Summary

Etablering og karakterisering av UTI og CAUTI i en musemodell

Published: June 23, 2015
doi:

Summary

The ability to model urinary tract infections (UTI) is crucial in order to be able to understand bacterial pathogenesis and spawn the development of novel therapeutics. This work’s goal is to demonstrate mouse models of experimental UTI and catheter associated UTI that recapitulate and predict findings seen in humans.

Abstract

Urinveisinfeksjoner (UVI) er svært utbredt, en viktig årsak til sykelighet og blir stadig mer motstandsdyktige mot behandling med antibiotika. Kvinner blir uforholdsmessig rammet av UTI: 50% av alle kvinner vil ha en UTI i sin levetid. I tillegg 20-40% av disse kvinnene som har en innledende UTI vil lide et tilbakefall med noen som lider hyppige tilbakefall med alvorlig forverret livskvalitet, smerte og ubehag, forstyrrelse av daglige aktiviteter, økt helsekostnader, og få behandlingstilbud andre enn langsiktige antibiotikaprofylakse. Uropathogenic Escherichia coli (UPEC) er den primære utløsende agent for samfunnet ervervet UTI. Kateterassosierte UVI (CAUTI) er den vanligste sykehus ervervet infeksjon sto for en million hendelsene i USA årlig og dramatiske helseutgifter. Mens UPEC er også den primære årsaken til CAUTI, andre forårsaker agenter er av økt betydning inkludert Enterococcusfaecalis. Her bruker vi to veletablerte musemodeller som rekapitulere mange av de kliniske kjennetegn ved disse menneskelige sykdommer. For UTI, rekapitulerer en C3H / høne modell mange av funksjonene i UPEC virulens observert hos mennesker, inkludert vertsresponser, IBC dannelse og fila. For CAUTI, en modell ved bruk av C57BL / 6-mus, som beholder kateter blære implantater, har vist seg å være utsatt for E. faecalis blære infeksjon. Disse representative modeller blir brukt til å få slående ny innsikt i patogenesen av UTI sykdom, som fører til utvikling av nye behandlingsformer og ledelse eller forebyggingsstrategier.

Introduction

Urinveisinfeksjoner (UVI) er en av de vanligste bakterielle infeksjoner og kan deles inn i to kategorier basert på mekanismen av oppkjøpet, samfunnet og nosokomial ervervet UTI. Community-ervervet UVI oppstår ofte hos ellers friske kvinner og studier har vist at omtrent 50% av kvinnene vil ha minst en UTI i livet en. I tillegg er gjentakelse et stort problem. En kvinne som har en innledende akutt infeksjon har en 25-40% sjanse for å ha en annen infeksjon i løpet av seks måneder til tross for riktig antibiotikabehandling og mange kvinner fortsetter å ha hyppige tilbakefall to. Bakteriene som forårsaker disse infeksjonene blir også stadig mer antibiotikaresistente ytterligere konfunderende behandlingsprotokoller 3-6. UTI påvirker millioner av mennesker hvert år koster cirka 2,5 milliarder dollar i helsevesenet relaterte utgifter i USA, understreker virkningen og utbredelsen av sykdommen1,7 .Nosocomial kjøpt UVI er i hovedsak knyttet til tilstedeværelse av fremmedlegemer som inneliggende kateter. Kateterassosierte UVI (CAUTI) er fortsatt den vanligste nosokomiale kjøpt UTI, sto for ~ 70-80% av slike infeksjoner 8. Videre er CAUTI assosiert med økt sykelighet og dødelighet, og det er den mest vanlige årsaken til sekundære blodet infeksjoner 9.

