Summary

Rapid isolatie en zuivering van Mitochondriën voor transplantatie Door Tissue Dissociatie en differentiële Filtratie

Published: September 06, 2014
doi:

Summary

Werkwijze voor snelle isolatie van mitochondria uit zoogdierweefsel biopsies beschreven. Rat lever of skeletspieren voorbereidingen werden gehomogeniseerd met een commerciële weefsel Dissociator en mitochondriën werden door differentiële filtratie geïsoleerd door nylon mesh filters. Mitochondriale isolatie is <30 min ten opzichte van 60-100 min met behulp van alternatieve methoden.

Abstract

Eerder beschreven mitochondriale isolatiemethoden middels differentiële centrifugatie en / of Ficoll gradiënt centrifugatie vereisen 60 tot 100 minuten in beslag. We beschrijven een werkwijze voor de snelle isolatie van mitochondria van zoogdieren biopten met een commercieel tissue Dissociator en differentiële filtratie. In dit protocol wordt manueel homogenisering vervangen door gestandaardiseerde homogenisering cyclus het weefsel Dissociator's. Dit zorgt voor een uniforme en consistente homogenisering van weefsel dat niet gemakkelijk wordt bereikt met handmatige homogenisering. Na weefsel dissociatie, wordt het homogenaat gefilterd door nylon mesh filters, die repetitieve centrifugeren stappen te elimineren. Hierdoor kan mitochondriale isolatie worden uitgevoerd in minder dan 30 minuten. Deze isolatie protocol levert ongeveer 2 x 10 10 levensvatbare en ademhaling bevoegde mitochondria van 0,18 ± 0,04 g (nat gewicht) weefselmonster.

Introduction

Mitochondriën bestaan ​​in elke cel in het lichaam behalve rode bloedcellen en zijn betrokken bij een groot aantal belangrijke cellulaire en metabole processen 1-4. Door deze vele functies kunnen mitochondriale schade nadelige gevolgen 3 hebben. Om mitochondriale functie en dysfunctie verschillende mitochondriale isolatiemethoden onderzoeken zijn beschreven. De vroegste gepubliceerde rekeningen van mitochondriale isolatie datum om de jaren 1940 5-8. De eerste gedocumenteerde poging aangetoond mitochondriale isolatie door malen leverweefsel in een mortier gevolgd door centrifugatie in een zoutoplossing bij lage snelheid 5,8. Later, andere groepen uitgebreid op de oorspronkelijke procedure en gedemonstreerd weefsel fractionering op basis van differentiële centrifugatie 6-8. Deze vroege methoden vormde de basis van de huidige technieken die vaak nemen homogenisering, en / of differentieel centrifugeren 9-15. Het aantal homogenizatiop en centrifugatiestappen varieert tussen protocollen. Deze repetitieve stappen verhogen de tijd voor mitochondriële isolatie en uiteindelijk levensvatbaarheid verminderen. Daarnaast kunnen handmatige homogenisering mitochondriale schade en inconsistente resultaten veroorzaken als ze niet goed gecontroleerd 10,16.

Onlangs, gebruikten we homogenisering en differentiële centrifugatie om mitochondriën voor transplantatie te isoleren in hartspierweefsel 17,18. Deze langdurige isolatie procedure vereist ongeveer 90 min en de klinische toepasbaarheid van deze methode was dus beperkt. Met het oog op acute therapeutisch gebruik in klinische en chirurgische behandeling hebben we een snelle mitochondriale isolatieprocedure die in minder dan 30 min kan worden uitgevoerd ontwikkeld.

De belangrijkste voordelen van dit protocol is dat gestandaardiseerde weefsel dissociatie zorgt voor een uniforme en consistente homogenisering van weefsel dat niet gemakkelijk wordt bereikt met handmatige homogenisering. In addition, het gebruik van differentiële filtratie in plaats van differentiële centrifugatie elimineert tijdrovend en repetitief centrifugatiestappen waardoor meer snelle isolatie van zeer gezuiverd, levensvatbare en ademhaling bevoegde mitochondria.

