Summary

Rapid isolering og rensing av Mitokondrier for transplantasjon Av Tissue Dissosiasjon og differensial Filtration

Published: September 06, 2014
doi:

Summary

En fremgangsmåte for hurtig isolering av mitokondrier fra pattedyr vevsbiopsier er beskrevet. Rottelever, eller skjelettmuskelpreparater ble homogenisert med en kommersiell vev dissociator og mitokondrier ble isolert ved filtrering gjennom nylon differensial mesh filter. Mitokondrie isolasjon tid er <30 min sammenlignet med 60 – 100 min ved hjelp av alternative metoder.

Abstract

Tidligere beskrevne mitokondrielle isoleringsmetoder ved hjelp av differensialsentrifugering og / eller Ficoll gradientsentrifugering krever 60 til 100 minutter å fullføre. Vi beskriver en fremgangsmåte for rask isolering av mitokondrier fra pattedyr biopsier ved hjelp av en kommersiell vev dissociator og differensial filtrering. I denne protokollen, er manuell homogenisering erstattet med vevet dissociator standardiserte homogenisering syklus. Dette sørger for en enhetlig og konsistent homogenisering av vevet som ikke er lett oppnås med manuell homogenisering. Etter vev dissosiasjon, blir homogenat ble filtrert gjennom nylon mesh filter, som fjerner gjentatt sentrifugering trinn. Som et resultat, kan mitokondriell isolering utføres i mindre enn 30 min. Denne isolasjonen protokollen gir ca 2 x 10 10 levedyktige og respirasjon kompetente mitokondrier fra 0,18 ± 0,04 g (våtvekt) vevsprøve.

Introduction

Mitokondrier eksistere i hver eneste celle i kroppen, bortsett fra røde blodceller og er involvert i et stort antall viktige cellulære og metabolske prosesser 1-4. På grunn av disse mange funksjoner, kan mitokondrieskade ha skadelige effekter tre. For å undersøke mitokondriefunksjon og dysfunksjon flere mitokondrielle isoleringsmetoder har blitt beskrevet. De tidligste publiserte kontoer mitokondriell isolasjon dato til 1940-tallet 5-8. Den første dokument forsøk demonstrerte mitokondriell isolert ved maling av levervev i en morter, etterfulgt av sentrifugering i en saltoppløsning ved lav hastighet 5,8. Senere, andre grupper utvidet på den opprinnelige prosedyren og demonstrert vev fraksjonering basert på differensialsentrifuge 6-8. Disse tidlige metoder dannet basis av dagens teknikker, som benytter ofte homogenisering, og / eller differensialsentrifuge 9-15. Antallet homogenizatipå og sentrifuge trinn varierer mellom protokoller. Disse repeterende trinn øke tiden for mitokondriell isolasjon og til slutt redusere levedyktighet. I tillegg kan manuell homogenisering forårsake mitokondriell skade og inkonsistente resultater hvis ikke skikkelig kontrollert 10,16.

Nylig brukte vi homogenisering og differensialsentrifugering for å isolere mitokondrier for transplantasjon til hjerteinfarkt vev 17,18. Denne omstendelige isoleringsprosedyre kreves omtrent 90 min, og den kliniske anvendbarheten av denne metoden var derfor begrenset. For å tillate for akutt terapeutisk bruk i kliniske og kirurgiske behandlingen har vi utviklet en hurtig mitokondriell isolasjon prosedyre som kan utføres i mindre enn 30 min.

De store fordelene med denne protokollen er at standardiserte vev dissosiasjon gir jevn og konsistent homogenisering av vev som ikke er enkelt å oppnå med manuell homogenisering. I addition, bruk av differensial filtrering i stedet for differensialsentrifugering eliminerer tidkrevende og gjentatt sentrifugering fremgangsmåte som muliggjør hurtig isolering av mer høyrensede, levedyktige og respirasjon kompetente mitokondrier.

