Summary

Forbereder Adherent Cells for X-ray fluorescens Imaging ved Kjemisk Fixation

Published: March 12, 2015
doi:

Summary

Here, we present a protocol on how to determine the quantity and distribution of metals in a sample using synchrotron X-ray fluorescence. We focus on adherent cells, and describe the chemical fixation method to prepare this sample. We then describe how to mount and image the sample using synchrotron X-rays.

Abstract

X-ray fluorescence imaging allows us to non-destructively measure the spatial distribution and concentration of multiple elements simultaneously over large or small sample areas. It has been applied in many areas of science, including materials science, geoscience, studying works of cultural heritage, and in chemical biology. In the case of chemical biology, for example, visualizing the metal distributions within cells allows us to study both naturally-occurring metal ions in the cells, as well as exogenously-introduced metals such as drugs and nanoparticles. Due to the fully hydrated nature of nearly all biological samples, cryo-fixation followed by imaging under cryogenic temperature represents the ideal imaging modality currently available. However, under the circumstances that such a combination is not easily accessible or practical, aldehyde based chemical fixation remains useful and sometimes inevitable. This article describes in as much detail as possible in the preparation of adherent mammalian cells by chemical fixation for X-ray fluorescent imaging.

Introduction

Røntgen fluorescens bilde tillater både identiteten og mengden av elementer som er tilstede i en prøve som skal romlig løst. Innfallende røntgenstråler, av en energi valgt til å være større enn elektron-bindingsenergien av den tyngste element av interesse, å overvinne bindingsenergien av det indre skall elektroner til kjernen 1. Dette skaper et "hull" i elektronskallet. Som høyere energi elektronene faller ned i disse hull, blir fluorescerende røntgenstråler utsendes hvis bølgelengde avhenger av energi separasjon av disse orbitaler. Siden avstanden mellom orbitaler energi er karakteristisk for et gitt element, har røntgen-fluorescens-emisjon også karakteristiske bølgelengder, avhengig av elementet. Det er denne emisjon ved en karakteristisk bølgelengde som tillater identifisering av de tilstedeværende elementer. Kalibrering av fluorescens-intensitet tillater kvantifisering av de tilstedeværende elementer.

X-ray fluorescens microscopy (XFM) har blitt stadig mer brukt, delvis på grunn av utviklingen av svært strålende X-ray synkrotron kilder, slik som de på Spring-8 i Japan, den europeiske Radiation Synchrotron Facility (ESRF) i Frankrike, og Advanced Photon Source ( APS) i USA to. Disse kildene gir svært høy intensitet X-ray bjelker. På samme tid, forbedringer i røntgen optikk, slik som soneplate teknologi, tillot fokusering av disse bjelker i sub-mikron flekker, riktignok ganske ineffektivt 3. Med svært høy intensitet bjelker, og med en relativt liten mengde lys som kan være fokusert er tilstrekkelig til å opphisse de endogene metaller i cellene, produsere signal som kan måles med tiden tilgjengelig detektorteknologi. Således studere den kjemiske biologi av metaller i cellen er en anvendelse i særdeleshet som gjør bruk av mange av de nyere utviklinger i denne teknikken 4-10.

