Summary

Porøs Silicon Mikropartikler for levering av siRNA Therapeutics

Published: January 15, 2015
doi:

Summary

Levering er fortsatt den viktigste utfordringen for den terapeutiske gjennomføring av små RNA forstyrrende (siRNA). Denne protokollen innbefatter bruken av en multifunksjonell og biokompatibelt siRNA levering plattform, bestående av arginin og polyetylenimin podet porøse silisium mikropartikler.

Abstract

Small interfering RNA (siRNA) can be used to suppress gene expression, thereby providing a new avenue for the treatment of various diseases. However, the successful implementation of siRNA therapy requires the use of delivery platforms that can overcome the major challenges of siRNA delivery, such as enzymatic degradation, low intracellular uptake and lysosomal entrapment. Here, a protocol for the preparation and use of a biocompatible and effective siRNA delivery system is presented. This platform consists of polyethylenimine (PEI) and arginine (Arg)-grafted porous silicon microparticles, which can be loaded with siRNA by performing a simple mixing step. The silicon particles are gradually degraded over time, thereby triggering the formation of Arg-PEI/siRNA nanoparticles. This delivery vehicle provides a means for protecting and internalizing siRNA, without causing cytotoxicity. The major steps of polycation functionalization, particle characterization, and siRNA loading are outlined in detail. In addition, the procedures for determining particle uptake, cytotoxicity, and transfection efficacy are also described.

Introduction

Små interfererende RNA (sirnas) er dobbelt-RNA-molekyler som kan undertrykke uttrykket av gener. I de senere årene har sirnas blitt utviklet som en ny generasjon av biodrugs som viser terapeutisk potensial for fremtidig bruk i kliniske applikasjoner 1-5. Men fortsatt er vellykket implementering av siRNA terapi en betydelig utfordring, på grunn av nedbrytning av nukleaser, dårlig intracellulære opptaket, lav transfeksjonseffektivitet og ineffektiv utgivelse fra endosomet / lysosomet 5. Mange av disse hindringer kan overvinnes ved utvikling av levering plattformer, som sikkert og effektivt kan levere siRNA til sykt vev. Sammenlignet med virusbærere, ikke-virale plattformer gir flere fordeler, for eksempel sikkerhet, lave kostnader og enkel skreddersøm. Spesielt kationiske nanopartikler, så som polymerer og lipider, har vist seg nyttig for siRNA levering 3.

Tidligere har vi utviklet en skiveformede drug leveringssystem, betegnet flertrinns vektor (MSV). Denne plattformen er basert på sekvensielle trinn, hvor ett kjøretøy er frigjort fra hverandre. Det første trinn kjøretøy er en mikropartikkel laget av biologisk nedbrytbare porøse silisium (PSI), mens den andre fasen kjøretøyer er nanopartikler ladet med medikamenter eller kontrastmidler 6,7. Nanopartikler, som er innebygd i PSI materiale, er gradvis utgitt som Si degraderer 8. En fordel med å bruke Si partikler er at morfologi og overflateegenskaper kan enkelt tilpasses for å oppnå optimal biodistribusjon og narkotika utgivelse. Nylig ble den vellykkede bruk av MSV-plattform for levering av siRNA liposomer til tumorvevet vist i en ovarian og brystkreft musemodell 9, 10.

I dette arbeidet har vi fabrikkert en universell levering system for siRNA basert på prinsippene i MSV-plattformen. Effekten av dette avgivelsessystemet har tidligere blitt demonstrert ossing forskjellig siRNA molekyler 11. Systemet er et polykation-funksjonalisert porøs silisium (PCPS) bærer, som består av PSI podet med polyetylenimin (PEI) og arginin (Arg). PEI kan hjelpe til å danne elektrostatiske interaksjoner med siRNA, mens Arg og PSI kan tjene til å redusere giftigheten av PEI, som tidligere demonstarted 11. I tillegg kan tilstedeværelsen av PEI bistå i intracellulært opptak og endosomale flukt, mens psi mikropartikler mulig siRNA beskyttelse og forlenget frigivelse. PSI partiklene gradvis nedbrytes under fysiologiske betingelser, for derved å resultere i dannelsen av Arg-PEI / siRNA nanopartikler (figur 1), som har en distinkt morfologi og en smal størrelsesfordeling 11. For detaljer om stabiliteten i PCPS / siRNA system, henvises til studiet av Shen et al. 11. Dette PCPS plattformen skiller seg fra konvensjonell MSV, siden de andre scenenanopartikler ikke er i utgangspunktet present i transportøren, men dannes over tid som første-trinns bærer degraderer 11, 12. Den siRNA lasteeffektivitet, cytotoksisitet og genet stanse effektiviteten av PCPS systemet har blitt evaluert in vitro. Transfeksjonseffektiviteten ble målt ved hjelp av siRNA mot ataxia telangiectasia mutated (ATM) onkogen, som er involvert i DNA-reparasjon 10. Tidligere har undertrykkelse av ATM blitt vist å redusere tumorvekst i en brystkreftmodell 10.

