Summary

Isolasjon og Funksjonell analyse av Mitokondrier fra dyrkede celler og mus Tissue

Published: March 23, 2015
doi:

Summary

Comparison of mitochondrial membrane potential between samples yields valuable information about cellular status. Detailed steps for isolating mitochondria and assessing response to inhibitors and uncouplers using fluorescence are described. The method and utility of this protocol are illustrated by use of a cell culture and animal model of cellular stress.

Abstract

Comparison between two or more distinct groups, such as healthy vs. disease, is necessary to determine cellular status. Mitochondria are at the nexus of cell heath due to their role in both cell metabolism and energy production as well as control of apoptosis. Therefore, direct evaluation of isolated mitochondria and mitochondrial perturbation offers the ability to determine if organelle-specific (dys)function is occurring. The methods described in this protocol include isolation of intact, functional mitochondria from HEK cultured cells and mouse liver and spinal cord, but can be easily adapted for use with other cultured cells or animal tissues. Mitochondrial function assessed by TMRE and the use of common mitochondrial uncouplers and inhibitors in conjunction with a fluorescent plate reader allow this protocol not only to be versatile and accessible to most research laboratories, but also offers high throughput.

Introduction

Levende celler bank metabolsk energi i form av fett og karbohydrater, og bruke denne energien for biosyntese, membrantransport og bevegelse. Noe energi blir oppnådd i cytosol ved omdannelsen av diettsukker direkte til ATP under glykolyse. Imidlertid er hovedkilden for ATP produksjon i en celle utnyttes i mitokondriene via mitokondrie respiratoriske kjeden 1. Arkitekturen i mitokondriene gir nødvendig romlig orientering for effektiv og effektiv ATP produksjon. Mitokondrier har en dobbelt membran adskilt med en intermembrane plass, og sammen med grunnmassen, den innerste mitokondrie rommet, huset komponentene og koordinere de kjemiske reaksjoner som er involvert i ATP generasjon. Den indre membran inneholder en serie av membranbundne proteinkomplekser som utgjør den respiratoriske kjeden samt ATP syntetase, proteinkompleks som bringer ADP og Pi sammen for dannelsen av ATP. Vertshuseter membranen er foldet til cristae og elektronene føres langs de respiratoriske kjeden komplekser via cytokrom c, et oppløselig elektronbærer som beveger seg mellom kompleksene innenfor intermembrane plass. Når elektronene beveger seg, oppstår oksydasjon av reduserende ekvivalenter og hydrogenioner blir pumpet fra matrisen til det intermembrane plass. Som en konsekvens av den høye ionekonsentrasjon i intermembrane plass, bygger en elektrokjemisk gradient som resulterer i en membran potensial over den indre mitokondrie-membran (Δψ) 2. Oksygen er den avsluttende elektronakseptor for elektrontransportkjeden, og hydrogenioner strømme gjennom ATP synthases fra intermembrane plass tilbake til grunnmassen, og dermed direkte føre til ATP formasjonen. Denne prosessen som er beskrevet i sin helhet er kjent som oksydativ fosforylering. Foldene i cristae øke overflatearealet av den indre membranen, slik at for maksimal elektrontransport og ATP produksjon innenforhver mitokondrie. Proteiner, enzymer og andre molekyler som er involvert i oksidativ fosforylering er avledet fra både nukleære og mitokondrielle gener. Mitokondrier inneholde sin egen sirkulært DNA, som koder for 13 proteiner samt tRNA og mRNA som er nødvendige for ATP produksjon tre. Imidlertid er mange flere proteiner som kreves, og dermed er atom kodet. De fleste av disse atom-kodede proteiner er rettet mot den mitokondrielle matriks ved bruk av presequences ved N-terminalen av forløper-proteinet, og deres innførsel er drevet delvis av Δψ 4,5.

