Summary

Sedimente Equilibrium av en Small Oligomer dannende Membran Protein: Effekt av Histidin Protonering på pentamer Stabilitet

Published: April 02, 2015
doi:

Summary

Sedimentation equilibrium (SE) can be used to study protein-protein interactions in a physiological environment. This manuscript describes the use of this technique to determine the effect of pH on the stability of a homo-pentamer formed by the small hydrophobic (SH) protein encoded by the human syncytial respiratory virus (hRSV).

Abstract

Analytiske ultrasentrifugering (AUC) kan brukes til å studere interaksjoner mellom reversible makromolekyler over et vidt område av interaksjons sterke og under fysiologiske betingelser. Dette gjør AUC en metode for valg til kvantitativt vurdere støkiometri og termodynamikk av homo- og hetero forening som er forbigående og reversible i biokjemiske prosesser. I modalitet av sedimente likevekt (SE), en balanse mellom diffusjon og sedimentering gir en profil som en funksjon av radiell avstand som er avhengig av en spesifikk assosiasjon modell. Heri er en detaljert SE protokoll beskrevet for å bestemme størrelsen og monomer-monomer krets energi av en liten membranprotein-oligomer ved anvendelse av en analytisk ultrasentrifuge. AUC-ES er etikett-fritt, bare er basert på fysiske prinsipper, og kan brukes på begge vannoppløselige og membranproteiner. Et eksempel er vist på sistnevnte, små hydrofobe (SH) protein i humant respiratorisk syncytialvirus (HRSV), En 65-aminosyre-polypeptid med en enkelt α-heliks transmembran (TM) domene som danner pentamere ionekanaler. NMR-baserte strukturelle data viser at SH-proteinet har to protonerbar His-rester i sitt transmembrane domene som er orientert som vender mot hulrommet i kanalen. SE forsøk har blitt utviklet for å bestemme hvor pH påvirker assosiasjonskonstanten og oligomere størrelsen av SH-protein. Mens pentamer form ble bevart i alle tilfeller ble det assosiasjonskonstanten reduseres ved lav pH. Disse data er i overensstemmelse med en tilsvarende pH-avhengighet observert for SH kanalaktivitet, i samsvar med en lumenal orientering av de to His-restene i SH-protein. Sistnevnte kan oppleve elektrostatisk frastøting og redusert stabilitet oligomer ved lav pH. I sammendrag, er denne fremgangsmåte anvendbar når kvantitativ informasjon om subtile protein-protein forening endringer i fysiologiske betingelser må måles.

Introduction

Analytiske ultrasentrifuge 1-5 er en av de viktigste metodene for å studere interaksjoner mellom makromolekyler under fysiologiske betingelser, være tilgjengelig for både svake og sterke interaksjoner. Metoden er etiketten fritt og bruker lysabsorpsjonen eller forstyrrelser, og til og med fluorescens-optiske systemer kan brukes for å få tilgang til konsentrasjonsområder over flere størrelsesordener 6.

Denne metoden er spesielt nyttig siden de fleste biokjemiske prosesser avhenger av reversible interaksjoner. Støkiometrien og styrken av disse interaksjonene må være kvantitativt karakterisert forstå biologiske prosesser, og en rekke metoder finnes for dette formålet 7, 8. Men forbigående samhandling er vanskelig å studere ni.

Valget av en fremgangsmåte for å karakterisere makromolekylære interaksjoner er avhengig av statisk eller dynamisk natur. I det første tilfellet, sedim sentasjonen hastighet (SV) anvendes, hvor frekvensen av radial transport måles og komplekser blir fraksjonert på grunnlag av forskjeller i flytende masse og form.