Protocol

1. PCPS Particle Forberedelse Oksydere ikke-funksjonaliserte porøse silisiumpartikler i en 30% oppløsning av hydrogenperoksyd ved 95 ° C i 2 timer. Aminere de oksyderte partikler som i 2% (3- aminopropyl) trietoksysilan løsning i isopropylalkohol i 2 dager ved 65 ° C med forsiktig omrøring. Sentrifuger løsningen i 30 minutter ved 18800 xg og vaske partiklene to ganger i isopropylalkohol og tre ganger i etanol, ved hjelp av korte ultralydbehandling for å suspendere pelleten. La partiklene i e…

Representative Results

Denne protokollen beskriver anvendelsen av et ikke-virale leveringssystem for sikker og effektiv siRNA transfeksjon. SEM-resultater viser at de PCPS partiklene er sylindrisk i form og har en diameter på 2,6 um (figur 2A). Partiklene blir positivt ladet med et zeta potensial på omtrent 8,21 (figur 2B), for derved å muliggjøre elektrostatisk binding med negativt ladede nukleotider. Konfokale bilder av forskjellige lag av PCPS partiklene viser at fluorescerende kontroll siRNA er lagt i…

Discussion

Denne protokollen beskriver en fremgangsmåte for en vellykket levering og transfeksjon av siRNA inn i celler. Spesielt er levering av siRNA oppnås ved hjelp av en multifunksjonell plattform bestående av polykation-funksjonalisert psi partikler. Bruk av siRNA terapi har stort potensial, for eksempel, kreftbehandling, som ulike onkogener kan være målrettet med høy spesifisitet. Derfor er det et krav om å utvikle siRNA levering kjøretøy, noe som kan redusere utfordringene i siRNA terapi. Avslutningsvis ha…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

The authors acknowledge financial support from Houston Methodist Research Institute, the National Natural Science Foundation of China (Nos., 21231007 and 21121061), the Ministry of Education of China (Nos., 20100171110013 and 313058), the National Basic Research Program of China (973 Program No. 2014CB845604), and the Fundamental Research Funds for the Central Universities.