Ut over å bidra til de Bioenergi i en celle, mitokondrier også påvirke viktige metabolske prosesser som TCA og beta-oksydasjon, cellesignalisering ved å regulere kalsium, samt en nøkkelrolle i apoptose 6. Spesielt i tider med cellulært stress, BCL-2 familie proteiner som ligger på eller samhandle på mitokondrie ytre membran kan forårsake mitokondriellytre membran permeabilitet (MOMP) 7,8. Under MOMP, er cytokrom c og andre proteiner frigjort i cytosol, og sammen med flere cytosoliske proteiner danner et kompleks kalt apoptosome 9,10. Den apoptosome aktiverer kaspaser som går på å kløyve cellulære proteiner og DNA i gjennomføringsfasen av apoptose. Så snart MOMP skjer, er ΔΨ kollapset og ATP produksjonen stanset. Således, som apoptose initieres mitokondriefunksjon er kompromittert og endringer i ΔΨ kan korreleres til mitokondriell og celle helse 12. Mens apoptose er et endepunkt i mange sykdomsmodeller, mitokondriefunksjon og endringer til ΔΨ kan også gi verdifull informasjon om sykdom opprinnelse og / eller progresjon. For eksempel har mitokondrie strukturelle og funksjonelle endringer er dokumentert i løpet av nevrodegenerative sykdommer 13,14.

I den første del av protokollen, isoning av intakte mitokondrier som beholder sin ΔΨ er beskrevet. HEK-293T-celler ble eksponert for ulike konsentrasjoner og kombinasjoner av rekombinant TNF-α, IL1-β og IFN-γ å indusere apoptose. Disse cytokiner ble valgt fordi de ofte er rapportert å være høy i primære humane septik prøvene 15 og den ytre vei av apoptose kan utløses ved samvirke av TNF-α-binding til dets reseptor 6. Siden det er små variasjoner er nødvendige for å isolere funksjonell mitokondrier fra primær vev sammenlignet med dyrkede celler, og fordi mye forskning utnytter dyr, protokollen beskriver også hvordan å isolere mitokondrier fra leveren og ryggmargen av fremre lateral sklerose (ALS) musemodell.

Den andre del av protokollen ble utviklet for å overvåke perturbasjoner i den mitokondrielle membranpotensialet ved hjelp av en potensialsensitive fluorescerende fargestoff med et fluorescerende plateleser. Forskjells mellom celle status (dvs. frisk vs. usunn) blir differensiert ved å kvantifisere styrken av ΔΨ av isolerte mitokondrier i forbindelse med frakoblingsmidler, respiratoriske kjede-inhibitorer, komplekse inhibitorer og ionoforer, som alle fører til bortledning av mitokondriemembranpotensialet. Den sunnere mitokondriene, jo større forandringen i ΔΨ ved behandling med mitokondrie-inhibitorer, derfor responsen til mitokondriene kan brukes som en indikator på mitokondrie (dys) funksjon.

Bruk av isolerte mitokondrier fremfor in situ vurdering av funksjonen gir definitive bevis på at en patologi eller behandling modulerer endringer i organeller 16 til 18 direkte. Mens det finnes metoder i litteraturen for å isolere mitokondrier fra dyrkede celler, er de vag 17 og / eller utbytte av spesialisert utstyr 16. Denne protokollen beskriver i detalj isolering fremgangsmåte og erlett kan tilpasses til andre cellelinjer, inkludert primære vev og kulturer 13,14,19,20. Mange isolerte mitokondrier studier utnytte de samme mitokondrielle uncouplers og hemmere brukes i denne protokollen, men med en Clark elektrode (21 er et representativt eksempel på mange papirer i litteraturen), som igjen er en veldig spesifikk og spesialisert utstyr. Videre har denne tradisjonelle metode begrensninger som lav gjennomstrømning og høy kompleksitet 22,23 og krever en betydelig mengde av mitochondria (~ 500 ug / reaksjon). I denne protokoll, blir det fluorescerende membransensor potensial probe TMRE brukes i forbindelse med en fluoriserende plateleser, som er en standard maskin i mange laboratorier. TMRE er ansett siden det raskt går celler og isolerte mitokondrier og kan anvendes ved lave konsentrasjoner 24. Flere reaksjoner kan raskt settes opp i tandem og batch analysert ved bruk av denne protokollen. Videre er reaksjonens krever en mye mindre mengde av isolerte mitokondrier (~ 10 pg / reaksjon). Ved å kreve mindre materiale, kan mindre vevs- eller cellekulturprøver benyttes som et utgangspunkt for mitokondriene isolert, kan flere replikater eller reaksjoner settes opp, og potensielt nok materiale til andre isolerte mitokondrier eksperimenter slik som ATP produksjon, oksygenforbruk eller import assays er mulig.