Het vermogen om levensvatbare en ademhaling bevoegde mitochondria isoleren in minder dan 30 minuten maakt klinische toepasbaarheid. Deze isolatie protocol heeft potentieel voor gebruik in een coronaire bypass operatie chirurgie (CABG) en andere therapeutische procedures.

Protocol

Voorbereiding Bereid 1 M K-HEPES Stock Solution (pas pH op 7,2 met KOH). Bereid 0,5 M K-EGTA Stock Solution (pas pH op 8,0 met KOH). Bereid 1 M KH 2 PO 4 Stock Solution. Bereid 1 M MgCl2 voorraadoplossing. Bereid Homogenisatie Buffer (pH 7,2) 300 mM sucrose, 10 mM K-HEPES en 1 mM K-EGTA. Bewaren bij 4 ° C. Bereid Ademhaling buffer 250 mM sucrose, 2 mM KH 2PO 4, 10 mM MgCl2, 20 mM K-HEPES Buffer (pH 7,2) e…

Representative Results

Een figuur waarin de procedurele stappen in de isolatie van mitochondriën met weefsel dissociatie en differentiële filtratie wordt getoond in figuur 1. Totale procedure is minder dan 30 minuten. Weefsel monsters werden verkregen met een 6 mm punch biopsie. Tissue gewicht bedroeg 0,18 ± 0,04 g (nat gewicht). Het aantal mitochondria geïsoleerd zoals bepaald door deeltjesgrootte telling bedroeg 2,4 x 10 10 ± 0,1 x 10 10 mitochondria voor skeletspieren…

Discussion

Met succes isoleren mitochondria met dit protocol is het essentieel om alle oplossingen en weefselmonsters op ijs houden mitochondriale levensvatbaarheid behouden. Zelfs wanneer op ijs wordt geïsoleerde mitochondria een afname van functionele activiteit vertonen in de tijd 19. We raden aan dat alle oplossingen en aanvullingen vooraf worden voorbereid. We vooraf wegen en te bewaren Subtilisine A in 4 mg aliquots in 1,5 ml microfuge buizen en opgeslagen bij -20 ° C. Evenzo BSA is pre-gewogen en opgeslagen in …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Deze studie werd ondersteund door de National Heart, Lung, and Blood Institute Grant HL 103542, en de BCH Anesthesia Research Foundation Distinguished Trailblazer Award voor CAP.

Materials

Sucrose Sigma Aldrich 84100
HEPES Sigma Aldrich H4034
EGTA Sigma Aldrich E4378
Substilsin A Sigma Aldrich P5380
BSA Sigma Aldrich A7906
KH2PO4 Sigma Aldrich P5379
MgCl2 Sigma Aldrich M8266
NaCl Sigma Aldrich S6191
KCl Fisher Scientific P2173
Na2HPO4 Fisher Scientific S374
ATPlite Luminescence Assay System,
1000 Assay Kit
Perkin Elmer 6016941
Equipment
50 mL Conical Tubes BD 352098
40 μm Nylon Filters BD  352340
GentleMACS C tube Miltenyl Biotech 120-005-331
1.5 mL Eppendorf tube Fisher Scientific 05-408-129
6 mm biopsy punch Miltex 33-36
10 μm Pluristrainer Pluriselect 43-500-10-03
Eppendorf Centrifuge 5415C Marshall Scientific EP-5415C 
GentleMACS Dissociator  Miltenyl Biotech 130-093-235
96-well plates, tissue culture treated VWR 82050-732
Rotomax 120 orbital shaker Heidolph 544-41200-00
Synergy H4 Hybrid Multi-Mode
 Microplate Reader
BioTek
Multisizer 4 Coulter Counter Beckman Coulter A63076
Oxytherm System Hansatech Instruments
Hemacytometer Fisher Scientific 267110

