporation NDC10019-360-69
Collagenase Type IV-S Sigma C1889
Polyethylene tubing PE20 Becton-Dickinson 427406
Polyethylene tubing PE10 Becton-Dickinson 427401
30G 1 inch needle Becton-Dickinson 305128
27G 1 1/4 inch needle Becton-Dickinson 305136
Surgical scissors Miltex 21-539
Forceps Miltex 17-307
Needle holder Boboz RS-7840
Monofilament suture Ethicon 8698 Size 5-0
Indicating controller YSI 73ATD

References

  1. Asch, C. J., et al. Incidence, case fatality, and functional outcome of intracerebral haemorrhage over time, according to age, sex, and ethnic origin: a systematic review and meta-analysis. Lancet Neurology. 9, 167-176 (2010).
  2. Qureshi, A. I., Mendelow, A. D., Hanley, D. F. Intracerebral haemorrhage. Lancet. 373, 1632-1644 (2009).
  3. Participants, N. I. W. Priorities for clinical research in intracerebral hemorrhage: report from a National Institute of Neurological Disorders and Stroke workshop. Stroke. 36, (2005).
  4. Morgenstern, L. B., et al. Guidelines for the management of spontaneous intracerebral hemorrhage: a guideline for healthcare professionals from the American Heart Association/American Stroke Association. Stroke. 41, 2108-2129 (2010).
  5. James, M. L., Warner, D. S., Laskowitz, D. T. Preclinical models of intracerebral hemorrhage: a translational perspective. Neurocrit Care. 9, 139-152 (2008).
  6. Winkler, D. T., et al. Spontaneous hemorrhagic stroke in a mouse model of cerebral amyloid angiopathy. J Neurosci. 21, 1619-1627 (2001).
  7. Sinar, E. J., Mendelow, A. D., Graham, D. I., Teasdale, G. M. Experimental intracerebral hemorrhage: effects of a temporary mass lesion. J Neurosurg. 66, 568-576 (1987).
  8. Mendelow, A. D., Bullock, R., Teasdale, G. M., Graham, D. I., McCulloch, J. Intracranial haemorrhage induced at arterial pressure in the rat. Part 2: Short term changes in local cerebral blood flow measured by autoradiography. Neurol Res. 6, 189-193 (1984).
  9. Bullock, R., Mendelow, A. D., Teasdale, G. M., Graham, D. I. Intracranial haemorrhage induced at arterial pressure in the rat. Part 1: Description of technique, ICP changes and neuropathological findings. Neurol Res. 6, 184-188 (1984).
  10. Sang, Y. H., Su, H. X., Wu, W. T., So, K. F., Cheung, R. T. Elevated blood pressure aggravates intracerebral hemorrhage-induced brain injury. J Neurotrauma. 28, 2523-2534 (2011).
  11. Krafft, P. R., et al. Modeling intracerebral hemorrhage in mice: injection of autologous blood or bacterial collagenase. J Vis Exp. , (2012).
  12. Sansing, L. H., et al. Autologous blood injection to model spontaneous intracerebral hemorrhage in mice. J Vis Exp. , (2011).
  13. Rosenberg, G. A., Mun-Bryce, S., Wesley, M., Kornfeld, M. Collagenase-induced intracerebral hemorrhage in rats. Stroke. 21, 801-807 (1990).
  14. Nath, F. P., Jenkins, A., Mendelow, A. D., Graham, D. I., Teasdale, G. M. Early hemodynamic changes in experimental intracerebral hemorrhage. J Neurosurg. 65, 697-703 (1986).
  15. Anderson, C. S., et al. Rapid blood-pressure lowering in patients with acute intracerebral hemorrhage. N Engl J Med. 368, 2355-2365 (2013).
  16. Clark, W., Gunion-Rinker, L., Lessov, N., Hazel, K. Citicoline treatment for experimental intracerebral hemorrhage in mice. Stroke. 29, 2136-2140 (1998).
  17. Mayer, S. A., et al. Efficacy and safety of recombinant activated factor VII for acute intracerebral hemorrhage. N Engl J Med. 358, 2127-2137 (2008).
  18. Mendelow, A. D., et al. Early surgery versus initial conservative treatment in patients with spontaneous supratentorial lobar intracerebral haematomas (STICH II): a randomised trial. Lancet. , (2013).
  19. James, M. L., Blessing, R., Bennett, E., Laskowitz, D. T. Apolipoprotein E modifies neurological outcome by affecting cerebral edema but not hematoma size after intracerebral hemorrhage in humans. J Stroke Cerebrovasc Dis. 18, 144-149 (2009).
  20. James, M. L., Blessing, R., Phillips-Bute, B. G., Bennett, E., Laskowitz, D. T. S100B and brain natriuretic peptide predict functional neurological outcome after intracerebral haemorrhage. Biomarkers. 14, 388-394 (2009).
  21. James, M. L., Sullivan, P. M., Lascola, C. D., Vitek, M. P., Laskowitz, D. T. Pharmacogenomic effects of apolipoprotein e on intracerebral hemorrhage. Stroke. 40, 632-639 (2009).
  22. James, M. L., et al. Brain natriuretic peptide improves long-term functional recovery after acute CNS injury in mice. J Neurotrauma. 27, 217-228 (2010).
  23. Indraswari, F., et al. Statins improve outcome in murine models of intracranial hemorrhage and traumatic brain injury: a translational approach. J Neurotrauma. 29, 1388-1400 (2012).
  24. Laskowitz, D. T., et al. The apoE-mimetic peptide, COG1410, improves functional recovery in a murine model of intracerebral hemorrhage. Neurocrit Care. 16, 316-326 (2012).
  25. Lei, B., et al. Interaction between sex and apolipoprotein E genetic background in a murine model of intracerebral hemorrhage. Translational Stroke Research. 3, (2012).
  26. Lekic, T., et al. Evaluation of the hematoma consequences, neurobehavioral profiles, and histopathology in a rat model of pontine hemorrhage. J Neurosurg. 118, 465-477 (2013).
  27. Nakamura, T., et al. Intracerebral hemorrhage in mice: model characterization and application for genetically modified mice. J Cereb Blood Flow Metab. 24, 487-494 (2004).
  28. Yang, D., et al. Statins Protect the Blood Brain Barrier Acutely after Experimental Intracerebral Hemorrhage. J Behav Brain Sci. 3, 100-106 (2013).
  29. Rynkowski, M. A., et al. A mouse model of intracerebral hemorrhage using autologous blood infusion. Nature Protocols. 3, 122-128 (2008).
  30. Wang, J., Fields, J., Dore, S. The development of an improved preclinical mouse model of intracerebral hemorrhage using double infusion of autologous whole blood. Brain Research. 1222, 214-221 (2008).
  31. MacLellan, C. L., et al. Intracerebral hemorrhage models in rat: comparing collagenase to blood infusion. J Cereb Blood Flow Metab. 28, 516-525 (2008).

Play Video

Cite This Article
Lei, B., Sheng, H., Wang, H., Lascola, C. D., Warner, D. S., Laskowitz, D. T., James, M. L. Intrastriatal Injection of Autologous Blood or Clostridial Collagenase as Murine Models of Intracerebral Hemorrhage. J. Vis. Exp. (89), e51439, doi:10.3791/51439 (2014).

View Video