Protocol

Alle dyreforsøk dannet National Institutes of Health retningslinjer og ble godkjent av Wake Forest University Animal Care og bruk komité. Hekkende par for SOD1G93A [B6SJL-TGN (SOD1-G93A) 1Gur] musemodell ble hentet fra The Jackson Laboratory (Bar Harbor, ME). Transgen villtype (WT) hunner og SOD1G93A hanner [B6SJL-TGN (SOD1-G93A) 1Gur] ble avlet for å generere SOD1G93A mus og ikke-transgen WT kullsøsken som ble brukt i forsøkene. 1. Modeller for Investigation Cellekultur …

Representative Results

Behandling av HEK-293T-celler med 200 pg / ml TNF-α, 40 ng / ml IL1-β, og 75 ng / ml IFN-γ (* 3) for 24 til 48 timer gir en progressiv mengder av celledød (figur 1A ). Cellenes levedyktighet ble bestemt ved hjelp av MTT-analyser og konsekvent viser at det er ~ 10% reduksjon i cellelevedyktighet med 24 timers behandling og ~ 20% reduksjon med 48 timers behandling. Celler ble behandlet med tilsvarende konsentrasjoner (100 pg / ml TNF-α, 40 ng / ml IL1-β, og 75 ng / ml IFN-γ) ga lignende resultater …

Discussion

Behandling av HEK-293T-celler med rekombinante cytokiner forårsaker moderate mengder av celledød i løpet av 48 timer (figur 1). Mengden av celledød indusert av TNF-alfa behandlingen er lik tidligere rapporterte studiene 30 og celleviabilitet avtar etter samtidig bruk av flere cytokiner som er større enn summative mengder med noen cytokin alene er også konsistent med litteraturen 31,32. Muligheten til å justere mengder og typer av cytokin behandlinger samt sammenligning av co…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

This research was supported in part by NSF grant CHE-1229562 (VDGM), the Office of Undergraduate Research at Elon University, the Elon Chemistry Department, and the Elon Lumen Prize (TL and TAD), the Elon College Fellows Program (JAC), and the Elon College Honors Program (TAD).

Materials

Name of Material/ Equipment Company Catalog Number Comments/Description
L-glutamic acid Sigma G1251 Can use the potassium salt instead.
malic acid Sigma M8304 Can use the potassium salt instead.
KH2PO4 Sigma P0662
K2HPO4 Sigma P3786
EGTA Sigma E3889
Trisma base Sigma T6066
MOPS Sigma M3183
CCCP Sigma C2920 Dilute down to 100uM as a working stock in ethanol and store at -20C. 
Valinomycin Sigma V0627 Make in DMSO and use as a 5uM working stock. Store at -20C.
sucrose Fisher S5-500
KCN Mallinckrodt 6379 Make a concentrated stock in ethanol and then dilute with water 
rotenone Sigma R8875 Highly toxic. Made in ethanol.
oligomycin Sigma O4876 Highly toxic. Made in ethanol.
ADP Sigma A2754
TMRE Sigma 8717-25mg Dilute 100uM stock with EB immediatley before use.
DMEM Gibco 11965-084 1x regular (high glucose).
Pen/Strep Invitrogen 15140-155
L-glutamine Fisher SH3002101 Store aliquots at -20C
FBS Lonza 14-501F US origin, premium quality. Heat inactivate and store aliquots at -20
Trypsin-EDTA Sigma T4049
DMSO SIgma D2650
Protien Assay Dye (5x) Bio-Rad 500-0006 Any protein assay can substitute.
BSA Fisher BP1600-100 Make 2mg/mL stock in water for protein assay.
MTT powder Sigma M2128 Filter sterlize 5mg/mL stock made in PBS. Store aliquots at -20C; store at 4C for up to 1 week.
Tergitol solution (NP-40) Sigma NP40S
Recombinant Human IL-1B Gibco PCH08014 Once opened store aliquots at -20C
Recombinant Human TNF-alpha Gibco PHC3015L
Recombinant Human IFN-gamma Gibco PHC4031
Dulbeccos PBS (-/-) Sigma D8537 Make sure it is without Mg2+ and Ca2+ ions.
Cytochrom c ELISA kit R&D systems DTC0 Human for HEK-293T cells. 