I kontrast, dynamiske foreninger som er reversibel på tidsskalaen av eksperimentet kan ikke være fysisk adskilt. I dette tilfelle selv- eller hetero-interaksjoner som fører til ikke-kovalente interaksjoner er i en likevekt som er avhengig av den totale proteinkonsentrasjonen. Disse dynamiske interaksjoner kan studeres ved både sedimente likevekt (SE) og sedimenteringshastighet (SV) 10. Imidlertid er den første fremgangsmåten enklere å utføre, og er beskrevet her. I SE, blir sentrifugering utført ved en tilstrekkelig lav hastighet slik at en likevekt er nådd mellom diffusjon og sedimentering. På dette punkt likevektsprofil av et optisk signal (UV-VIS) som en funksjon av radiell avstand, kan analyseres ved hjelp av forhåndsinnstilte termodynamiske modeller for assosiasjoner 11.

ve_content "> I den foreliggende papir, er en sedimenteringslikevekt studie presentert av den selv-assosiasjon av et viralt membranprotein som danner ionekanaler. På grunn av dets hydrofobisitet, ble forsøket kjørt i nærvær av detergent, og i dette tilfellet tettheten av Løsningsmidlet må være avstemt til den av vaskemiddel. Imidlertid protokollen som er beskrevet ville identisk i tilfelle av en vannløselig protein, bortsett fra at ikke noe løsningsmiddel tetthet tilpasning ville være nødvendig.

Proteinet som brukes er kodet i den menneskelige respiratorisk syncytialvirus (HRSV), en omhyllet pneumovirus i Paramyxoviridae familien som forårsaker nedre luftveissykdom hos spedbarn, eldre og immunkompromitterte populasjoner verden over 12. Opptil 64 millioner rapporterte tilfeller av HRSV infeksjon og 160.000 dødsfall forekommer hvert år.

HRSV-genomet transkriberer 11 proteiner, inkludert tre membranproteiner F, G og små hydrofobe (SH). SH-protein er involverti patogenesen av RSV-infeksjon. RSV mangler SH-genet (RSVΔSH) var levedyktig, forårsaket dannelse av syncytia og vokste i tillegg til villtype (WT) virus 13-16. Imidlertid RSVΔSH virus replikert 10 ganger mindre effektivt enn WT i de øvre luftveier 15, 16. Også RSVΔSH viruset ble svekket i in vivo mus og sjimpanse-modeller 13, 17.

SH-protein er en 64 (RSV undergruppe A) eller 65 (RSV undergruppe B) aminosyrer lang type II integrert membranprotein som akkumulerer hovedsakelig på membraner av Golgi-rommet 18. SH protein har en enkelt spådd en-heliks trans (TM) domene 19 som er svært konservert 20,21. De C- og N-terminale domener extramembrane er orientert lumenally / ekstracellulært og cytoplasmisk, respektivt.

Både syntetisk TM domene (rester 18-43) Og full lengde SH-protein har vist seg å danne homopentamers i en rekke forskjellige vaskemidler. Den homopentameric form er ansvarlig for kanalen aktivitet i planar lipidbilag 22,23. Riktig orientering av TM monomerer i lipidbilaget ble først bestemt bruker nettstedet spesifikk infrarød dichroism 23, som viste His-22 for å være i en lumenal, i nærheten av inter-heliks, orientering. Den samme TM-området orientering ble bekreftet ved NMR-studier som rekonstruert de penta a-spiralformet bunt av full-lengde proteinet i dodecylphosphocholine (DPC) miceller 22. I denne 'micelle' modellen, ble et enkelt a- helisk TM domene flankert N-terminalt av en a-heliks, og C-terminalt med en utvidet b-hårnål. De to protonerbar rester av SH-protein, His-22 og His-51, er plassert i TM-området (lumenally orientert), og ved spissen av extramembrane C-terminale β hårnål (fjernt fra kanalen pore), henholdsvis. I en bicellar Environment imidlertid utvider TM α-heliks opp til His-51, og begge His-rester er tilgjengelige for lumen av kanalen 24. Den kanalstruktur fatter en trakt-lignende arkitektur 22, hvor den smalere område (Ser-29 til Cys-45) 22 er foret med hydrofobe sidekjeder (Ile-32, 36-Ile, Ile-Leu-40 og 44), og Ile-36 definerer det smaleste punktet i kanal lumen. Hans-22 er plassert på den største åpning av trakten, mens His-51 er på spissen av den minste åpning.

