Summary

Fremstilling af koncentreret, Lipid-baserede Oxygen Microbubble Emulsioner af High Shear Homogenisering og Serial Koncentration

Published: May 26, 2014
doi:

Summary

Vi beskriver metoder til fremstilling af store mængder lipid-baserede ilt mikrobobler (LOMs) beregnet til intravenøs ilttilførsel ved hjælp af high-shear homogenisering og serienummer koncentration.

Abstract

Gasfyldte mikrobobler er udviklet som ultralyd kontrast og drug delivery agenter. Mikrobobler kan fremstilles ved behandling af overfladeaktive midler ved hjælp af sonikering, mekanisk omrøring, mikrofluide anordninger eller homogenisering. For nylig har lipid-baserede ilt mikrobobler (LOMs) er designet til at levere ilt intravenøst ​​i løbet af ulykkestilfælde, vende livstruende hypoxæmi og forhindre efterfølgende orgel skade, hjertestop og død. Vi præsenterer metoder til opskaleret produktion af stærkt iltet mikrobobler ved hjælp af et lukket kredsløb high-shear homogenisator. Processen kan producere 2 L af koncentrerede LOMs (90 volumen%) i 90 minutter. Resulterende bobler har en gennemsnitlig diameter på ~ 2 um og en rheologisk profil i overensstemmelse med den af ​​blod, når den fortyndes til 60 volumen%. Denne teknik producerer LOMs i høj kapacitet og med høj ilt renhed, hvilket tyder på, at denne teknik kan være nyttige for translationelle forskningslaboratorier.

Introduction

Mikrobobler bestående af protein, polymer og lipid skaller er blevet udviklet som vektorer for drug delivery, genterapi, og ultralyd-kontrastmidler 1-5. Fordi disse terapeutiske anvendelser kræver intravaskulære mikrobobler vedholdenhed er sådanne mikrobobler almindeligvis fyldt med inerte, høje molekylvægt gasser såsom perfluorcarboner 6, der har lav opløselighed i blod og stabilisere boblen 3,4.

For nylig har lipid-baserede ilt mikrobobler (LOMs) er designet til at levere terapeutiske doser af ilt, der kan bevare slutorganet ilttilførsel og forhindre hæmodynamisk ustabilitet i perioder med luftvejsobstruktion eller hypoxæmi 7. Emulsioner designet til intravenøs gas levering kræver forskellige design funktioner end dem, der anvendes til ultralyd kontraststoffer eller målrettede drug delivery. Først, fordi kroppen forbruger store mængder ilt gas (~ 200 ml / min), LOMs skal produceres oginjiceret på en stor skala. Dette kræver, at fremstillingsprocessen være effektiv. For det andet bør fremstillingsprocessen være lukket kredsløb for at undgå kontaminering nitrogen gennem eksponering LOMs (som skal fyldes med 100% oxygen) til den omgivende luft. For det tredje, fordi formålet med LOMs er intravenøs gas levering, gas fraktion af LOMs skal maksimeres, anerkender de begrænsninger, som emulsion viskositet 7. Endelig, som med enhver intravenøs injektion, præcis kontrol over partikelstørrelsesfordeling er afgørende for at undgå mikrovaskulære obstruktion 8.

Der er flere etablerede metoder til mikrobobler fremstillingen. Lydbehandling udnytter høj intensitet, lavfrekvente ultralyd påføres luft-væske-grænsefladen af en emulsion, der omfatter et overfladeaktivt middel, såsom et amfipatisk phospholipid, i nærvær af en gas headspace at fremstille mikrobobler 7,9. Denne proces kan styres ved at variere ultralyd frekvens, effekt og puls varighed, og den resulterende størrelse fordelingen kan skræddersyes til at producere mikrobobler af en bestemt størrelse distribution, selvom lydbehandling er sjældent anvendes til fremstilling af klinisk anvendte mikrobobler. Sammenlægning er intens mekanisk omrøring af et overfladeaktivt middel og gas i et lukket system, som også er vanskelig at skalere op til at rumme store mængder 2. Droplet-baserede MicroFluidics giver præcis styring af mikroboblestørrelse fordeling 10-13. Selvom traditionelt svært at skalere op, multi-kanal, high-speed microfluidics er blevet beskrevet som øger mikrobobler produktionseffektivitet 13. Mikrobobler fremstillet ved hjælp af en af disse metoder kan kræve post-fremstilling størrelse reduktion processer, såsom centrifugal fraktionering 14,15 og mikrobobler flotation 16,17.