Evnen til å isolere levedyktige og respirasjon kompetente mitokondrier på mindre enn 30 min muliggjør klinisk anvendbarhet. Denne isolasjonen protokollen har potensial for bruk i koronarkirurgi (CABG) og andre terapeutiske prosedyrer.

Protocol

Forberedelse Forbered en M K-HEPES Stock Solution (justere pH til 7,2 med KOH). Forbered 0,5 M K-EGTA Stock Solution (justere pH til 8,0 med KOH). Forbered en M KH 2 PO 4 Stock Solution. Forbered en M MgCl2 Stock Solution. Forbered homogenisering buffer (pH 7,2) 300 mM sukrose, 10 mM K-HEPES og 1 mM K-EGTA. Oppbevar ved 4 ° C. Forbered Respiration buffer 250 mM sukrose, 2 mM KH PO 2 4, 10 mM MgCl 2, 20 mM…

Representative Results

En figur som beskriver de prosedyremessige trinn i isoleringen av mitokondria ved anvendelse av vev dissosiasjon og differensial filtrering er vist i figur 1. Totalt prosesstiden er mindre enn 30 min. Vevsprøver ble oppnådd ved bruk av en 6 mm hull biopsi. Tissue vekt var 0,18 ± 0,04 g (våt vekt). Antallet mitokondriene isolert som bestemt ved telling partikkelstørrelse var 2,4 x 10 10 ± 0,1 x 10 10 mitokondriene til skjelettmuskel og 2,75 x …

Discussion

Å kunne isolere mitokondrier ved hjelp av denne protokollen er det viktig å holde alle løsninger og vevsprøver på is for å bevare mitokondrie levedyktighet. Selv når det holdes på is, vil det isolerte mitokondrier utviser en reduksjon i funksjonell aktivitet over tid 19. Vi anbefaler at alle løsninger og tillegg være forhånds forberedt. Vi pre-veie og lagre subtilisin A i 4 mg porsjoner i 1,5 ml mikrofugerør og lagre dem ved -20 ° C. Tilsvar BSA er pre-veid og lagret i 20 mg aliquoter i 1,5 ml mi…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Denne studien ble støttet av nasjonale hjerte, lunge og blod Institute Grant HL 103 542, og The BCH Anesthesia Research Foundation Distinguished Trailblazer Award til CAP.

Materials

Sucrose Sigma Aldrich 84100
HEPES Sigma Aldrich H4034
EGTA Sigma Aldrich E4378
Substilsin A Sigma Aldrich P5380
BSA Sigma Aldrich A7906
KH2PO4 Sigma Aldrich P5379
MgCl2 Sigma Aldrich M8266
NaCl Sigma Aldrich S6191
KCl Fisher Scientific P2173
Na2HPO4 Fisher Scientific S374
ATPlite Luminescence Assay System,
1000 Assay Kit
Perkin Elmer 6016941
Equipment
50 mL Conical Tubes BD 352098
40 μm Nylon Filters BD  352340
GentleMACS C tube Miltenyl Biotech 120-005-331
1.5 mL Eppendorf tube Fisher Scientific 05-408-129
6 mm biopsy punch Miltex 33-36
10 μm Pluristrainer Pluriselect 43-500-10-03
Eppendorf Centrifuge 5415C Marshall Scientific EP-5415C 
GentleMACS Dissociator  Miltenyl Biotech 130-093-235
96-well plates, tissue culture treated VWR 82050-732
Rotomax 120 orbital shaker Heidolph 544-41200-00
Synergy H4 Hybrid Multi-Mode
 Microplate Reader
BioTek
Multisizer 4 Coulter Counter Beckman Coulter A63076
Oxytherm System Hansatech Instruments
Hemacytometer Fisher Scientific 267110