I det foreliggende papir, har analytisk sentrifugering i en sedimenteringslikevekt modus blitt brukt for å bestemme om sin protonering påvirker stabiliteten av SH-protein pentamer. I dette tilfelle ble SH-protein solubilisert i C14-betain vaskemiddel, som har blitt brukt tidligere for å vise at SH proteinformer pentamere 22 oligomerer.

Protocol

Denne protokollen er basert på følgende ressurser, som er å bli henvist for flere detaljer og spesielle hensyn 3, 25-28. 1. Tetthet matching av vaskemiddel miceller med 2 H 2 O Merk: Densiteten av bufferløsningen må være tilpasset til tettheten av vaskemiddel miceller. Vanlige tetthets-justerende midler omfatter to H 2 O, H 2 18 O 2 H 2 18 O, glycerol…

Representative Results

Den radiale fordelingsprofil C14SB vaskemiddel miceller i 50 mM Tris, 100 mM NaCl pH 7,3 danner et meget grunt eksponentialuttrykk som kan monteres på en lineær modell (Figur 7A). Skråningen av denne fordelingen er inverst korrelert til D 2 O konsentrasjon (figur 7B). Punktet hvor helningen er null, det vil si, den tilsvarende D 2 O-konsentrasjon, ble funnet å være 32,3%. Se figur 7 nedenfor. <p class=…

Discussion

Dette notatet gir en eksperimentell protokoll for prøveopparbeidelse og analyse av oligomerisering av en liten membran protein i vaskemiddel bruker likevekt sedimentering. Protokollen er beskrevet er like gyldig -og simpler- for løselige proteiner, som tettheten samsvarende trinnet ikke er nødvendig. Faktisk er det system som utgjøres av en blanding av detergent og protein. For å gjennomføre sedimenteringsstudier, må vaskemidlet være usynlig for gravitasjonsfeltet, slik at den ikke bidrar til partikkel flotasjon…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

This work has been funded by the National Research Foundation grant NRF-CRP4-2008-02 (J.T.) and Tier 1 grant RG 51/13.

Materials

Name of Material/ Equipment Company Catalog Number Comments/Description
3-(N,N-dimethylmyristylammonio)propanesulfonate Sigma T0807
Deuterium oxide 99.8% Cambridge Isotope DLM-4-99.8
An-50 Ti Rotor, Analytical, 8-Place Beckman Coulter 363782
An-60 Ti Rotor, Analytical, 4-Place Beckman Coulter 361964
Cell housing Beckman Coulter 334784
12 mm six-channel centerpiece, epon charcoal-filled Beckman Coulter 331376
Window holder Beckman Coulter 305037
Window gasket Beckman Coulter 327021
Window liner Beckman Coulter 362329
Sapphire window Beckman Coulter 307177
Quartz window Beckman Coulter 301730
Screw-ring washer Beckman Coulter 362328
Screw ring Beckman Coulter 301922
Spinkote Beckman Coulter 306812
Torque stand assembly Beckman Coulter 361318
Counterbalance Beckman Coulter 360219
Cell alignment tool Beckman Coulter 362340
SEDNTERP http://bitcwiki.sr.unh.edu/index.php/Main_Page
HeteroAnalysis  http://www.biotech.uconn.edu/auf/?i=aufftp
SEDFIT http://www.analyticalultracentrifugation
.com/sedfit.htm
SEDPHAT http://www.analyticalultracentrifugation
.com/sedphat/default.htm