En anden fast metode til fremstilling af meget stabile mikrobobler er shear homogenizning 6, som kan resultere i en stabiliserende sekskantet phospholipid mønster på mikroboble overflade 18. Med udgangspunkt i dette koncept beskriver vi inkorporeringen af en in-line høj forskydning homogeniseringsapparat at skabe selvsamlende LOMs 19. I denne proces udnytter homogenisatoren hurtigt roterende knive tæt på dobbelt finmasket emulsor skærme, skabe høj mekanisk og hydraulisk forskydning til oprettelse af mikrobobler. Serial koncentration af fedtemulsionen via dette system giver en mere koncentreret gasfraktion, som kan yderligere koncentreres ved centrifugering.

Protocol

1.. System Set-up Systemet består af en bedrift og koncentrere tanken (HCT), forsynet med en enkelt fase mixer, en in-line homogenisator med høj forskydning, en rulle-pumpe til at flytte væske mellem HCT og homogenisatoren, og en varmeveksler (figur 1). Placer en steriliseret, bred åbning 4 L samling glasbeholder udstyret med 2 basishavne og 3 sideporte beneath enkelt fase mixer. Sænk mikserhovedet til mundingen af ​​beholderen og sikre en gastæt monteri…

Representative Results

High shear homogenisering muliggør en effektiv (dvs. inden for en eftermiddag) produktion af tilstrækkelige LOMs for en dyr undersøgelse og ikke kræver teknisk ekspertise. Når dygtige, kan op til 2 L koncentrerede LOMs blive fremstillet i 90 min. Mikrobobler størrelse og morfologi blev vurderet ved lysmikroskopi og lys dæmpning. Når en 10 pi prøve af LOMs blev visualiseret blev sfæriske LOMs bemærkes, såvel som en relativ mangel på lipid debris (figur 3A).</stro…

Discussion

De vigtigste skridt til at skabe koncentrerede, stærkt iltet LOMs omfatter: 1) at sikre, at headspace i HCT forbliver fuldt iltet; 2) at sikre, at renheden af ​​lipid hjælpestofferne er optimal (herunder opbevaring og brug af GMP produkter); 3) at sikre, at de pulveriserede lipider blandes fuldstændigt med den vandige fase forud for priming af systemet; og 4) meget opmærksom på stigningen i fraktionen gas i HCT at sikre, at volumen fraktion af gas ikke overstiger 70%.

Fremgangsmåde…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Finansiering: US Army Medical Research & Materiel Kommando (USAMRMC) og forvaltes af Telemedicin & Advanced Technology Research Center. Shunxi Ji bidrog ændringen af ​​sprøjter, som beskrevet her.

Materials

Name of Material/ Equipment Company Catalog Number Comments/Description
1,2-distearoyl-sn-glycero-3-phosphocholine (DSPC) Avanti Polar Lipids 770365 Alternate product: non-GMP from NOF America (Coatsome MC-8080)
Cholesterol Sigma Aldrich C75209
Plasma-Lyte A VWR 80089-818 Alternatively can use NaCl
Glass collection vessel Specialty Glass, Inc. Custom Contact: Pam Zurbrick – 281-595-2210
Gas composition (oxygen) monitor Precision Medical PM5900L
Sarns 8000 roller pump Calicut Medical 16407 Part of a modular perfusion system
BIOtherm Heat Exchanger Medtronic ECMOtherm-II
Verso laboratory in-line mixer Silverson Machines, Inc TH-IL-102-VERSO Use multistage workheads and front-end extension with T piece
T-piece for Silverson Verso inlet port Process Innovations Custom Contact: Brian Leavitt – 508-423-2266
L5M-A laboratory mixer Silverson Machines, Inc NC0136483 Use mesh emulsor screen (fine)
Rochester-Ochsner toothed forceps Fisher Scientific 13-812-18
140 mL syringe Kendall Healthcare Monoject  8881114030 Ensure there is a luer lock.
IX71 Inverted light microscope Olympus IX71
Retiga-2000R microscope camera QImaging RET-2000R-F-M-12
Accusizer 780A Autodilution PSS-NICOMP Particle Sizing Systems Out of production

