Summary

Poreuze Silicon Micropartikels voor Levering van siRNA Therapeutics

Published: January 15, 2015
doi:

Summary

Levering blijft de belangrijkste uitdaging voor de therapeutische toepassing van kleine interfererende RNA (siRNA). Dit protocol omvat het gebruik van een multifunctionele en biocompatibele siRNA afleverplateau, bestaande uit arginine en polyethyleenimine geënte poreuze silicium microdeeltjes.

Abstract

Small interfering RNA (siRNA) can be used to suppress gene expression, thereby providing a new avenue for the treatment of various diseases. However, the successful implementation of siRNA therapy requires the use of delivery platforms that can overcome the major challenges of siRNA delivery, such as enzymatic degradation, low intracellular uptake and lysosomal entrapment. Here, a protocol for the preparation and use of a biocompatible and effective siRNA delivery system is presented. This platform consists of polyethylenimine (PEI) and arginine (Arg)-grafted porous silicon microparticles, which can be loaded with siRNA by performing a simple mixing step. The silicon particles are gradually degraded over time, thereby triggering the formation of Arg-PEI/siRNA nanoparticles. This delivery vehicle provides a means for protecting and internalizing siRNA, without causing cytotoxicity. The major steps of polycation functionalization, particle characterization, and siRNA loading are outlined in detail. In addition, the procedures for determining particle uptake, cytotoxicity, and transfection efficacy are also described.

Introduction

Kleine interfererende RNA's (siRNA's) zijn dubbelstrengs RNA-moleculen die de expressie van genen onderdrukken. De laatste jaren zijn siRNAs ontwikkeld als een nieuwe generatie biodrugs die therapeutisch potentieel voor toekomstig gebruik vertonen in klinische toepassingen 1-5. Echter, de succesvolle implementatie van siRNA therapie blijft een grote uitdaging, als gevolg van afbraak door nucleasen, slechte intracellulaire opname, lage transfectie-efficiëntie en inefficiënt vrijlating uit de endosoom / lysosoom 5. Veel van deze hindernissen kunnen worden overwonnen door de ontwikkeling van platforms, die veilig en efficiënt leveren siRNA zieke weefsel. Vergeleken met virale dragers, niet-virale platforms aantal voordelen, zoals veiligheid, lage kosten en het gemak van maatwerk. Vooral kationische nanodeeltjes, zoals polymeren en lipiden zijn nuttig voor siRNA levering 3 bewezen.

Eerder hebben we een schijfvormige dr ontwikkeldug levering systeem, genaamd de meertraps vector (MSV). Dit platform is gebaseerd op opeenvolgende fasen, waarbij één voertuig vrijkomt uit andere. De eerste fase voertuig een microdeeltje gemaakt van biologisch afbreekbaar poreus silicium (psi), terwijl de tweede fase voertuigen nanodeeltjes geladen geneesmiddelen of contrastmiddelen 6,7. De nanodeeltjes die zijn ingebed in het ontvangende materiaal geleidelijk vrijgegeven als de Si degradeert 8. Een voordeel van het gebruik Si deeltjes is dat de morfologie en oppervlaktekenmerken gemakkelijk kan worden aangepast om optimale biologische verdeling en geneesmiddelafgifte te bereiken. Onlangs heeft het succesvolle gebruik van de MSV platform voor de levering van siRNA liposomen tumorweefsel werd voorgesteld in een eierstok- en borstkanker muismodel 9, 10.

In dit werk hebben we een universeel systeem voor de siRNA gebaseerd op de principes van de MSV-platform gefabriceerd. De werkzaamheid van dit afgiftesysteem eerder is ons geblekening verschillende siRNA moleculen 11. Het systeem is een polykation gefunctionaliseerd poreus silicium (PCPS) drager, bestaande uit psi geënt met polyethyleenimine (PEI) en arginine (Arg). PEI kan helpen bij het ​​vormen van elektrostatische interacties met siRNA, terwijl Arg en PSI kan dienen om de toxiciteit van PEI verminderen, zoals eerder demonstarted 11. Bovendien kan de aanwezigheid van PEI helpen bij intracellulaire opname en endosomale ontsnapping, terwijl psi microdeeltjes mogelijk siRNA bescherming en aanhoudende afgifte. De psi deeltjes geleidelijk afgebroken onder fysiologische omstandigheden, hetgeen resulteert in de vorming van Arg-PEI / siRNA nanodeeltjes (figuur 1), die een afzonderlijk morfologie en een nauwe grootteverdeling 11 hebben. Voor details met betrekking tot de stabiliteit van de PCPS / siRNA-systeem, verwijzen wij u naar de studie van Shen et al. 11. Dit PCPS platform verschilt van de conventionele MSV, sinds de tweede fase nanodeeltjes worden in eerste instantie niet present in de drager, maar worden gevormd over de tijd als de eerste fase drager afbreekt 11, 12. siRNA beladingsrendement, cytotoxiciteit en silencing efficiëntie van het PCPS systeem is geëvalueerd in vitro. Transfectie-efficiëntie werd gemeten met siRNA tegen ataxia telangiectasia gemuteerde (ATM) oncogen, dat betrokken is bij DNA-herstel 10. Eerder heeft de onderdrukking van ATM aangetoond tumorgroei afnemen in een borstkankermodel 10.