References

  1. Laue, T. M., Stafford, W. F. Modern applications of analytical ultracentrifugation. Annu. Rev. Biophys. Biomol. Struct. 28, 75-100 (1999).
  2. Lebowitz, J., Lewis, M. S., Schuck, P. Modern analytical ultracentrifugation in protein science: A tutorial review. Protein Sci. 11, 2067-2079 (2002).
  3. Balbo, A., Zhao, H., Brown, P. H., Schuck, P. . Assembly, Loading, and Alignment of an Analytical Ultracentrifuge Sample Cell. , e1530 (2009).
  4. Rivas, G., Stafford, W., Minton, A. P. Characterization of heterologous protein-protein interactions using analytical ultracentrifugation. Methods-a Companion to Methods in Enzymology. 19, 194-212 (1999).
  5. Howlett, G. J., Minton, A. P., Rivas, G. Analytical ultracentrifugation for association and assembly the study of protein. Curr. Opin. Chem. Biol. 10, 430-436 (2006).
  6. MacGregor, I. K., Anderson, A. L., Laue, T. M. Fluorescence detection for the XLI analytical ultracentrifuge. Biophys. Chem. 108, 165-185 (2004).
  7. Phizicky, E. M., Fields, S. Protein-Protein Interactions – Methods for Detection and Analysis. Microbiol. Rev. 59, 94-123 (1995).
  8. Alexandrov, A. A facile method for high-throughput co-expression of protein pairs. Mol. Cell. Proteomics. 3, 934-938 (2004).
  9. Nooren, I. M. A., Thornton, J. M. Structural characterisation and functional significance of transient protein-protein interactions. J. Mol. Biol. 325, 991-1018 (2003).
  10. Ebel, C. Sedimentation velocity to characterize surfactants and solubilized membrane proteins. Methods. 54, 56-66 (2011).
  11. Minton, A. P. Quantitative characterization of reversible macromolecular associations via sedimentation equilibrium: an introduction. Exp. Mol. Med. 32, 1-5 (2000).
  12. Dowell, S. F. Respiratory syncytial virus is an important cause of community-acquired lower respiratory infection among hospitalized adults. J. Infect. Dis. 174, 456-462 (1996).
  13. Bukreyev, A., Whitehead, S. S., Murphy, B. R., Collins, P. L. Recombinant respiratory syncytial virus from which the entire SH gene has been deleted grows efficiently in cell culture and exhibits site-specific attenuation in the respiratory tract of the mouse. J. Virol. 71, 8973-8982 (1997).
  14. Fuentes, S., Tran, K. C., Luthra, P., Teng, M. N., He, B. Function of the respiratory syncytial virus small hydrophobic protein. J. Virol. 81, 8361-8366 (2007).
  15. Jin, H. Recombinant respiratory syncytial viruses with deletions in the NS1, NS2, SH, and M2-2 genes are attenuated in vitro and in vivo. Virology. 273, 210-218 (2000).
  16. Karron, R. A. Respiratory syncytial virus (RSV) SH and G proteins are not essential for viral replication in vitro: clinical evaluation and molecular characterization of a cold-passaged, attenuated RSV subgroup B. Proc. Nat. Acad. Sci. USA. 94, 13961-13966 (1997).
  17. Whitehead, S. S. Recombinant respiratory syncytial virus bearing a deletion of either the NS2 or SH gene is attenuated in chimpanzees. J. Virol. 73, 3438-3442 (1999).
  18. Rixon, H. W. The small hydrophobic (SH) protein accumulates within lipid-raft structures of the Golgi complex during respiratory syncytial virus infection. J. Gen. Virol. 85, 1153-1165 (2004).
  19. Collins, P. L., Mottet, G. Membrane orientation and oligomerization of the small hydrophobic protein of human respiratory syncytial virus. J. Gen. Virol. 74, 1445-1450 (1993).
  20. Collins, P. L., Olmsted, R. A., Johnson, P. R. The small hydrophobic protein of human respiratory syncytial virus: comparison between antigenic subgroups A and B. J. Gen. Virol. 71, 1571-1576 (1990).