References

  1. Madeira, V. M. Overview of mitochondrial bioenergetics. Methods In Molecular Biology. 810, 1-6 (2012).
  2. Sakamuru, S., et al. Application of a homogenous membrane potential assay to assess mitochondrial function. Physiological Genomics. 44, 495-503 (2012).
  3. Clayton, D. A. Structure and function of the mitochondrial genome. Journal Of Inherited Metabolic Disease. 15, 439-447 (1992).
  4. Schatz, G. The protein import system of mitochondria. The Journal of Biological Chemistry. 271, 31763-31766 (1996).
  5. Mayer, A., Neupert, W., Lill, R. Mitochondrial protein import: reversible binding of the presequence at the trans side of the outer membrane drives partial translocation and unfolding. Cell. 80, 127-137 (1995).
  6. Green, D. R., Kroemer, G. The pathophysiology of mitochondrial cell death. Science. 305, 626-629 (2004).
  7. Shamas-Din, A., Kale, J., Leber, B., Andrews, D. W. Mechanisms of action of Bcl-2 family proteins. Cold Spring Harbor Perspectives In Biology. 5, a008714 (2013).
  8. Hardwick, J. M., Youle, R. J. SnapShot: BCL-2 proteins. Cell. 138, 404 (2009).
  9. Zoratti, M., Szabo, I. The mitochondrial permeability transition. Biochimica et Biophysica Acta. 1241, 139-176 (1995).
  10. Wu, C. C., Bratton, S. B. Regulation of the intrinsic apoptosis pathway by reactive oxygen species. Antioxidants & Redox Signaling. 19, 546-558 (2013).
  11. Kuwana, T., et al. BH3 domains of BH3-only proteins differentially regulate Bax-mediated mitochondrial membrane permeabilization both directly and indirectly. Molecular Cell. 17, 525-535 (2005).
  12. Joshi, D. C., Bakowska, J. C. Determination of mitochondrial membrane potential and reactive oxygen species in live rat cortical neurons. Journal Of Visualized Experiments. , (2011).
  13. Vinsant, S., et al. Characterization of early pathogenesis in the SOD1(G93A) mouse model of ALS: part I, background and methods. Brain and Behavior. 3, 335-350 (2013).
  14. Vinsant, S., et al. Characterization of early pathogenesis in the SOD1(G93A) mouse model of ALS: part II, results and discussion. Brain and Behavior. 3, 431-457 (2013).
  15. Rajapakse, N., Shimizu, K., Payne, M., Busija, D. Isolation and characterization of intact mitochondria from neonatal rat brain. Brain research. Brain Research Protocols. 8, 176-183 (2001).
  16. Schmitt, S., et al. A semi-automated method for isolating functionally intact mitochondria from cultured cells and tissue biopsies. Analytical Biochemistry. 443, 66-74 (2013).
  17. Frezza, C., Cipolat, S., Scorrano, L. Organelle isolation: functional mitochondria from mouse liver, muscle and cultured fibroblasts. Nature Protocols. 2, 287-295 (2007).
  18. Debatin, K. M., Poncet, D., Kroemer, G. Chemotherapy: targeting the mitochondrial cell death pathway. Oncogene. 21, 8786-8803 (2002).
  19. Del Gaizo Moore, V., et al. Chronic lymphocytic leukemia requires BCL2 to sequester prodeath BIM, explaining sensitivity to BCL2 antagonist ABT-737. The Journal of Clinical Investigation. 117, 112-121 (2007).
  20. Del Gaizo Moore, V., Schlis, K. D., Sallan, S. E., Armstrong, S. A., Letai, A. BCL-2 dependence and ABT-737 sensitivity in acute lymphoblastic leukemia. Blood. 111, 2300-2309 (2008).
  21. Li, N., et al. Mitochondrial complex I inhibitor rotenone induces apoptosis through enhancing mitochondrial reactive oxygen species production. The Journal of Biological Chemistry. 278, 8516-8525 (2003).