Det er mange kritiske faktorer som skal vurderes mens appliggende XFM å undersøke de elementære distribusjon og kvantifisering av dyrkede pattedyrceller eller andre biologiske prøver. For det første må prøven som skal holdes intakt, både konstruksjonsmessig og med hensyn til sin grunnsammensetning, for måling skal være meningsfylt. For det andre må prøven også bli konservert på en eller annen måte slik at den er hardfør til skaden stråling som kan være forårsaket av en fokusert røntgenstråle. En måte at en prøve kan oppfylle begge disse kriteriene på en gang, er å bli hurtig frosset i et glassaktig, amorft, is 11,12. Rapid frysing oppnås ofte gjennom ulike nedfrysing teknikker som stupe frysing eller høytrykks frysing 13-16. Det er generelt akseptert at nedfrysing bevarer totale cellulære arkitektur og kjemiske sammensetninger i biologiske prøver så nær naturlig tilstand som mulig. Kjemisk fiksering, på den annen side, på grunn av den langsomme og selektiv gjennomtrengning av bindemiddel inn i celler og vev som well som senere endringer i membran permeabilitet, kan tillate ulike cellulære ioner spesielt bærerdiffunderbare ioner som Cl, Ca og K for å bli utvasket, tapte eller flyttet, og dermed gjengivelse etterforskning av disse elementene suboptimale 17-19. Til tross for den klare fordelen av kryo-fiksering i løpet av kjemisk fiksering generelt, for adherente pattedyrceller i særdeleshet, har nedfrysing forskjellige begrensninger 20-23. Den mest åpenbare er at ikke alle forskningslaboratorium har lett tilgang til nedfrysing instrumenter. De fleste nåværende høytrykks frysere eller styrter frysere er kostbare og bare eies av en undergruppe av kryo anlegg, som kan være langt fra der cellene inkuberes. Nytten av nedfrysing kan bli omsatt for den ulempe at de for stress plassert på cellene. Således, mens nedfrysing er sikkert den mest grundige måten å bevare prøver for X-ray fluorescens analyse, er det absolutt ikke det mest tilgjengelige for alle forskere under alle omstendigheter;det er heller ikke alltid nødvendig – hvis metallene av interesse er tett bundet til an å fikse makromolekyler, og oppløsningen som utvalget skal avbildes er større enn skadene på ultra-mikrostruktur som kan oppstå under tørking. Oppmerksom på de begrensningene 24, kan kjemisk fiksering og tørking være et passende valg.

Andre faktorer i en vellykket X-ray fluorescens bildebehandling eksperiment inkluderer riktig analyse. X-ray fluorescens bildebehandling er fundamentalt X-ray fluorescens emisjonsspektrometrisk kombinert med raster-skanning for å gi romlig oppløsning. X-ray fluorescens utslipps spektra innsamlet inneholde en kombinasjon av overlappende utslipps topper, bakgrunn og de elastiske og uelastisk spredning toppene i innfallende strålen. Programvare som gjør at de-konvolusjon av disse bidragene, og montering av utslipps topper, har vært en kritisk utvikling av dette feltet 25. Også, utvikling og kommersiell distribution av tynnfilm standarder med kjent sammensetning, som brukes til å kalibrere fluorescens intensitet i forhold til materialmengden, har også vært svært viktig.

Denne protokollen gir en beskrivelse av fremstillingen av adherente celler ved kjemisk fiksering og lufttørking. Et viktig steg i denne prosessen er veksten av cellene på silisiumnitridpartiklene vinduer, som ofte ikke holder seg godt, noe som gjør skånsom skylling i en bestemt måte nøkkelen til suksess.

Protocol

1. Klargjøring av instrumenter, Underlag, Kultur Media og Retter Håndtering av Silisiumnitrid (Si 3 N 4) vinduer. Åpne kapselen lett ved å klemme den ene enden som inneholder vinduet på en slik måte at det ikke presse vinduet i seg selv, mens den roterer den andre enden av kapselen med den andre hånden. Sjekk et par revers, for å fin-tipped pinsett henhold stereo sørge for at det ikke er noen lim, hull eller svinger på spissen. Ellers kan vinduene bli brutt a…

Representative Results

Evnen til X-ray fluorescens bildebehandling for å gi informasjon om biologiske prøver er betinget av disse prøvene være forberedt på en slik måte at de er robuste til stråleskader på tidsskala av eksperimentet, og likevel deres kjemiske og strukturelle trekk er godt bevart. I viser resultatet av en prøve som har blitt fremstilt som beskrevet ovenfor og avbildes, er det mulig å se at det er variasjon i de tilstedeværende elementer – som indikerer at fikseringen bevares disse sidene av cellen (figur 1)….

Discussion

X-ray fluorescens bildebehandling er nyttig i mange felt, blant annet geofag, materialvitenskap, og kjemisk biologi 26-34. Fremskritt innen synkrotron røntgen, og deres fokus, har produsert svært høy intensitet bjelker. Fokusert røntgen bjelker tilstrekkelig til å eksitere de endogene metaller i celler som nå eksisterer, produserer signalet som kan måles med tiden tilgjengelig silisium drift detektorteknologi. Og studere den kjemiske biologi av metaller i cellen er ett program spesielt som gjør bruk a…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

The authors acknowledge Stefan Vogt for his assistance in the fitting of the representative data shown in this paper, and helpful discussions. The authors also acknowledge Chris Jacobsen for his support to Q. J.

