Summary

Кислород-Глюкоза Лишение и реоксигенации в<em> In Vitro</em> Ишемии Травмы моделью для изучения гематоэнцефалического барьера дисфункции

Published: May 07, 2015
doi:

Summary

Ischemia-Reperfusion (IR) injury is associated with a high rate of morbidity and mortality. The goal of the in vitro model of oxygen-glucose deprivation and reoxygenation (OGD-R) described here is to assess the effects of ischemia reperfusion injury on a variety of cells, particularly in blood-brain barrier (BBB) endothelial cells.

Abstract

Ишемии (ИК) травмы, как известно, в значительной мере способствовать заболеваемости и смертности, связанной с ишемических инсультов. Ишемические нарушения мозгового кровообращения приходится 80% всех инсультов. Распространенной причиной повреждения ИК является быстрое поступление жидкости после проведения острой / хронической окклюзии крови, питательных веществ, кислорода к ткани вызывая образование свободных радикалов.

Ишемический инсульт сопровождается гематоэнцефалический барьер (ГЭБ) дисфункции и вазогенного отека мозга. Конструктивно плотные соединения (ТТ) между эндотелиальными клетками, играют важную роль в поддержании целостности гематоэнцефалического барьера (ГЭБ). ИК травмы рано вторичное повреждение приводит к неспецифической, воспалительной реакции. Окислительный стресс и метаболические следующие воспаления вызывает вторичное повреждение головного мозга в том числе BBB проницаемости и нарушение плотного контакта (TJ) целостности.

Наш протокол представляет в пробирке </ EM> пример кислорода-глюкозы лишения и реоксигенации (OGD-R) на мозг крыс эндотелиальных клеток TJ целостности и формирования стресс волокна. В настоящее время, несколько экспериментальных моделей в естественных условиях, используются для изучения влияния ИК травмы; Однако они имеют ряд ограничений, таких, как технические проблемы при выполнении операций, генные зависимые молекулярные влияния и трудности в изучении механистические отношения. Тем не менее, модели, в пробирке, может помочь в преодолении многих из этих ограничений. Представлены протокол может быть использован для изучения различных молекулярных механизмов и механических связей для обеспечения потенциальных терапевтических стратегий. Тем не менее, результаты исследований в пробирке, может отличаться от стандартных в естественных исследований и их следует интерпретировать с осторожностью.

Introduction

Ишемии (ИК) травма оказалась частой причиной различных изнурительных осложнений и смертей, связанных с инсультом, инфарктом миокарда, травмы, заболевания периферических сосудов и черепно-мозговой травмой 1,2. ИК травмы в мозговых сосудах в начале вторичное повреждение приводит к воспалению и отеку 3. Одним из серьезных осложнений, которые происходит в результате окислительной и метаболического стресса следующей воспаления является потеря гомеостаза баланса, ведущего к образованию свободных радикалов, изменения в гематоэнцефалический барьер (ГЭБ) плотные соединения (ТТ) и микрососудов проницаемости 4,5.

В настоящее время в естественных условиях модели, используемые для изучения последствий ИК травмы на BBB включают окклюзии средней мозговой артерии (MCAO), микроэмболии и трансгенных или нокаутом животных. Тем не менее, каждый из них имеет свои недостатки и ограничения, как описано в Hossmann 6. МСАО модель используется для изучения эфТС окислительно-восстановительного стресса, изменения в соединительных коммуникаций BBB и взаимодействия между мозгом и иммунных клеток. Тем не менее, они представляют различные технические проблемы, такие как необходимость точных микрохирургических операций и трудности в нем. Микроэмболии мгновенно разрушает BBB, а использование трансгенных животных или нокаут, чтобы изучить церебральной ишемии может иметь проблемы, как ген-зависимым молекулярных воздействий на формирование инфаркта, изменения в сосудистой анатомии и различных масс тела 6. Следовательно, модели в пробирке ишемии нашли повышенный интерес в последние времена в основном за счет их применимости в выполнении механистические исследования на наркотики. Тем не менее, результаты исследований в пробирке не может в полной мере представляют собой исследование в естественных условиях и должны быть интерпретированы с осторожностью 6.

Противодействующий эффект низких концентраций кислорода на поверхности эндотелиальных клеток монослоя и микрососудов проницаемости былиизучены Огава 7. Крыса мозг микрососудистых эндотелиальных клеток (RBMECs) были использованы для разработки в пробирке BBB. Лишение кислород глюкозы и реоксигенации техника (OGD-R), представленные в этом протоколе была адаптирована из исследований Зулуэта др и Чжу и др 8,9. Мы разоблачили эндотелиальных клеток головного мозга в OGD-R, помещая их в гипоксия / аноксии камеру, содержащую 0% O 2, 5% СО 2 и 95% N 2. Клетки позже оценивали изменения в целостности и стресс формирования волокна с использованием иммунофлюоресценции TJ локализации и родамин фаллоидином маркировку соответственно. Иммунофлуоресценции окрашивание блокатора малой зоны 1 (ZO-1) выполняется для определения целостности TJ, а ZO-1 является важным леса мембраной т белка. Родамин фаллоидином маркировка определяет нитчатые актин (F-актина) в клеточной цитоскелета и четкое указание актина формирования стресс волокна в эндотелиальных клетках.

<р = класс "jove_content"> Цель данного метода является дать представление разработки OGD-R в качестве экстракорпорального ИК модели для изучения ВВВ эндотелиальных клеток целостность TJ и образование Ф-актина стресс волокна. Результаты будут предоставлять информацию о судьбе TJ белка, ZO-1 и формирование стресс волокна следующие OGD-R. Понимание этих отношений даст возможность, чтобы определить основные молекулярные механизмы, которые запускаются следующие OGD-R и развивать потенциальные терапевтические стратегии по повышению нарушения ВВВ после лечения OGD-R.