Protocol

1. PCPS Particle Voorbereiding Oxideren niet- gefunctionaliseerde poreuze silicium deeltjes in een oplossing van waterstofperoxide met 30% bij 95 ° C gedurende 2 uur. Aminate de geoxideerde deeltjes in 2% (3-aminopropyl) triethoxysilaan oplossing in isopropylalcohol gedurende 2 dagen bij 65 ° C onder zacht roeren. Centrifugeer de oplossing gedurende 30 min bij 18.800 xg en was de deeltjes tweemaal in isopropanol en driemaal in ethanol, met korte sonicatie om de pellet te schorten. Laat de deeltjes…

Representative Results

Dit protocol beschrijft het gebruik van een niet-viraal afgiftesysteem voor veilige en efficiënte siRNA transfectie. De SEM resultaten blijkt dat de PCPS deeltjes cilindrisch van vorm en hebben een diameter van 2,6 urn (figuur 2A). De deeltjes zijn positief geladen bij een zeta-potentiaal van ongeveer 8,21 (figuur 2B), waardoor het mogelijk elektrostatische binding met negatief geladen nucleotiden. Confocale beelden van verschillende lagen van de PCPS deeltjes aantonen dat fluoresceren…

Discussion

Dit protocol beschrijft een werkwijze voor de succesvolle levering en transfectie van siRNA in cellen. In het bijzonder wordt de afgifte van siRNA gemaakt van een multifunctioneel platform bestaande uit gefunctionaliseerde psi polykation deeltjes. Het gebruik van siRNA therapie groot potentieel, zoals kankerbehandeling, diverse oncogenen kan worden gericht met een hoge specificiteit. Derhalve bestaat er behoefte aan siRNA bestelwagens ontwikkelen die de uitdagingen van siRNA therapie verminderen. Tot slot hebbe…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

The authors acknowledge financial support from Houston Methodist Research Institute, the National Natural Science Foundation of China (Nos., 21231007 and 21121061), the Ministry of Education of China (Nos., 20100171110013 and 313058), the National Basic Research Program of China (973 Program No. 2014CB845604), and the Fundamental Research Funds for the Central Universities.

