Sedimentation equilibrium (SE) can be used to study protein-protein interactions in a physiological environment. This manuscript describes the use of this technique to determine the effect of pH on the stability of a homo-pentamer formed by the small hydrophobic (SH) protein encoded by the human syncytial respiratory virus (hRSV).
Analytiske ultrasentrifugering (AUC) kan brukes til å studere interaksjoner mellom reversible makromolekyler over et vidt område av interaksjons sterke og under fysiologiske betingelser. Dette gjør AUC en metode for valg til kvantitativt vurdere støkiometri og termodynamikk av homo- og hetero forening som er forbigående og reversible i biokjemiske prosesser. I modalitet av sedimente likevekt (SE), en balanse mellom diffusjon og sedimentering gir en profil som en funksjon av radiell avstand som er avhengig av en spesifikk assosiasjon modell. Heri er en detaljert SE protokoll beskrevet for å bestemme størrelsen og monomer-monomer krets energi av en liten membranprotein-oligomer ved anvendelse av en analytisk ultrasentrifuge. AUC-ES er etikett-fritt, bare er basert på fysiske prinsipper, og kan brukes på begge vannoppløselige og membranproteiner. Et eksempel er vist på sistnevnte, små hydrofobe (SH) protein i humant respiratorisk syncytialvirus (HRSV), En 65-aminosyre-polypeptid med en enkelt α-heliks transmembran (TM) domene som danner pentamere ionekanaler. NMR-baserte strukturelle data viser at SH-proteinet har to protonerbar His-rester i sitt transmembrane domene som er orientert som vender mot hulrommet i kanalen. SE forsøk har blitt utviklet for å bestemme hvor pH påvirker assosiasjonskonstanten og oligomere størrelsen av SH-protein. Mens pentamer form ble bevart i alle tilfeller ble det assosiasjonskonstanten reduseres ved lav pH. Disse data er i overensstemmelse med en tilsvarende pH-avhengighet observert for SH kanalaktivitet, i samsvar med en lumenal orientering av de to His-restene i SH-protein. Sistnevnte kan oppleve elektrostatisk frastøting og redusert stabilitet oligomer ved lav pH. I sammendrag, er denne fremgangsmåte anvendbar når kvantitativ informasjon om subtile protein-protein forening endringer i fysiologiske betingelser må måles.
Analytiske ultrasentrifuge 1-5 er en av de viktigste metodene for å studere interaksjoner mellom makromolekyler under fysiologiske betingelser, være tilgjengelig for både svake og sterke interaksjoner. Metoden er etiketten fritt og bruker lysabsorpsjonen eller forstyrrelser, og til og med fluorescens-optiske systemer kan brukes for å få tilgang til konsentrasjonsområder over flere størrelsesordener 6.
Denne metoden er spesielt nyttig siden de fleste biokjemiske prosesser avhenger av reversible interaksjoner. Støkiometrien og styrken av disse interaksjonene må være kvantitativt karakterisert forstå biologiske prosesser, og en rekke metoder finnes for dette formålet 7, 8. Men forbigående samhandling er vanskelig å studere ni.
Valget av en fremgangsmåte for å karakterisere makromolekylære interaksjoner er avhengig av statisk eller dynamisk natur. I det første tilfellet, sedim sentasjonen hastighet (SV) anvendes, hvor frekvensen av radial transport måles og komplekser blir fraksjonert på grunnlag av forskjeller i flytende masse og form.
I kontrast, dynamiske foreninger som er reversibel på tidsskalaen av eksperimentet kan ikke være fysisk adskilt. I dette tilfelle selv- eller hetero-interaksjoner som fører til ikke-kovalente interaksjoner er i en likevekt som er avhengig av den totale proteinkonsentrasjonen. Disse dynamiske interaksjoner kan studeres ved både sedimente likevekt (SE) og sedimenteringshastighet (SV) 10. Imidlertid er den første fremgangsmåten enklere å utføre, og er beskrevet her. I SE, blir sentrifugering utført ved en tilstrekkelig lav hastighet slik at en likevekt er nådd mellom diffusjon og sedimentering. På dette punkt likevektsprofil av et optisk signal (UV-VIS) som en funksjon av radiell avstand, kan analyseres ved hjelp av forhåndsinnstilte termodynamiske modeller for assosiasjoner 11.
ve_content "> I den foreliggende papir, er en sedimenteringslikevekt studie presentert av den selv-assosiasjon av et viralt membranprotein som danner ionekanaler. På grunn av dets hydrofobisitet, ble forsøket kjørt i nærvær av detergent, og i dette tilfellet tettheten av Løsningsmidlet må være avstemt til den av vaskemiddel. Imidlertid protokollen som er beskrevet ville identisk i tilfelle av en vannløselig protein, bortsett fra at ikke noe løsningsmiddel tetthet tilpasning ville være nødvendig.Proteinet som brukes er kodet i den menneskelige respiratorisk syncytialvirus (HRSV), en omhyllet pneumovirus i Paramyxoviridae familien som forårsaker nedre luftveissykdom hos spedbarn, eldre og immunkompromitterte populasjoner verden over 12. Opptil 64 millioner rapporterte tilfeller av HRSV infeksjon og 160.000 dødsfall forekommer hvert år.