References

  1. Lentacker, I., De Smedt, S. C., Sanders, N. N. Drug loaded microbubble design for ultrasound triggered delivery. Soft Matter. 5 (11), 2161-2170 (2009).
  2. Ren, J. L., et al. A Novel Ultrasound Microbubble Carrying Gene and Tat Peptide: Preparation and Characterization. Academic Radiology. 16 (12), 1457-1465 (2009).
  3. Tinkov, S., et al. Microbubbles as Ultrasound Triggered Drug Carriers. Journal of Pharmaceutical Sciences. 98 (6), 1935-1961 (2009).
  4. Hernot, S., Klibanov, A. L. Microbubbles in ultrasound-triggered drug and gene delivery. Advanced Drug Delivery Reviews. 60 (10), 1153-1166 (2008).
  5. Lanza, G. M., et al. A novel site-targeted ultrasonic contrast agent with broad biomedical application. Circulation. 94 (12), 3334-3340 (1996).
  6. Cavalli, R., et al. Preparation and characterization of dextran nanobubbles for oxygen delivery. International Journal of Pharmaceutics. 381 (2), 160-165 (2009).
  7. Kheir, J. N., et al. Oxygen Gas-Filled Microparticles Provide Intravenous Oxygen Delivery. Science Translational Medicine. 4 (140), (2012).
  8. Lindner, J. R., et al. Microvascular rheology of definity microbubbles after intra-arterial and intravenous administration. Journal of the American Society of Echocardiography. 15 (5), 396-403 (2002).
  9. Zhao, Y. Z., et al. Preparation, characterization and in vivo observation of phospholipid-based gas-filled microbubbles containing hirudin. Ultrasound in Medicine and Biology. 31 (9), 1237-1243 (2005).
  10. Seo, M., et al. Microfluidic Assembly of Monodisperse, Nanoparticle-Incorporated Perfluorocarbon Microbubbles for Medical Imaging and Therapy. Langmuir. 26 (17), 13855-13860 (2010).
  11. Wan, J. D., Stone, H. A. Coated Gas Bubbles for the Continuous Synthesis of Hollow Inorganic Particles. Langmuir. 28 (1), 37-41 (2012).
  12. Duncanson, W. J., et al. Monodisperse Gas-Filled Microparticles from Reactions in Double Emulsions. Langmuir. 28 (17), 6742-6745 (2012).
  13. Kendall, M. R., et al. Scaled-Up Production of Monodisperse, Dual Layer Microbubbles Using Multi-Array Microfluidic Module for Medical Imaging and Drug Delivery. Bubble Science Engineering and Technology. 4 (1), 12-20 (2012).
  14. Szijjarto, C., et al. Effects of Perfluorocarbon Gases on the Size and Stability Characteristics of Phospholipid-Coated Microbubbles: Osmotic Effect versus Interfacial Film Stabilization. Langmuir. 28 (2), 1182-1189 (2012).
  15. Rossi, S., Waton, G., Krafft, M. P. Phospholipid-Coated Gas Bubble Engineering: Key Parameters for Size and Stability Control, as Determined by an Acoustical Method. Langmuir. 26 (3), 1649-1655 (2010).
  16. Swanson, E. J., et al. Phospholipid-Stabilized Microbubble Foam for Injectable Oxygen Delivery. Langmuir. 26 (20), 15726-15729 (2010).
  17. Kvåle, S., et al. Size fractionation of gas-filled microspheres by flotation. Separations Technology. 6 (4), 219-226 (1996).
  18. Dressaire, E., et al. Interfacial polygonal nanopatterning of stable microbubbles. Science. 320 (5880), 1198-1201 (2008).
  19. Kheir, J. N., et al. Bulk Manufacture of Concentrated Oxygen Gas-Filled Microparticles for Intravenous Oxygen Delivery. Advanced Healthcare Materials. , (2013).
check_url/51467?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Thomson, L. M., Polizzotti, B. D., McGowan, F. X., Kheir, J. N. Manufacture of Concentrated, Lipid-based Oxygen Microbubble Emulsions by High Shear Homogenization and Serial Concentration. J. Vis. Exp. (87), e51467, doi:10.3791/51467 (2014).

View Video