Materials

Name of the Material/Equipment Company/Institution Catalog Number Comments/Description
Polyethylenimine (PEI), branched Sigma-Aldrich 408727 Average molecular weight ~25,000 Da
L-Arginine Sigma-Aldrich A5006 Reagent grade, ≥98%
Boc-Asp-OH Sigma-Aldrich 408-468 99%
(3-​Aminopropyl)​triethoxysilane Sigma-Aldrich 440140 99%
Hydrogen peroxide solution Sigma-Aldrich 216763 30 wt. % in H2O
Sulfuric acid Sigma-Aldrich 339741 100.00%
Isopropyl alcohol Sigma-Aldrich W292907 ≥99.7%
Ethanol Sigma-Aldrich 459844 ≥99.5% 
N-(3-Dimethylaminopropyl)-N′-ethylcarbodiimide hydrochloride (EDC) Sigma-Aldrich 03449 ≥99%
Albumin from bovine serum Sigma-Aldrich A7030-10G Blocking agent
Ataxia-telangiectasia mutated siRNA  Sigma-Aldrich Designed in-house
Tris Acetate-EDTA buffer Sigma-Aldrich T9650 For DNA agarose gel electrophoresis
Penicillin-Streptomycin Sigma-Aldrich P4333
Fetal Bovine Serum Sigma-Aldrich F2442
TWEEN 20 Sigma-Aldrich P1379 Polyethylene glycol sorbitan monolaurate
2-Mercaptoethanol Sigma Aldrich M6250 For Western blot
Sodium dodecyl sulfate Sigma-Aldrich L3771
Sodium phosphate monobasic Sigma-Aldrich 71496 For making phosphate buffer 
Sodium phosphate dibasic Sigma-Aldrich 71640 For making phosphate buffer
Anti-Mouse IgG Sigma-Aldrich A4416 Secondary antibody (anti-mouse) for Western blot
N-Hydroxysuccinimide (NHS) Sigma-Aldrich 130672 98%
CELLSTAR 96W Microplate Tissue Culture Treated Clear w/ Lid Greiner Bio-One 655182 96-well plate
10X Tris-Glycine Liquid Li-Cor  928-40010 Transfer buffer for Western blot
Paraformaldehyde solution 4% in PBS  Santa Cruz Sc-281692 Fixation of cells
CellTiter 96 AQueous Non-Radioactive Cell Proliferation Assay (MTS) Promega G5421 Proliferation assay
Phosphate buffered saline Fisher Scientific BP399-500 10 X Solution
Corning cellgro Dulbecco's Modification of Eagle's (Mod.) Fisher Scientific  MT-15-017-CM Cell culture media, 1X solution
Triton X-100 Fisher Scientific AC21568-2500 Octyl phenol ethoxylate, permeabilization agent
Cover glass Fisher Scientific 12-530C 
Methanol Fisher Scientific  A412-1 For Western blot transfer buffer
Plastic Cuvettes Fisher Scientific  14-377-010  For size measurements using Zetasizer Nano ZS
Molecular BioProducts RNase AWAY Surface Decontaminant Fisher Scientific 14-754-34 Spray for removing RNAse contamination
Agarose Fisher Scientific BP165-25 Low melting point, for running RNA samples
ProLong Gold Antifade Reagent with DAPI  Invitrogen P36935 Antifade reagent with DAPI, nucelus detection
Alexa Fluor 488 Phalloidin Invitrogen A12379 Dissolve 300 units in 1.5 ml methanol, detection of filamentous actin
SYBR Safe DNA Gel Stain Invitrogen S33102 Visualization of RNA
Negative Control siRNA Qiagen 1022076 Control siRNA
AllStars Neg. siRNA AF 555 Qiagen 1027294 Fluorescent control siRNA
Cell scraper Celltreat 229310
BioLite Multidishes and Microwell Plates Thermo Scientific 130184 6-well plate
Pierce LDS Sample Loading Buffer (4X)  Thermo Scientific 84788 Sample loading buffer for Western blot
Pierce BCS Protein Assay Kit Thermo Scientific 23227 Protein quantification assay
Halt Protease Inhibitor Single-Use Cocktails (100X) Thermo Scientific 78430 Protease inhibitor cocktail, use at 1X
M-PER Mammalian Protein Extraction Reagent Thermo Scientific  78501 Protein extraction reagent
Sorvall Legend Micro 21R Thermo Scientific 75002440 Centrifuge
Beta Actin Antibody  Thermo Scientific  MA1-91399 β-actin primary antibody (from mouse) for western blor
6X TriTrack DNA Loading Dye Thermo Scientific R1161 DNA loading dye
Nuclease-Free Water  Life Technologies AM9938
Non-Fat Dry Milk Lab Scientific M0841 For Western blot
2-well BD Falcon culture slides  BD Biosciences 354102 2-well culture slides
Amersham ECL Western blot detection reagent.  GE Healthcare Life Sciences RPN2106 Western blot detection reagent
BA Membranes GE Healthcare Life Sciences 10402096 Nitrocellulose membrane for Wester blot
ATM (D2E2) Rabbit mAb Cell Signaling 2873S ATM primary antibody (from rabbit) for Western blot
Anti-rabbit IgG, HRP-linked Antibody Cell Signaling  7074 Secondary antibody (anti-rabbit) for Western blot 
Folded capillary cells Malvern  DTS 1061 For zeta potentail measurements using Zetasizer Nano ZS
MDA-MB-231 cell line ATCC HTB-26 Mammary Gland/Breast
12% Mini-PROTEAN TGX Gel Bio-rad 456-1043  For Western blot
Biorad PowerPac HC Bio-rad 164-5052 Power supply for electrophoresis
10x Tris/Glycine/SDS Buffer Bio-rad 161-0732 Running buffer for Western blot
Wide Mini-Sub Cell GT Cell Bio-rad 170-4405 Electrophoresis equipment for DNA agarose gel 
Mini-PROTEAN Tetra cell Bio-rad 165-8000 Electrophoresis equipment for Western blot
ChemiDoc XRS+ System with Image Lab Software Bio-rad 170-8265 Image acquisition and analysis software for gels and blots
4" (10cm) dia., 5x7mm diced Silicon Wafer Ted Pella  16007 Silicon waferfor scanning electron microscopy and atomic force microscopy
Thermomixer R Eppendorf 22670107 Shaker 
Isoton II diluent Beckman Coulter 8546719 Isoton diluent
Multisizer 4 Coulter Counter Beckman Coulter A63076 Particle counting analyzer
Non-functionalized porous silicon particles  Microelectronics Research Center, University of Texas at Austin Dicoidal shape. 2.6 μm (diameter) x 0.7 μm (hight), provided in isopropyl alcohol
Zetasizer Nano ZS Malvern Particle analyzer system for size and zeta potential 
Scanning Electron Microscope FEI Particle size and shape 
Atomic Force Microscope Bruker Particle size and shape
Fluo ViewTM 1000 Confocal Microscope Olympus Visualization of fixed and live cells