Use of the Advanced Photon Source, beamlines 2-ID-E and 8-BM-B, at Argonne National Laboratory was supported by the U. S. Department of Energy, Office of Science, Office of Basic Energy Sciences, under Contract No. DE-AC02-06CH11357.

Materials

silicon nitride windows Silson Ltd/J B J Business Park/Northampton Rd, Northampton NN7 3DW, United Kingdom No part numbers available. Order by size. Membrane size: 1.5 mm x 1.5 mm.  Thickness 500 nm.  Frame size: 5 mm x 5 mm.  Frame thickness: 200 µm Alternate source: SPI Supplies / Structure Probe, Inc.West Chester, PA
reverse tweezers Electron Microscopy Sciences, P.O. Box 550, 1560 Industry Road, Hatfield, PA 19440, Tel: 215-412-8400, Toll Free: 800-523-5874, Fax: 215-412-8450 78520-5X EMS 5X, NC – Ultra Fine Tweezers
rubber grid mat Electron Microscopy Sciences, P.O. Box 550, 1560 Industry Road, Hatfield, PA 19440, Tel: 215-412-8400, Toll Free: 800-523-5874, Fax: 215-412-8450 71170 Round Grid Mat
acetic acid Sigma-Aldrich, 3050 Spruce St., St. Louis, MO 63103, Tel: 800-325-3010, Fax: 800-325-5052 338826 trace metals grade concentrated acetic acid
PIPES buffer Sigma-Aldrich, 3050 Spruce St., St. Louis, MO 63103, Tel: 800-325-3010, Fax: 800-325-5052 P6757 solid PIPES buffer
formaldehyde stock solution Electron Microscopy Sciences, P.O. Box 550, 1560 Industry Road, Hatfield, PA 19440, Tel: 215-412-8400, Toll Free: 800-523-5874, Fax: 215-412-8450 RT 17113 10 x 10mL ampules of 20% aqueous paraformaldehyde