UPEC forbundet ervervet UVI er antatt å være forårsaket av innføringen av bakterier i blæren fra reservoarer i mage-tarmkanalen via mekanisk manipulasjon under samleie, dårlig hygiene eller andre mikrobielle populasjonsdynamikk mellom ulike verts nisjer 10. Når du er inne i blæren, UPEC ansette mange virulens faktorer, blant annet kapsel, jern oppkjøp systemer, giftstoffer, en virulensplasmid, tRNAs, patogenitet øyer og koloniserings faktorer som har vist seg å spille en rolle i patogenesen <sup> 11-14. Kritisk til etablering av UPEC kolonisering, UPEC også kode flere typer lim anstand innlede pathway (CUP) pili som gjenkjenner reseptorer med stereo spesifisitet 15. Type 1 pili, tippet med FimH adhesin, uttrykkes ved UPEC og binder mannosylated uroplakins 16 og α-1, 3 β-integriner 17, som uttrykkes på den luminale overflaten av både humane og museblærer 18. Disse FimH-mediert interaksjon lette bakteriell kolonisering og invasjon av den overfladiske epitelceller 19,20. Når du er inne i cellen, kan UPEC flykte inn i cytoplasma der en enkelt bakterie kan raskt dele for å danne en intracellulær bakterie samfunnet (IBC), som ved modning, kan inneholde ~ 10 4 bakterier 21. IBC formasjonen har blitt vist i minst seks forskjellige musestammer, C3H / HeN, C3H / HeJ, C57BL / 6, CBA, FVB / NJ og BALB / c, og med en rekke forskjellige UPEC stammer og andre Enterobacteriaceae 22-24. Men tidsmessige og romlige forskjeller i IBC formasjon kan variere avhengig av mus bakgrunnen og den infiserende UPEC belastning. I C3H / høne mus infisert med proto UPEC stammer UTI89 eller CFT073, IBC dannelse kan visualiseres som små biomasser av bakterier så tidlig som 3 HPI (timer etter infeksjon). Dette fellesskapet fortsetter å ekspandere og når en "midtpunkt" av utvikling ca. 6 HPI når stavformede bakterier opptar en stor andel av det cytoplasmatiske plass av terminalt differensierte overfladiske paraplyceller Disse tidlige IBC form i en forholdsvis synkron måte med flertallet viser tilsvarende dimensjoner og morfologi. ~ 8 HPI bakterier i IBC endring fra en basiller til kokker morfologi. IBCer er forbigående. Dermed IBC modning 12-18 HPI fører fortsatte utvidelsen av den bakterielle befolkningen, fulgt av sin fila og spredning ut av cellen with påfølgende spredning til nabocellene 23. Dermed kan IBC nisje for rask bakterievekst i et miljø beskyttet mot vertsimmunresponser og antibiotika 25. De forskjellige stadier av infeksjonen UPEC som er sett i mus er også observert hos mennesker, slik som IBCer og filamentering, som støtter musemodell for UTI som en gunstig verktøy som kan brukes til å modellere UTI hos mennesker 22,26-28.

Mens et flertall av kvinner opplever en UTI i livet, kan utfallet av disse infeksjonene varierer fra akutt selvbegrensende infeksjon uten tilbakefall, hyppig tilbakevendende blærekatarr. Videre har studier vist en sterk familiær forekomst av UVI, noe som tyder på en genetisk komponent bidrar til UTI mottakelighet 29. Vi har funnet ut at de ulike uti resultater sett i klinikker kan speiles av de ulike utfall av eksperimentell UPEC smitte blant innavlede musestammer 30. For eksempel C3H / høne, CBA, DBA, og C3H / HeOuJ mus er utsatt, i en infeksiøs dose-avhengig måte, for langvarige, kronisk cystitt, karakterisert ved vedvarende høy titer bakterier (> 10 4 kolonidannende enheter (CFU) / ml), høy titer bakterielle blære byrder på offer> 4 uker etter infeksjon (WPI), kronisk betennelse, og uroteliale nekrose. Disse musene viser også forhøyede serumnivåer av IL-6, G-CSF, KC, og IL-5 i de første 24 HPI som tjener som biomarkører for utvikling av kronisk cystitt. Dette kan nøyaktig representerer det naturlige UTI hos noen kvinner, som placebo studier har vist at en stor andel av kvinner opplever UTI vil beholde høye nivåer av bakterier i urinen i flere uker etter at de første symptomene på blærekatarr hvis ikke får antibiotikabehandling 31 , 32. Videre bruker C3H / høne mus, fant vi ut at en historie med kronisk cystitt er en betydelig risikofaktor for senere alvorlige tilbakevendende infeksjoner. Residiverende UVI er den mest sibetydelige materielle klinisk manifestasjon av UTI og C3H / høne mus er foreløpig den eneste studerte modell som sammenfatter en økt disposisjon etter tidligere eksponering. En annen UTI utfallet rekapitulert i C57Bl / 6 mus hvor akutt UPEC infeksjon er selvbegrensende, med oppløsning på blærebetennelse og bakteriuri innen ca en uke. Interessant i denne modellen, UPEC lett danne hvil intracellulære reservoarer i blæren vev som UPEC er i stand til dukker opp fra en sovende tilstand å gjenoppta en aktiv UTI en mulig forklaring på en mekanisme for samme belastning residiverende UVI hos mennesker 33, 34.