References

  1. De Fougerolles, A., Vornlocher, H. P., Maraganore, J., Lieberman, J. Interfering with disease: a progress report on siRNA-based therapeutics. Nat Rev Drug Discov. 6 (6), 443-453 (2007).
  2. Rolland, A. Gene medicines: the end of the beginning. Adv Drug Deliv Rev. 57 (5), 669-673 (2005).
  3. Oh, Y. K., Park, T. G. siRNA delivery systems for cancer treatment. Adv Drug Deliv Rev. 61 (10), 850-862 (2009).
  4. Mintzer, M. A., Simanek, E. E. Nonviral vectors for gene delivery. Chem Rev. 109 (2), 259-302 (2009).
  5. Whitehead, K. A., Langer, R., Anderson, D. G. Knocking down barriers: advances in siRNA delivery. Nat Rev Drug Discov. 8 (2), 129-138 (2009).
  6. Decuzzi, P., et al. Size and shape effects in the biodistribution of intravascularly injected particles. J Control Release. 141 (3), 320-327 (2010).
  7. Decuzzi, P., Ferrari, M. Design maps for nanoparticles targeting the diseased microvasculature. Biomaterials. 29 (3), 377-384 (2008).
  8. Martinez, J. O., Evangelopoulos, M., Chiappini, C., Liu, X., Ferrari, M., Tasciotti, E. Degradation and biocompatibility of multistage nanovectors in physiological systems. J Biomed Mater Res A. 102 (10), 3540-3549 (2014).
  9. Shen, H., et al. Enhancing chemotherapy response with sustained EphA2 silencing using multistage vector delivery. Clin Cancer Res. 19 (7), 1806-1815 (2013).
  10. Xu, R., et al. Multistage vectored siRNA targeting ataxia-telangiectasia mutated for breast cancer therapy. Small. 9 (9-10), 1799-1808 .
  11. Shen, J., et al. High capacity nanoporous silicon carrier for systemic delivery of gene silencing therapeutics. ACS Nano. 7 (11), 9867-9880 (2013).
  12. Zhang, M., et al. Polycation-functionalized nanoporous silicon particles for gene silencing on breast cancer cells. Biomaterials. 35 (1), 423-431 (2014).
  13. Ozpolat, B., Sood, A. K., Lopez-Berestein, G. Nanomedicine based approaches for the delivery of siRNA in cancer. J Intern Med. 267 (1), 44-53 (2010).
  14. Philipp, A., Dehshahri, A., Wagner, A., E, Simple modifications of branched PEI lead to highly efficient siRNA carriers with low toxicity. Bioconjug Chem. 19 (7), 1448-1455 (2008).
  15. Hunter, A. C. Molecular hurdles in polyfectin design and mechanistic background to polycation induced cytotoxicity. Adv Drug Deliv Rev. 58 (14), 1523-1531 (2006).
  16. Andrews, P. M., Bates, S. B. Dose-dependent movement of cationic molecules across the glomerular wall. Anat Rec. 212 (3), 223-231 (1985).
  17. Ananta, J. S., et al. Geometrical confinement of gadolinium-based contrast agents in nanoporous particles enhances T1 contrast. Nat Nanotechnol. 5 (11), 815-821 (2010).
check_url/52075?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Shen, J., Wu, X., Lee, Y., Wolfram, J., Yang, Z., Mao, Z., Ferrari, M., Shen, H. Porous Silicon Microparticles for Delivery of siRNA Therapeutics. J. Vis. Exp. (95), e52075, doi:10.3791/52075 (2015).

View Video