References

  1. Thompson, A. C. . Center for X-ray Optics and Advanced Light Source. , 1-53 (2009).
  2. Helliwell, J. R. Synchrotron radiation facilities. Nat. Struct. Biol. 5, 614-617 (1988).
  3. Lai, B., et al. X-ray Phase Zone Plate Fabricated by Lithographic Techniques. Appl. Phys. Lett. 61 (16), 1877-1879 (1992).
  4. Dodani, S. C., et al. Calcium-dependent copper redistributions in neuronal cells revealed by a fluorescent copper sensor and X-ray fluorescence microscopy. Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 108 (15), 5980-5985 (2011).
  5. Finney, L., et al. X-ray fluorescence microscopy reveals large-scale relocalization and extracellular translocation of cellular copper during angiogenesis. Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 104 (7), 2247-2252 (2007).
  6. Kehr, S., et al. X-ray fluorescence microscopy reveals the role of selenium in spermatogenesis. J. Mol. Biol. 389 (5), 808-818 (2009).
  7. McCormick, N., Velasquez, V., Finney, L., Vogt, S., Kelleher, S. L. X-ray fluorescence microscopy reveals accumulation and secretion of discrete intracellular zinc pools in the lactating mouse mammary gland. PloS One. 5 (6), (2010).
  8. Paunesku, T., Vogt, S., Maser, J., Lai, B., Woloschak, G. X-ray fluorescence microprobe imaging in biology and medicine. J. Cell. Biochem. 99 (6), 1489-1502 (2006).
  9. Twining, B. S., et al. Quantifying trace elements in individual aquatic protist cells with a synchrotron X-ray fluorescence microprobe. Anal. Chem. 75 (15), 3806-3816 (2003).
  10. Chen, S., et al. The Bionanoprobe: hard X-ray fluorescence nanoprobe with cryogenic capabilities. J Synchrotron Radiat. 21, 66-75 (2014).
  11. Medalia, O., et al. Macromolecular architecture in eukaryotic cells visualized by cryoelectron tomography. Science. 298 (5596), 1209-1213 (2002).
  12. Forster, F., Medalia, O., Zauberman, N., Baumeister, W., Fass, D. Retrovirus envelope protein complex structure in situ studied by cryo-electron tomography. Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 102 (13), 4729-4734 (2005).
  13. Muller, M., Moor, H. . Science of Biological Specimen. , 131-138 (1984).
  14. Moor, H., Riehle, U. . Proceedings of the 4th Eur. Reg. Conference Electron. , 33-34 (1968).
  15. Sitte, H. Advanced instrumentation and methodology related to cryoultramicrotomy: a review. Scanning Microsc Suppl. 10, 387-463 (1996).
  16. Studer, D., Graber, W., Al-Amoudi, A., Eggli, P. A new approach for cryofixation by high-pressure freezing. J. Microsc. 203, (Pt. 3, 285-294 (2001).
  17. Matsuyama, S., et al. Elemental mapping of frozen-hydrated cells with cryo-scanning x-ray fluorescence microscopy). X-Ray Spectrom. 39, 260-266 (2010).
  18. Schrag, M., et al. The effect of formalin fixation on the levels of brain transition metals in archived samples. Biometals. 23 (6), 1123-1127 (2010).
  19. James, S. A., et al. Quantitative comparison of preparation methodologies for X-ray fluorescence microscopy of brain tissue. Analytical and Bioanalytical Chemistry. 401 (3), 853-864 (2011).
  20. Al-Amoudi, A., et al. Cryo-electron microscopy of vitreous sections. EMBO J. 23 (18), 3583-3588 (2004).
  21. Bouchet-Marquis, C., Hoenger, A. Cryo-electron tomography on vitrified sections: a critical analysis of benefits and limitations for structural cell biology. Micron. 42 (2), 152-162 (2011).
  22. Bouchet-Marquis, C., Dubochet, J., Fakan, S. Cryoelectron microscopy of vitrified sections: a new challenge for the analysis of functional nuclear architecture. Histochem. Cell Biol. 125 (1-2), 1-2 (2006).
  23. Mesman, R. J. A novel method for high-pressure freezing of adherent cells for frozen hydrated sectioning and CEMOVIS. J. Struct. Biol. 183 (3), 527-530 (2013).
  24. Hackett, M. J., et al. Chemical Alterations to murine brain tissue induced by formalin fixation: implications for biospectroscopic imaging and mapping studies of disease pathogenesis. Analyst. 136 (14), 2941-2952 (2011).
  25. Vogt, S. MAPS: A set of software tools for analysis and visualization of 3D x-ray fluorescence data sets. J Phys IV France. 104, 635-638 (2003).
  26. Vantelon, D., Lanzirotti, A., Scheinost, A. C., Kretzschmar, R. Spatial distribution and speciation of lead around corroding bullets in a shooting range soil studied by micro-X-ray fluorescence and absorption spectroscopy. Environ. Sci. Technol. 39 (13), 4808-4815 (2005).
  27. Robison, G., et al. X-ray fluorescence imaging of the hippocampal formation after manganese exposure. Metallomics : Integrated Biometal Science. 5 (11), 1554-1565 (2013).