References

  1. van Loo, G., Saelens, X., van Gurp, M., MacFarlane, M., Martin, S. J., Vandenabeele, P. The role of mitochondrial factors in apoptosis: a Russian roulette with more than one bullet. Cell Death Differ. 9 (10), 1031-1042 (2002).
  2. Szabadkai, G., Duchen, M. R. Mitochondria: the hub of cellular Ca2+ signaling. Physiology (Bethesda). 23, 84-94 (2008).
  3. Chan, D. C. Mitochondria: Dynamic Organelles in Disease, Aging, and Development. Cell. 125 (7), 1241-1252 (2006).
  4. Picard, M., et al. Mitochondrial structure and function are disrupted by standard Isolation methods. PLoS ONE. 6 (3), e18317 (2011).
  5. Bensley, R. R., Hoerr, N. Studies on cell structure by freeze-drying method; preparation and properties of mitochondria. Anat Rec. 60, 449-455 (1934).
  6. Claude, A. Fractionation of mammalian liver cells by differential centrifugation II. Experimental procedures and results. J Exp Med. 84 (1), 61-89 (1946).
  7. Hogeboom, H., Schneider, W. C., Palade, G. E. Cytochemical studies of mammalian tissues; isolation of intact mitochondria from rat liver; some biochemical properties of mitochondria and submicroscopic particulate material. J Biol Chem. 172 (2), 619-635 (1948).
  8. Ernster, L., Schtaz, G. Mitochondria: a historical Review. J Cell Biol. 91 (3 Pt 2), 227s-255s (1981).
  9. Pallotti, F., Lenaz, G. Isolation and subfractionation of mitochondria from animal cells and tissue culture lines. Methods Cell Biol. 80, 3-44 (2007).
  10. Schmitt, S., et al. A semi-automated method for isolating functionally intact mitochondria from cultured cells and tissue biopsies. Anal Biochem. 443 (1), 66-74 (2013).
  11. Fernández-Vizarra, E., Ferrín, G., Pérez-Martos, A., Fernández-Silva, P., Zeviani, M., Enríquez, J. A. Isolation of mitochondria for biogenetical studies: An update. Mitochondrion. 10 (3), 253-262 (2010).
  12. Graham, J. M. Chapter 3, Unit 3.3, Isolation of mitochondria from tissues and cells by differential centrifugation. Curr Protoc Cell Biol. , (2001).
  13. Frezza, C., Cipolat, S., Scorrano, L. Organelle isolation: functional mitochondria from mouse liver, muscle and cultured fibroblasts. Nat Protoc. 2 (2), 287-295 (2007).
  14. Wieckowski, M. R., Giorgi, C., Lebiedzinska, M., Duszynski, J., Pinton, P. Isolation of mitochondria-associated membranes and mitochondria from animal tissues and cells. Nat Protoc. 4 (11), 1582-1590 (2009).
  15. Gostimskaya, I., Galkin, A. Preparation of highly coupled rat heart mitochondria. J Vis Exp. (43), (2010).
  16. Gross, V. S., et al. Isolation of functional mitochondria from rat kidney and skeletal muscle without manual homogenization. Anal Biochem. 418 (2), 213-223 (2011).
  17. Masuzawa, A., et al. Transplantation of autologously derived mitochondria protects the heart from ischemia-reperfusion injury. American J Physiol Heart and Circ Physiol. 304 (7), (2013).
  18. McCully, J. D., et al. Injection of isolated mitochondria during early reperfusion for cardioprotection. American J Physiol Heart and Circ Physiol. 296 (1), 94-105 (2009).
  19. Olson, M. S., Von Korff, R. W. Changes in endogenous substrates of isolated rabbit heart mitochondria during storage. J Biol Chem. 242 (2), 325-332 (1967).
  20. Diepart, C., et al. Comparison of methods for measuring oxygen consumption in tumor cells in vitro. Anal Biochem. 396 (2), 250-256 (2010).
  21. Lanza, I. R., Nair, K. S. Functional assessment of isolated mitochondria in vitro. Methods Enzymol. 457, 349-372 (2009).
check_url/51682?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Preble, J. M., Pacak, C. A., Kondo, H., MacKay, A. A., Cowan, D. B., McCully, J. D. Rapid Isolation And Purification Of Mitochondria For Transplantation By Tissue Dissociation And Differential Filtration. J. Vis. Exp. (91), e51682, doi:10.3791/51682 (2014).

View Video