I tillegg til genetiske påvirkninger på UTI følsomhet, innføring av et kateter inn i blæren i stor grad øker sannsynligheten for å ha en infeksjon så vel som å øke omfanget av bakterier i stand til å forårsake en infeksjon. Det har blitt demonstrert at human urin kateterisering forårsaker histologiske ogimmunologiske forandringer i blæren på grunn av mekanisk påkjenning som resulterer i en robust inflammatorisk respons, peeling, ødem i lamina propria og submucusa, urothelial tynning, og mucosal lesjon av urothelium og nyre 35,36. I tillegg gir kateteret en overflate for bakteriell feste for derved å skape et miljø som benyttes av flere arter for å forårsake CAUTI. Mens UPEC er fortsatt en stor bidragsyter, står Enterococcus faecalis for 15% av disse CAUTI 37. E. faecalis blir stadig mer motstandsdyktige mot antibiotika med vancomycin motstand veksten, utgjør en alvorlig helseproblem 38. E. faecalis besitter mange virulensfaktorer inkludert toksiner og adhesiner som er nødvendige for feste til både kateteret og epitelet 38. Under urin kateterisering, verten er utsatt for mikrobiell adhesjon, formering og spredning i urinveiene 39,40. E. faecalis danner en biofilm på kateteret som en del av en mekanisme for å vedvare i blæren og spre seg til nyrene, som er gjengitt i en muse CAUTI modell 41. Nylig har det vist seg i løpet av urin kateterisering, er fibrinogen (Fg) slippes inn i blæren som del av den inflammatoriske respons. Fg akkumuleres i blæren, frakker kateteret og er avgjørende for E. faecalis biofilmdannelse, fungerer som et vedlegg stillaset. I en C57BL / 6 mus modell av CAUTI, oppdaget vi at E. faecalis biofilmdannelse på kateteret, og således utholdenhet i blæren, var avhengig av EBP pilus, spesielt dens spiss adhesin EbpA. Vi har funnet at det N-terminale domenet av EbpA spesifikt bindes til fg belegning av kateteret. I tillegg ble det funnet at E. faecalis benytter Fg som metabolitt kilden under infeksjon, og dermed forsterke biofilmdannelse 42.

Musemodeller har vist seg kritisk til understanding samt forutsi kliniske manifestasjoner av UTI og CAUTI 41. I denne artikkelen viser vi inoculum utarbeidelse av blærekatarr UPEC isolere UTI89 og transuretral inokulering av C3H / høne mus. I tillegg viser vi en protokoll for kateterinnleggelse i C57BL / 6 mus og inokulasjon av E. faecalis OG1RF belastning. Begge disse teknikker fører til konsekvent og pålitelig UTI eller CAUTI i mus. Vi viser også teknikker som brukes til å observere IBC formasjon under akutt cystitt og urinoppsamling for analyse av kroniske eller tilbakevendende cystitt. C3H / høne mus har blitt brukt til å studere aspekter av UPEC patogenesen inkludert innledende bakteriell invasjon, IBC formasjon, fila og utvikling av kronisk blærekatarr 23,33,43. Disse virulens parametrene har også blitt studert i en rekke andre muse bakgrunn 22,33. For CAUTI, tillater C57BL / 6-modellen for fremmedlegemer implantering inn i blæren med påfølgende bakterie colonization, som kan opprettholdes i 7 dager etter infeksjon 41. Disse modellene har vært nyttig for å vurdere bakteriell virulensmekanismer, verts svar på UTI og mekanismer for å styrte verts responser, hvorav mye har blitt videre rekapitulert eller observert i kliniske menneskelige befolkninger.