Materials

Name of the Material/Equipment Company/Institution Catalog Number Comments/Description
Polyethylenimine (PEI), branched Sigma-Aldrich 408727 Average molecular weight ~25,000 Da
L-Arginine Sigma-Aldrich A5006 Reagent grade, ≥98%
Boc-Asp-OH Sigma-Aldrich 408-468 99%
(3-​Aminopropyl)​triethoxysilane Sigma-Aldrich 440140 99%
Hydrogen peroxide solution Sigma-Aldrich 216763 30 wt. % in H2O
Sulfuric acid Sigma-Aldrich 339741 100.00%
Isopropyl alcohol Sigma-Aldrich W292907 ≥99.7%
Ethanol Sigma-Aldrich 459844 ≥99.5% 
N-(3-Dimethylaminopropyl)-N′-ethylcarbodiimide hydrochloride (EDC) Sigma-Aldrich 03449 ≥99%
Albumin from bovine serum Sigma-Aldrich A7030-10G Blocking agent
Ataxia-telangiectasia mutated siRNA  Sigma-Aldrich Designed in-house
Tris Acetate-EDTA buffer Sigma-Aldrich T9650 For DNA agarose gel electrophoresis
Penicillin-Streptomycin Sigma-Aldrich P4333
Fetal Bovine Serum Sigma-Aldrich F2442
TWEEN 20 Sigma-Aldrich P1379 Polyethylene glycol sorbitan monolaurate
2-Mercaptoethanol Sigma Aldrich M6250 For Western blot
Sodium dodecyl sulfate Sigma-Aldrich L3771
Sodium phosphate monobasic Sigma-Aldrich 71496 For making phosphate buffer 
Sodium phosphate dibasic Sigma-Aldrich 71640 For making phosphate buffer
Anti-Mouse IgG Sigma-Aldrich A4416 Secondary antibody (anti-mouse) for Western blot
N-Hydroxysuccinimide (NHS) Sigma-Aldrich 130672 98%
CELLSTAR 96W Microplate Tissue Culture Treated Clear w/ Lid Greiner Bio-One 655182 96-well plate
10X Tris-Glycine Liquid Li-Cor  928-40010 Transfer buffer for Western blot
Paraformaldehyde solution 4% in PBS  Santa Cruz Sc-281692 Fixation of cells
CellTiter 96 AQueous Non-Radioactive Cell Proliferation Assay (MTS) Promega G5421 Proliferation assay
Phosphate buffered saline Fisher Scientific BP399-500 10 X Solution
Corning cellgro Dulbecco's Modification of Eagle's (Mod.) Fisher Scientific  MT-15-017-CM Cell culture media, 1X solution
Triton X-100 Fisher Scientific AC21568-2500 Octyl phenol ethoxylate, permeabilization agent
Cover glass Fisher Scientific 12-530C 
Methanol Fisher Scientific  A412-1 For Western blot transfer buffer
Plastic Cuvettes Fisher Scientific  14-377-010  For size measurements using Zetasizer Nano ZS
Molecular BioProducts RNase AWAY Surface Decontaminant Fisher Scientific 14-754-34 Spray for removing RNAse contamination
Agarose Fisher Scientific BP165-25 Low melting point, for running RNA samples
ProLong Gold Antifade Reagent with DAPI  Invitrogen P36935 Antifade reagent with DAPI, nucelus detection
Alexa Fluor 488 Phalloidin Invitrogen A12379 Dissolve 300 units in 1.5 ml methanol, detection of filamentous actin
SYBR Safe DNA Gel Stain Invitrogen S33102 Visualization of RNA
Negative Control siRNA Qiagen 1022076 Control siRNA
AllStars Neg. siRNA AF 555 Qiagen 1027294 Fluorescent control siRNA
Cell scraper Celltreat 229310
BioLite Multidishes and Microwell Plates Thermo Scientific 130184 6-well plate
Pierce LDS Sample Loading Buffer (4X)  Thermo Scientific 84788 Sample loading buffer for Western blot
Pierce BCS Protein Assay Kit Thermo Scientific 23227 Protein quantification assay
Halt Protease Inhibitor Single-Use Cocktails (100X) Thermo Scientific 78430 Protease inhibitor cocktail, use at 1X
M-PER Mammalian Protein Extraction Reagent Thermo Scientific  78501 Protein extraction reagent
Sorvall Legend Micro 21R Thermo Scientific 75002440 Centrifuge
Beta Actin Antibody  Thermo Scientific  MA1-91399 β-actin primary antibody (from mouse) for western blor
6X TriTrack DNA Loading Dye Thermo Scientific R1161 DNA loading dye
Nuclease-Free Water  Life Technologies AM9938
Non-Fat Dry Milk Lab Scientific M0841 For Western blot
2-well BD Falcon culture slides  BD Biosciences 354102 2-well culture slides
Amersham ECL Western blot detection reagent.  GE Healthcare Life Sciences RPN2106 Western blot detection reagent
BA Membranes GE Healthcare Life Sciences 10402096 Nitrocellulose membrane for Wester blot
ATM (D2E2) Rabbit mAb Cell Signaling 2873S ATM primary antibody (from rabbit) for Western blot
Anti-rabbit IgG, HRP-linked Antibody Cell Signaling  7074 Secondary antibody (anti-rabbit) for Western blot 
Folded capillary cells Malvern  DTS 1061 For zeta potentail measurements using Zetasizer Nano ZS
MDA-MB-231 cell line ATCC HTB-26 Mammary Gland/Breast
12% Mini-PROTEAN TGX Gel Bio-rad 456-1043  For Western blot
Biorad PowerPac HC Bio-rad 164-5052 Power supply for electrophoresis
10x Tris/Glycine/SDS Buffer Bio-rad 161-0732 Running buffer for Western blot
Wide Mini-Sub Cell GT Cell Bio-rad 170-4405 Electrophoresis equipment for DNA agarose gel 
Mini-PROTEAN Tetra cell Bio-rad 165-8000 Electrophoresis equipment for Western blot
ChemiDoc XRS+ System with Image Lab Software Bio-rad 170-8265 Image acquisition and analysis software for gels and blots
4" (10cm) dia., 5x7mm diced Silicon Wafer Ted Pella  16007 Silicon waferfor scanning electron microscopy and atomic force microscopy
Thermomixer R Eppendorf 22670107 Shaker 
Isoton II diluent Beckman Coulter 8546719 Isoton diluent
Multisizer 4 Coulter Counter Beckman Coulter A63076 Particle counting analyzer
Non-functionalized porous silicon particles  Microelectronics Research Center, University of Texas at Austin Dicoidal shape. 2.6 μm (diameter) x 0.7 μm (hight), provided in isopropyl alcohol
Zetasizer Nano ZS Malvern Particle analyzer system for size and zeta potential 
Scanning Electron Microscope FEI Particle size and shape 
Atomic Force Microscope Bruker Particle size and shape
Fluo ViewTM 1000 Confocal Microscope Olympus Visualization of fixed and live cells