HRSV-genomet transkriberer 11 proteiner, inkludert tre membranproteiner F, G og små hydrofobe (SH). SH-protein er involverti patogenesen av RSV-infeksjon. RSV mangler SH-genet (RSVΔSH) var levedyktig, forårsaket dannelse av syncytia og vokste i tillegg til villtype (WT) virus 13-16. Imidlertid RSVΔSH virus replikert 10 ganger mindre effektivt enn WT i de øvre luftveier 15, 16. Også RSVΔSH viruset ble svekket i in vivo mus og sjimpanse-modeller 13, 17.
SH-protein er en 64 (RSV undergruppe A) eller 65 (RSV undergruppe B) aminosyrer lang type II integrert membranprotein som akkumulerer hovedsakelig på membraner av Golgi-rommet 18. SH protein har en enkelt spådd en-heliks trans (TM) domene 19 som er svært konservert 20,21. De C- og N-terminale domener extramembrane er orientert lumenally / ekstracellulært og cytoplasmisk, respektivt.
Både syntetisk TM domene (rester 18-43) Og full lengde SH-protein har vist seg å danne homopentamers i en rekke forskjellige vaskemidler. Den homopentameric form er ansvarlig for kanalen aktivitet i planar lipidbilag 22,23. Riktig orientering av TM monomerer i lipidbilaget ble først bestemt bruker nettstedet spesifikk infrarød dichroism 23, som viste His-22 for å være i en lumenal, i nærheten av inter-heliks, orientering. Den samme TM-området orientering ble bekreftet ved NMR-studier som rekonstruert de penta a-spiralformet bunt av full-lengde proteinet i dodecylphosphocholine (DPC) miceller 22. I denne 'micelle' modellen, ble et enkelt a- helisk TM domene flankert N-terminalt av en a-heliks, og C-terminalt med en utvidet b-hårnål. De to protonerbar rester av SH-protein, His-22 og His-51, er plassert i TM-området (lumenally orientert), og ved spissen av extramembrane C-terminale β hårnål (fjernt fra kanalen pore), henholdsvis. I en bicellar Environment imidlertid utvider TM α-heliks opp til His-51, og begge His-rester er tilgjengelige for lumen av kanalen 24. Den kanalstruktur fatter en trakt-lignende arkitektur 22, hvor den smalere område (Ser-29 til Cys-45) 22 er foret med hydrofobe sidekjeder (Ile-32, 36-Ile, Ile-Leu-40 og 44), og Ile-36 definerer det smaleste punktet i kanal lumen. Hans-22 er plassert på den største åpning av trakten, mens His-51 er på spissen av den minste åpning.
I det foreliggende papir, har analytisk sentrifugering i en sedimenteringslikevekt modus blitt brukt for å bestemme om sin protonering påvirker stabiliteten av SH-protein pentamer. I dette tilfelle ble SH-protein solubilisert i C14-betain vaskemiddel, som har blitt brukt tidligere for å vise at SH proteinformer pentamere 22 oligomerer.
Dette notatet gir en eksperimentell protokoll for prøveopparbeidelse og analyse av oligomerisering av en liten membran protein i vaskemiddel bruker likevekt sedimentering. Protokollen er beskrevet er like gyldig -og simpler- for løselige proteiner, som tettheten samsvarende trinnet ikke er nødvendig. Faktisk er det system som utgjøres av en blanding av detergent og protein. For å gjennomføre sedimenteringsstudier, må vaskemidlet være usynlig for gravitasjonsfeltet, slik at den ikke bidrar til partikkel flotasjon…
The authors have nothing to disclose.
This work has been funded by the National Research Foundation grant NRF-CRP4-2008-02 (J.T.) and Tier 1 grant RG 51/13.
Name of Material/ Equipment | Company | Catalog Number | Comments/Description |
3-(N,N-dimethylmyristylammonio)propanesulfonate | Sigma | T0807 | |
Deuterium oxide 99.8% | Cambridge Isotope | DLM-4-99.8 | |
An-50 Ti Rotor, Analytical, 8-Place | Beckman Coulter | 363782 | |
An-60 Ti Rotor, Analytical, 4-Place | Beckman Coulter | 361964 | |
Cell housing | Beckman Coulter | 334784 | |
12 mm six-channel centerpiece, epon charcoal-filled | Beckman Coulter | 331376 | |
Window holder | Beckman Coulter | 305037 | |
Window gasket | Beckman Coulter | 327021 | |
Window liner | Beckman Coulter | 362329 | |
Sapphire window | Beckman Coulter | 307177 | |
Quartz window | Beckman Coulter | 301730 | |
Screw-ring washer | Beckman Coulter | 362328 | |
Screw ring | Beckman Coulter | 301922 | |
Spinkote | Beckman Coulter | 306812 | |
Torque stand assembly | Beckman Coulter | 361318 | |
Counterbalance | Beckman Coulter | 360219 | |
Cell alignment tool | Beckman Coulter | 362340 | |
SEDNTERP | http://bitcwiki.sr.unh.edu/index.php/Main_Page | ||
HeteroAnalysis | http://www.biotech.uconn.edu/auf/?i=aufftp | ||
SEDFIT | http://www.analyticalultracentrifugation .com/sedfit.htm |
||
SEDPHAT | http://www.analyticalultracentrifugation .com/sedphat/default.htm |