  28. Hard Kemner, K. M. X-ray micro(spectro)scopy: a powerful tool for the geomicrobiologists. Geobiology. 6 (3), 270-277 (2008).
  29. Walsh, W. Scientific Testing of Beethoven’s Hair. 17, (2000).
  30. Casadio, F., Rose, V. High-resolution fluorescence mapping of impurities in historical zinc oxide pigments: hard X-ray nanoprobe applications to the paints of Pablo Picasso. Applied Physics A: Materials Science and Processing. 111 (1), 1-8 (2013).
  31. Leonardo, T., et al. Determination of elemental distribution in green micro-algae using synchrotron radiation nano X-ray fluorescence (SR-nXRF) and electron microscopy techniques–subcellular localization and quantitative imaging of silver and cobalt uptake by Coccomyxa actinabiotis. Metallomics : Integrated Biometal Science. 6 (2), 316-329 (2014).
  32. Wang, P., et al. Quantitative determination of metal and metalloid spatial distribution in hydrated and fresh roots of cowpea using synchrotron-based X-ray fluorescence microscopy. Sci. Total Environ. , 463-464 (2013).
  33. Ducic, T., et al. X-ray fluorescence analysis of iron and manganese distribution in primary dopaminergic neurons. J. Neurochem. 124 (2), 250-261 (2013).
  34. Kim, A. M., Vogt, S., O’Halloran, T. V., Woodruff, T. K. Zinc availability regulates exit from meiosis in maturing mammalian oocytes. Nature Chemical Biology. 6 (9), 674-681 (2010).
  35. Ortega, R., Cloetens, P., Deves, G., Carmona, A., Bohic, S. Iron storage within dopamine neurovesicles revealed by chemical nano-imaging. PloS One. 2 (9), (2007).
  36. Bohic, S., et al. Synchrotron hard X-ray microprobe: fluorescence imaging of single cells. Appl. Phys. Lett. 78 (22), 3544-3546 (2001).
  37. Kosior, E., et al. Combined use of hard X-ray phase contrast imaging and X-ray fluorescence microscopy for sub-cellular metal quantification. J. Struct. Biol. 177 (2), 239-247 (2012).
  38. Glesne, D., Vogt, S., Maser, J., Legnini, D., Huberman, E. Regulatory properties and cellular redistribution of zinc during macrophage differentiation of human leukemia cells. J. Struct. Biol. 155 (1), 2-11 (2006).
  39. McRae, R., Lai, B., Vogt, S., Fahrni, C. J. Correlative microXRF and optical immunofluorescence microscopy of adherent cells labeled with ultrasmall gold particles. J. Struct. Biol. 155 (1), 22-29 (2006).
  40. Yang, L., et al. Imaging of the intracellular topography of copper with a fluorescent sensor and by synchrotron x-ray fluorescence microscopy. Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 102 (32), 11179-11184 (2005).
  41. Wagner, D., et al. Elemental analysis of Mycobacterium avium-, Mycobacterium tuberculosis-, and Mycobacterium smegmatis-containing phagosomes indicates pathogen-induced microenvironments within the host cell’s endosomal system. J. Immunol. 174 (3), 1491-1500 (2005).
  42. Harris, H. H., et al. Time-dependent uptake, distribution and biotransformation of chromium(VI) in individual and bulk human lung cells: application of synchrotron radiation techniques. Journal Of Biological Inorganic Chemistry : JBIC : a publication of the Society of Biological Inorganic Chemistry. 10 (2), 105-118 (2005).
  43. Corezzi, S., et al. Synchrotron-based X-ray fluorescence imaging of human cells labeled with CdSe quantum dots. Anal. Biochem. 388 (1), 33-39 (2009).
  44. Marmorato, P., et al. Cellular distribution and degradation of cobalt ferrite nanoparticles in Balb/3T3 mouse fibroblasts. Toxicol. Lett. 207 (2), 128-136 (2011).
  45. Weekley, C. M., et al. distribution, and speciation of selenoamino acids by human cancer cells: X-ray absorption and fluorescence methods. Biochemistry. 50 (10), 1641-1650 (2011).
  46. Yuan, Y., et al. Epidermal growth factor receptor targeted nuclear delivery and high-resolution whole cell X-ray imaging of Fe3O4@TiO2 nanoparticles in cancer cells. ACS Nano. 7 (12), 10502-10517 (2013).
  47. McRae, R., Bagchi, P., Sumalekshmy, S., Fahrni, C. J. In situ imaging of metals in cells and tissues. Chem. Rev. 109 (10), 4780-4827 (2009).
  48. Carter, E. A., et al. Silicon nitride as a versatile growth substrate for microspectroscopic imaging and mapping of individual cells. Molecular Biosystems. 6 (7), 1316-1322 (2010).
check_url/52370?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Finney, L. A., Jin, Q. Preparing Adherent Cells for X-ray Fluorescence Imaging by Chemical Fixation. J. Vis. Exp. (97), e52370, doi:10.3791/52370 (2015).

View Video