Protocol

Etikk uttalelse: The Washington University Animal Studies Komiteen godkjente alle muse infeksjoner og rutiner som en del av protokollnummer 20120216, som ble godkjent 01/11/2013 og utløper 01/11/2016. Samlet seg av dyrene var i samsvar med guiden for omsorg og bruk av forsøksdyr fra National Research Council og USDA Animal Care Guide Resource. Eutanasi prosedyrer er i samsvar med de "AVMA retningslinjer for Avliving av dyr 2013 edition." 1. UPEC UTI Protocol, Inoculation Needle For…

Representative Results

De intravesikal modeller av ukomplisert og kateter forbundet UTI tilby fleksible plattformer for å belyse de molekylære mekanismene for bakteriell patogenesen, virkningen av disse sykdommene på verten vev, samt utvikling og testing av nye tilnærminger for å håndtere disse vanlige og kostbare infeksjoner. Avhengig av musestamme og patogen, kan intravesikal inokulering brukes til å studere vert-patogen interaksjoner for å belyse faktorene som er nødvendige for å igangsette eller modulere spiss (figur 1</…

Discussion

Ukomplisert ervervet UTI er en vanlig og kostbare infeksjon regnskap for flere millioner primærhelsetjenesten besøk hvert år 46. I tillegg Cautis er et vanlig helse ervervet infeksjon som har blitt svært kostbart å helsepersonell som Centers for Medicare og Medicaid Services ikke lenger refunderer leverandører for den ekstra kostnaden for behandling som følge av sykehuset ervervet CAUTI 45. De musemodeller av UTI, både ukomplisert cystitt og CAUTI, som er beskrevet i protokollene tilveie uv…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Midler til dette arbeidet ble gitt av ORWH SCOR P50 DK064540, RO1 DK 051 406, RO1 AI 108749-01, F32 DK 101 171, og F32 DK 104516-01.

Materials

Material for catheter and needle preparation:
30ga needles BD Precision Glide 305106 30Gx ½ (0.3 mm x 13mm)
PE10 polyethylene tubing BD 427400 Inside diameter -0.011 in (0.28 mm); outside diameter – 0.024 in (0.61 mm)
RenaSIL 025 platinum cured silicon tubing Braintree Scientific, Inc SIL 025 inside diameter-0.012 x outside diameter 0.025, 25 ft coil
Material for infections:
Isoflourane – Isothesia Butler Schein 29405 250 mL
Clear Glass Straight-Sided Jar Kimble Chase 5413289V 21
Stainless Steel Tea Infuser Schefs-Amazon Premium Loose Leaf Tea Infuser By Schefs – Stainless Steel – Large Capacity –
Non-sterile cotton balls Fisherbrand 22-456-880
50 ml Falcon tubes VWR 89039-660
Isotec 3 -vaporizer Ohmeda 1224478
Ear punch Fisher Scientific 13-812-201 (when necessary)
Betadine solution Betadine solution 10% Povidie-iodine topical solution
Q-tips Fisher Scientific 22-037-924 6 in
Diapers for bench Fisherbrand 14206 63 Absorbent Underpads (20”X36”mats)
Surgical lubricant Surgilube 0281-0205-36
Dissecting scissor Fine Science tools, INC 14084-08
Micro-Adson Forceps Fine Science tools, INC 11018-12
1 ml syringe BD 309659 Tuberculin slip tip
Parafilm Bemis PM996 4 in x 125 FT
Eppendorf rack Fisherbrand 05-541-1
Eppendorf tubes MIDSCI AVX-T-17-C
Harvesting catheters, bladders and kidneys:
Homogenizer PRO Scientific INC Bio-Gen Pro 200
5 ml polypropylene round-bottom tube BD 352063 for organ homogenization
Paper towel Georgia-Pacific
Ethanol Pharmco-AAPER 11100020S 200 proof
Costar™ Clear Polystyrene 96-Well Plates Corning 3788
1X Phosphate sodium saline Sigma-Aldrich P3813
BRANSONIC Ultrasonic cleaner 1210 Branson Ultrasonics Corporation 1210
IBC materials:
6-well tissue culture test plate Techno Plastic Products 92006
Pins Fine Science Tools 26002-20
Sylgard 184 Dow Corning 3097358-1004 Silicone Elastomer Kit
X-gal (5-bromo-4-chloro-3-indolyl-b-D-galactoside) Invitrogen 15520-034 Ultrapure
N, N-Dimethylformamide Sigma Aldrich D4551
MgCl2 (Magnesium chloride) Sigma Aldrich M8266
Sodium deoxycholate Sigma Aldrich D6750
Nonidet-P40 Roche 11754599001 Octylphenolpoly(ethyleneglycolether)n
Potassium hexacyanoferrate(II) trihydrate (K-ferrOcyanide) Sigma Aldrich P3289
Potassium hexacyanoferrate(III) (K-ferrIcyanide) Sigma Aldrich 60299