  22. Hynes, J., et al. Investigation of drug-induced mitochondrial toxicity using fluorescence-based oxygen-sensitive probes. Toxicological Sciences : An Official Journal Of The Society of Toxicology. 92, 186-200 (2006).
  23. Papkovsky, D. B. Methods in optical oxygen sensing: protocols and critical analyses. Methods in enzymology. 381, 715-735 (2004).
  24. Galluzzi, L., et al. Methods for the assessment of mitochondrial membrane permeabilization in apoptosis. Apoptosis : An International Journal On Programmed Cell Death. 12, 803-813 (2007).
  25. Gurney, M. E., et al. Motor neuron degeneration in mice that express a human Cu,Zn superoxide dismutase mutation. Science. 264, 1772-1775 (1994).
  26. Smith, P. K., et al. Measurement of protein using bicinchoninic acid. Analytical Biochemistry. 150, 76-85 (1985).
  27. Certo, M., et al. Mitochondria primed by death signals determine cellular addiction to antiapoptotic BCL-2 family members. Cancer Cell. 9, 351-365 (2006).
  28. Hogeboom, G. H., Schneider, W. C., Pallade, G. E. Cytochemical studies of mammalian tissues; isolation of intact mitochondria from rat liver; some biochemical properties of mitochondria and submicroscopic particulate material. The Journal Of Biological Chemistry. 172, 619-635 (1948).
  29. Hogeboom, G. H., Claude, A., Hotch-Kiss, R. D. The distribution of cytochrome oxidase and succinoxidase in the cytoplasm of the mammalian liver cell. The Journal of Biological Chemistry. 165, 615-629 (1946).
  30. Marques-Fernandez, F., et al. TNFalpha induces survival through the FLIP-L-dependent activation of the MAPK/ERK pathway. Cell Death & Disease. 4, e493 (2013).
  31. Chao, C. C., Hu, S., Ehrlich, L., Peterson, P. K. Interleukin-1 and tumor necrosis factor-alpha synergistically mediate neurotoxicity: involvement of nitric oxide and of N-methyl-D-aspartate receptors. Brain, Behavior, And Immunity. 9, 355-365 (1995).
  32. Downen, M., Amaral, T. D., Hua, L. L., Zhao, M. L., Lee, S. C. Neuronal death in cytokine-activated primary human brain cell culture: role of tumor necrosis factor-alpha. Glia. 28, 114-127 (1999).
  33. Schildberger, A., Rossmanith, E., Weber, V., Falkenhagen, D. Monitoring of endothelial cell activation in experimental sepsis with a two-step cell culture model. Innate Immunity. 16, 278-287 (2010).
  34. Brown, M. R., et al. Nitrogen disruption of synaptoneurosomes: an alternative method to isolate brain mitochondria. Journal Of Neuroscience Methods. 137, 299-303 (2004).
  35. Wong, A., Cortopassi, G. A. High-throughput measurement of mitochondrial membrane potential in a neural cell line using a fluorescence plate reader. Biochemical and Biophysical Research Communications. 298, 750-754 (2002).
  36. Blattner, J. R., He, L., Lemasters, J. J. Screening assays for the mitochondrial permeability transition using a fluorescence multiwell plate reader. Analytical Biochemistry. 295, 220-226 (2001).
  37. Kataoka, M., Fukura, Y., Shinohara, Y., Baba, Y. Analysis of mitochondrial membrane potential in the cells by microchip flow cytometry. Electrophoresis. 26, 3025-3031 (2005).
  38. Del Gaizo Moore, V., Payne, R. M. Transactivator of transcription fusion protein transduction causes membrane inversion. The Journal of Biological Chemistry. 279, 32541-32544 (2004).

Play Video

Cite This Article
Lampl, T., Crum, J. A., Davis, T. A., Milligan, C., Del Gaizo Moore, V. Isolation and Functional Analysis of Mitochondria from Cultured Cells and Mouse Tissue. J. Vis. Exp. (97), e52076, doi:10.3791/52076 (2015).

View Video