  21. Chen, M. D., Vazquez, M., Buonocore, L., Kahn, J. S. Conservation of the respiratory syncytial virus SH gene. J. Infect. Dis. 182, 1228-1233 (2000).
  22. Gan, S. W. The small hydrophobic protein of the human respiratory syncytial virus forms pentameric ion channels. J. Biol. Chem. 287, 24671-24689 (2012).
  23. Gan, S. W., Ng, L., Xin, L., Gong, X., Torres, J. Structure and ion channel activity of the human respiratory syncytial virus (hRSV) small hydrophobic protein transmembrane domain. Protein Sci. 17, 813-820 (2008).
  24. Li, Y. Inhibition of the Human Respiratory Syncytial Virus Small Hydrophobic Protein and Structural variations in a bicelle environment. J. Virol. 88 (22), 11899-914 (2014).
  25. Burgess, N. K., Stanley, A. M., Fleming, K. G. Determination of membrane protein molecular weights and association equilibrium constants using sedimentation equilibrium and sedimentation velocity. Meth. Cell. Biol. 84, 181-211 (2008).
  26. Cole, J. L., Lary, J. W., Moody, T. P., Laue, T. M. Analytical Ultracentrifugation: Sedimentation Velocity and Sedimentation Equilibrium. Meth. Cell. Biol. 84, 143-179 (2008).
  27. Fleming, K. G. Determination of membrane protein molecular weight using sedimentation equilibrium analytical ultracentrifugation. Curr. Protoc. Prot. Sci. 53, 17.12.11-17.12.13 (2008).
  28. . . An-50 Ti and An-60 Ti Analytical Rotor, Cells, and Counterbalance. , (2005).
  29. Mayer, G. Studying membrane proteins in detergent solution by analytical ultracentrifugation: Different methods for density matching. Prog. Colloid Polym. Sci. 113, 176-181 (1999).
  30. Laue, T. Ch. 20.3. Current Protocols in Protein Science. 20, 20.23.21-20.23.13 (2001).
  31. Gan, S. W. The Small Hydrophobic Protein Of The Human Respiratory Syncytial Virus Forms Pentameric Ion Channels. J. Biol. Chem. 287, 24671-24689 (2012).
  32. Bevington, P. R., Robinson, D. K. . Data reduction and error analysis for the physical sciences. 336, (1969).
  33. Schuck, P., Radu, C. G., Ward, E. S. Sedimentation equilibrium analysis of recombinant mouse FcRn with murine IgG1. Molecular Immunology. 36, 1117-1125 (1999).
  34. Gan, S. W., Vararattanavech, A., Nordin, N., Eshaghi, S., Torres, J. A cost-effective method for simultaneous homo-oligomeric size determination and monodispersity conditions for membrane proteins. Anal. Biochem. 416, 100-106 (2011).
  35. Montserret, R. NMR structure and ion channel activity of the p7 protein from hepatitis C virus). J. Biol. Chem. 285, 31446-31461 (2010).
  36. Stouffer, A. L., DeGrado, W. F., Lear, J. D. Analytical Ultracentrifugation Studies of the Influenza M2 Homotetramerization Equilibrium in Detergent Solutions. Progr Colloid Polym Sci. 131, 108-115 (2006).
  37. Sorkin, A., von Zastrow, M. Signal transduction and endocytosis: Close encounters of many kinds. Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 3, 600-614 (2002).
  38. Gan, S. W., Ng, L., Lin, X., Gong, X., Torres, J. Structure and ion channel activity of the human respiratory syncytial virus (hRSV) small hydrophobic protein transmembrane domain. Protein science : a publication of the Protein Society. 17, 813-820 (2008).

Play Video

Cite This Article
Surya, W., Torres, J. Sedimentation Equilibrium of a Small Oligomer-forming Membrane Protein: Effect of Histidine Protonation on Pentameric Stability. J. Vis. Exp. (98), e52404, doi:10.3791/52404 (2015).

View Video