References

  1. Foxman, B. Epidemiology of urinary tract infections: incidence, morbidity, and economic costs. Dis Mon. 49, 53-70 (2003).
  2. Foxman, B., et al. Risk factors for second urinary tract infection among college women. American journal of epidemiology. 151, 1194-1205 (2000).
  3. Gupta, K., Hooton, T. M., Stamm, W. E. Increasing antimicrobial resistance and the management of uncomplicated community-acquired urinary tract infections. Annals of internal medicine. 135, 41-50 (2001).
  4. Gupta, K., Hooton, T. M., Stamm, W. E. Isolation of fluoroquinolone-resistant rectal Escherichia coli. after treatment of acute uncomplicated cystitis. The Journal of antimicrobial chemotherapy. 56, 243-246 (2005).
  5. Gupta, K., Sahm, D. F., Mayfield, D., Stamm, W. E. Antimicrobial resistance among uropathogens that cause community-acquired urinary tract infections in women: a nationwide analysis. Clinical infectious diseases : an official publication of the Infectious Diseases Society of America. 33, 89-94 (2001).
  6. Gupta, K., Scholes, D., Stamm, W. E. Increasing prevalence of antimicrobial resistance among uropathogens causing acute uncomplicated cystitis in women. Jama. 281, 736-738 (1999).
  7. Jarvis, W. R. Selected aspects of the socioeconomic impact of nosocomial infections: morbidity, mortality, cost, and prevention. Infect Control Hosp Epidemiol. 17, 552-557 (1996).
  8. Lo, E., et al. Strategies to prevent catheter-associated urinary tract infections in acute care hospitals: 2014 update. Infection control and hospital epidemiology : the official journal of the Society of Hospital Epidemiologists of America. 35, 464-479 (2014).
  9. Foxman, B. The epidemiology of urinary tract infection. Nature reviews Urology. 7, 653-660 (2010).
  10. Hooton, T. M., Stamm, W. E. Diagnosis and treatment of uncomplicated urinary tract infection. Infect Dis Clin North Am. 11, 551-581 (1997).
  11. Hannan, T. J., et al. LeuX tRNA-dependent and -independent mechanisms of Escherichia coli. pathogenesis in acute cystitis. Molecular microbiology. 67, 116-128 (2008).
  12. Cusumano, C. K., Hung, C. S., Chen, S. L., Hultgren, S. J. Virulence plasmid harbored by uropathogenic Escherichia coli. functions in acute stages of pathogenesis. Infection and immunity. 78, 1457-1467 (2010).
  13. Dhakal, B. K., Mulvey, M. A. The UPEC pore-forming toxin alpha-hemolysin triggers proteolysis of host proteins to disrupt cell adhesion, inflammatory, and survival pathways. Cell host & microbe. 11, 58-69 (2012).
  14. Garcia, E. C., Brumbaugh, A. R., Mobley, H. L. Redundancy and specificity of Escherichia coli. iron acquisition systems during urinary tract infection. Infection and immunity. 79, 1225-1235 (2011).
  15. Bergsten, G., Wullt, B., Svanborg, C. Escherichia coli., fimbriae, bacterial persistence and host response induction in the human urinary tract. International journal of medical microbiology : IJMM. 295, 487-502 (2005).
  16. Zhou, G., et al. Uroplakin Ia is the urothelial receptor for uropathogenic Escherichia coli.: evidence from in vitro FimH binding. J Cell Sci. 114, 4095-4103 (2001).
  17. Eto, D. S., Jones, T. A., Sundsbak, J. L., Mulvey, M. A. Integrin-mediated host cell invasion by type 1-piliated uropathogenic Escherichia coli. PLoS Pathog. 3, e100 (2007).
  18. Taganna, J., de Boer, A. R., Wuhrer, M., Bouckaert, J. Glycosylation changes as important factors for the susceptibility to urinary tract infection. Biochemical Society transactions. 39, 349-354 (2011).
  19. Mulvey, M. A., et al. Induction and evasion of host defenses by type 1-piliated uropathogenic Escherichia coli. Science. 282, 1494-1497 (1998).
  20. Mysorekar, I. U., Mulvey, M. A., Hultgren, S. J., Gordon, J. I. Molecular regulation of urothelial renewal and host defenses during infection with uropathogenic Escherichia coli.. The Journal of biological chemistry. 277, 7412-7419 (2002).