References

  1. van Loo, G., Saelens, X., van Gurp, M., MacFarlane, M., Martin, S. J., Vandenabeele, P. The role of mitochondrial factors in apoptosis: a Russian roulette with more than one bullet. Cell Death Differ. 9 (10), 1031-1042 (2002).
  2. Szabadkai, G., Duchen, M. R. Mitochondria: the hub of cellular Ca2+ signaling. Physiology (Bethesda). 23, 84-94 (2008).
  3. Chan, D. C. Mitochondria: Dynamic Organelles in Disease, Aging, and Development. Cell. 125 (7), 1241-1252 (2006).
  4. Picard, M., et al. Mitochondrial structure and function are disrupted by standard Isolation methods. PLoS ONE. 6 (3), e18317 (2011).
  5. Bensley, R. R., Hoerr, N. Studies on cell structure by freeze-drying method; preparation and properties of mitochondria. Anat Rec. 60, 449-455 (1934).
  6. Claude, A. Fractionation of mammalian liver cells by differential centrifugation II. Experimental procedures and results. J Exp Med. 84 (1), 61-89 (1946).
  7. Hogeboom, H., Schneider, W. C., Palade, G. E. Cytochemical studies of mammalian tissues; isolation of intact mitochondria from rat liver; some biochemical properties of mitochondria and submicroscopic particulate material. J Biol Chem. 172 (2), 619-635 (1948).
  8. Ernster, L., Schtaz, G. Mitochondria: a historical Review. J Cell Biol. 91 (3 Pt 2), 227s-255s (1981).
  9. Pallotti, F., Lenaz, G. Isolation and subfractionation of mitochondria from animal cells and tissue culture lines. Methods Cell Biol. 80, 3-44 (2007).
  10. Schmitt, S., et al. A semi-automated method for isolating functionally intact mitochondria from cultured cells and tissue biopsies. Anal Biochem. 443 (1), 66-74 (2013).
  11. Fernández-Vizarra, E., Ferrín, G., Pérez-Martos, A., Fernández-Silva, P., Zeviani, M., Enríquez, J. A. Isolation of mitochondria for biogenetical studies: An update. Mitochondrion. 10 (3), 253-262 (2010).
  12. Graham, J. M. Chapter 3, Unit 3.3, Isolation of mitochondria from tissues and cells by differential centrifugation. Curr Protoc Cell Biol. , (2001).
  13. Frezza, C., Cipolat, S., Scorrano, L. Organelle isolation: functional mitochondria from mouse liver, muscle and cultured fibroblasts. Nat Protoc. 2 (2), 287-295 (2007).
  14. Wieckowski, M. R., Giorgi, C., Lebiedzinska, M., Duszynski, J., Pinton, P. Isolation of mitochondria-associated membranes and mitochondria from animal tissues and cells. Nat Protoc. 4 (11), 1582-1590 (2009).
  15. Gostimskaya, I., Galkin, A. Preparation of highly coupled rat heart mitochondria. J Vis Exp. (43), (2010).
  16. Gross, V. S., et al. Isolation of functional mitochondria from rat kidney and skeletal muscle without manual homogenization. Anal Biochem. 418 (2), 213-223 (2011).
  17. Masuzawa, A., et al. Transplantation of autologously derived mitochondria protects the heart from ischemia-reperfusion injury. American J Physiol Heart and Circ Physiol. 304 (7), (2013).
  18. McCully, J. D., et al. Injection of isolated mitochondria during early reperfusion for cardioprotection. American J Physiol Heart and Circ Physiol. 296 (1), 94-105 (2009).
  19. Olson, M. S., Von Korff, R. W. Changes in endogenous substrates of isolated rabbit heart mitochondria during storage. J Biol Chem. 242 (2), 325-332 (1967).
  20. Diepart, C., et al. Comparison of methods for measuring oxygen consumption in tumor cells in vitro. Anal Biochem. 396 (2), 250-256 (2010).
  21. Lanza, I. R., Nair, K. S. Functional assessment of isolated mitochondria in vitro. Methods Enzymol. 457, 349-372 (2009).
check_url/51682?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Preble, J. M., Pacak, C. A., Kondo, H., MacKay, A. A., Cowan, D. B., McCully, J. D. Rapid Isolation And Purification Of Mitochondria For Transplantation By Tissue Dissociation And Differential Filtration. J. Vis. Exp. (91), e51682, doi:10.3791/51682 (2014).

View Video