Protocol

1. Посев эндотелиальных клеток Получить первичных культур RBMEC-х от взрослых Спрэг Dawley крыс (или получить их в коммерческих целях). Выращивают RBMECs в 100 см фибронектина (50 мкг / мл) покрытые чашки Петри с использованием мозга крысы среду роста эндотелиальных клеток. Изменение сре?…

Representative Results

Клетки, культивируемые на фибронектина с предварительно нанесенным покрытием камеры слайдов Nunc II подвергались OGD-R, помещая в Biospherix ProOx модели 110 камеры. После подвергая клетки к OGD-R, они были обработаны для ZO-1 соединительного окрашивания с использованием техники иммунофлюоресценции, к?…

Discussion

OGD-R как модель в пробирке для ишемии реперфузии была хорошо известна для изучения нейроны 10,11. Есть также исследования, показывающие влияние OGD на эндотелиальных клетках головного мозга и изменения в проницаемости и целостности TJ 9. Тем не менее, наше исследование показ?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Мы признаем, Скотт и Белый больницы программу исследовательских грантов для финансовой поддержки и Техас & M Научного центра здоровья Медицинского колледжа интегрированной лаборатории изображений для использования конфокальной лазерной микроскопии. Мы признаем, г-н Глен Крайер за помощь в рукописи редактирования.

Materials

Name of Material/ Equipment Company Catalog Number Comments/Description
Proox model 110 Biospherix Model 110
DMEM, no glucose Gibco, Life technologies 11966-025
Rhodamine Phalloidin Life technologies R415
ZO-1 Rabbit Polyclonal Antibody Life technologies 617300
Nunc Lab Tek II-CC 8 well sterile, glass slides  Thermo scientific 177402
FITC-tagged anti-rabbit secondary antibody  Santa cruz sc-2090
DPBS 1X Thermo scientific SH 30028.03 Any other PBS available can be used

References

  1. Eltzschig, H. K., Eckle, T. Ischemia and reperfusion–from mechanism to translation. Nat Med. 17 (11), 1391-1401 (2011).
  2. Kalogeris, T., Baines, C. P., Krenz, M., Korthuis, R. J. Cell biology of ischemia/reperfusion injury. Int Rev Cell Mol Biol. 298, 229-317 (2012).
  3. Yang, X., et al. Lycium barbarum polysaccharides reduce intestinal ischemia/reperfusion injuries in rats. Chem Biol Interact. 204 (3), 166-172 (2013).
  4. Kaur, C., Ling, E. A. Blood brain barrier in hypoxic-ischemic conditions. Curr Neurovasc Res. 5 (1), 71-81 (2008).
  5. Khatri, R., McKinney, A. M., Swenson, B., Janardhan, V. Blood-brain barrier, reperfusion injury, and hemorrhagic transformation in acute ischemic stroke. Neurology. 79 (13), S52-S57 (2012).
  6. Hossmann, K. A. Experimental models for the investigation of brain ischemia. Cardiovasc Res. 39, 106-120 (1998).
  7. Ogawa, S., Gerlach, H., Esposito, C., Pasagian-Macaulay, A., Brett, J., Stern, D. Hypoxia modulates the barrier and coagulant function of cultured bovineendothelium. Increased monolayer permeability and induction of procoagulant properties. J Clin Invest. 85 (4), 1090-108 (1990).
  8. Zulueta, J. J., Sawhney, R., Yu, F. S., Cote, C. C., Hassoun, P. M. Intracellular generation of reactive oxygen species in endothelial cellsexposed to anoxia-reoxygenation. Am J Physiol. 272 (5 Pt 1), L897-L902 (1997).
  9. Zhu, H., et al. Baicalin reduces the permeability of the blood-brain barrier during hypoxia in vitro by increasing the expression of tight junction proteins in brain microvascular endothelial cells. J Ethnopharmacol. 141 (2), 714-720 (2012).
  10. Abramov, A. Y., Scorziello, A., Duchen, M. R. Three distinct mechanisms generate oxygen free radicals in neurons and contribute to cell death during anoxia and reoxygenation. J Neurosci. 27 (5), 1129-1138 (2007).
  11. Gundimeda, U., et al. Green tea polyphenols precondition against cell death induced by oxygen-glucose deprivation via stimulation of laminin receptor, generation of reactive oxygen species, and activation of protein kinase Cepsilon. J Biol Chem. 287 (41), 34694-34708 (2012).
  12. Mehta, S. L., Manhas, N., Raghubir, R. Molecular targets in cerebral ischemia for developing novel therapeutics. Brain Res Rev. 54 (1), 34-66 (2007).
  13. Alluri, H., et al. Reactive Oxygen Species-Caspase-3 Relationship in Mediating Blood-Brain Barrier Endothelial Cell Hyperpermeability Following Oxygen-Glucose Deprivation and Reoxygenation. Microcirculation. 21 (2), 187-195 (1111).
  14. Sun, H., Breslin, J. W., Zhu, J., Yuan, S. Y., Wu, M. H. Rho and ROCK signaling in VEGF-induced microvascular endothelial hyperpermeability. Microcirculation. 13 (3), 237-247 (2006).
  15. Doggett, T. M., Breslin, J. W. Study of the actin cytoskeleton in live endothelial cells expressing GFP actin. J Vis Exp. (57), (2011).
check_url/52699?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Alluri, H., Anasooya Shaji, C., Davis, M. L., Tharakan, B. Oxygen-Glucose Deprivation and Reoxygenation as an In Vitro Ischemia-Reperfusion Injury Model for Studying Blood-Brain Barrier Dysfunction. J. Vis. Exp. (99), e52699, doi:10.3791/52699 (2015).

View Video