References

  1. De Fougerolles, A., Vornlocher, H. P., Maraganore, J., Lieberman, J. Interfering with disease: a progress report on siRNA-based therapeutics. Nat Rev Drug Discov. 6 (6), 443-453 (2007).
  2. Rolland, A. Gene medicines: the end of the beginning. Adv Drug Deliv Rev. 57 (5), 669-673 (2005).
  3. Oh, Y. K., Park, T. G. siRNA delivery systems for cancer treatment. Adv Drug Deliv Rev. 61 (10), 850-862 (2009).
  4. Mintzer, M. A., Simanek, E. E. Nonviral vectors for gene delivery. Chem Rev. 109 (2), 259-302 (2009).
  5. Whitehead, K. A., Langer, R., Anderson, D. G. Knocking down barriers: advances in siRNA delivery. Nat Rev Drug Discov. 8 (2), 129-138 (2009).
  6. Decuzzi, P., et al. Size and shape effects in the biodistribution of intravascularly injected particles. J Control Release. 141 (3), 320-327 (2010).
  7. Decuzzi, P., Ferrari, M. Design maps for nanoparticles targeting the diseased microvasculature. Biomaterials. 29 (3), 377-384 (2008).
  8. Martinez, J. O., Evangelopoulos, M., Chiappini, C., Liu, X., Ferrari, M., Tasciotti, E. Degradation and biocompatibility of multistage nanovectors in physiological systems. J Biomed Mater Res A. 102 (10), 3540-3549 (2014).
  9. Shen, H., et al. Enhancing chemotherapy response with sustained EphA2 silencing using multistage vector delivery. Clin Cancer Res. 19 (7), 1806-1815 (2013).
  10. Xu, R., et al. Multistage vectored siRNA targeting ataxia-telangiectasia mutated for breast cancer therapy. Small. 9 (9-10), 1799-1808 .
  11. Shen, J., et al. High capacity nanoporous silicon carrier for systemic delivery of gene silencing therapeutics. ACS Nano. 7 (11), 9867-9880 (2013).
  12. Zhang, M., et al. Polycation-functionalized nanoporous silicon particles for gene silencing on breast cancer cells. Biomaterials. 35 (1), 423-431 (2014).
  13. Ozpolat, B., Sood, A. K., Lopez-Berestein, G. Nanomedicine based approaches for the delivery of siRNA in cancer. J Intern Med. 267 (1), 44-53 (2010).
  14. Philipp, A., Dehshahri, A., Wagner, A., E, Simple modifications of branched PEI lead to highly efficient siRNA carriers with low toxicity. Bioconjug Chem. 19 (7), 1448-1455 (2008).
  15. Hunter, A. C. Molecular hurdles in polyfectin design and mechanistic background to polycation induced cytotoxicity. Adv Drug Deliv Rev. 58 (14), 1523-1531 (2006).
  16. Andrews, P. M., Bates, S. B. Dose-dependent movement of cationic molecules across the glomerular wall. Anat Rec. 212 (3), 223-231 (1985).
  17. Ananta, J. S., et al. Geometrical confinement of gadolinium-based contrast agents in nanoporous particles enhances T1 contrast. Nat Nanotechnol. 5 (11), 815-821 (2010).
check_url/52075?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Shen, J., Wu, X., Lee, Y., Wolfram, J., Yang, Z., Mao, Z., Ferrari, M., Shen, H. Porous Silicon Microparticles for Delivery of siRNA Therapeutics. J. Vis. Exp. (95), e52075, doi:10.3791/52075 (2015).

View Video