  21. Schwartz, D. J., Chen, S. L., Hultgren, S. J., Seed, P. C. Population Dynamics and Niche Distribution of Uropathogenic Escherichia coli. during Acute and Chronic Urinary Tract Infection. Infect. Immun. 79, 4250-4259 (2011).
  22. Garofalo, C. K., et al. Escherichia coli. from urine of female patients with urinary tract infections is competent for intracellular bacterial community formation. Infection and immunity. 75, 52-60 (2007).
  23. Justice, S. S., et al. Differentiation and developmental pathways of uropathogenic Escherichia coli. in urinary tract pathogenesis. Proc Natl Acad Sci USA. 101, 1333-1338 (2004).
  24. Rosen, D. A., et al. Utilization of an intracellular bacterial community pathway in Klebsiella pneumoniae. urinary tract infection and the effects of FimK on type 1 pilus expression. Infection and immunity. 76, 3337-3345 (2008).
  25. Anderson, G. G., et al. Intracellular bacterial biofilm-like pods in urinary tract infections. Science. 301, 105-107 (2003).
  26. Robino, L., et al. Detection of intracellular bacterial communities in a child with Escherichia coli. recurrent urinary tract infections. Pathogens and disease. 68, 78-81 (2013).
  27. Rosen, D. A., Hooton, T. M., Stamm, W. E., Humphrey, P. A., Hultgren, S. J. Detection of intracellular bacterial communities in human urinary tract infection. PLoS Med. 4, e329 (2007).
  28. Horsley, H., et al. Enterococcus faecalis subverts and invades the host urothelium in patients with chronic urinary tract infection. PloS one. 8, e83637 (2013).
  29. Hopkins, W. J., Uehling, D. T., Wargowski, D. S. Evaluation of a familial predisposition to recurrent urinary tract infections in women. American Journal of Medical Genetics. 83, 422-424 (1999).
  30. Hopkins, W. J., Gendron-Fitzpatrick, A., Balish, E., Uehling, D. T. Time course and host responses to Escherichia coli. urinary tract infection in genetically distinct mouse strains. Infection and immunity. 66, 2798-2802 (1998).
  31. Mabeck, C. E. Treatment of uncomplicated urinary tract infection in non-pregnant women. Postgraduate medical journal. 48, 69-75 (1972).
  32. Ferry, S., Holm, S., Stenlund, H., Lundholm, R., Monsen, T. The natural course of uncomplicated lower urinary tract infection in women illustrated by a randomized placebo controlled study. Scandinavian Journal of Infectious Diseases. 36, 296-301 (2004).
  33. Hannan, T. J., Mysorekar, I. U., Hung, C. S., Isaacson-Schmid, M. L., Hultgren, S. J. Early severe inflammatory responses to uropathogenic E. coli. predispose to chronic and recurrent urinary tract infection. PLoS Pathog. 6, (2010).
  34. Mysorekar, I. U., Hultgren, S. J. Mechanisms of uropathogenic Escherichia coli. persistence and eradication from the urinary tract. Proc Natl Acad Sci USA. 103, 14170-14175 (2006).
  35. Glahn, B. E., Braendstrup, O., Olesen, H. P. Influence of drainage conditions on mucosal bladder damage by indwelling catheters. II. Histological study. Scandinavian journal of urology and nephrology. 22, 93-99 (1988).
  36. Goble, N. M., Clarke, T., Hammonds, J. C. Histological changes in the urinary bladder secondary to urethral catheterisation. British journal of urology. 63, 354-357 (1989).
  37. Ronald, A. The etiology of urinary tract infection: traditional and emerging pathogens. Dis Mon. 49, 71-82 (2003).
  38. Arias, C. A., Murray, B. E. The rise of the Enterococcus.: beyond vancomycin resistance. Nature reviews. Microbiology. 10, 266-278 (2012).
  39. Garibaldi, R. A., Burke, J. P., Dickman, M. L., Smith, C. B. Factors predisposing to bacteriuria during indwelling urethral catheterization. The New England journal of medicine. 291, 215-219 (1974).
  40. Warren, J. W. Catheter-associated urinary tract infections. Infect Dis Clin North Am. 11, 609-622 (1997).
  41. Guiton, P. S., Hung, C. S., Hancock, L., Caparon, M. G., Hultgren, S. J. Enterococcal biofilm formation and virulence in an optimized murine model of foreign body-associated urinary tract infections. Infection and immunity. 78, 4166-4175 (2010).
  42. Flores-Mireles, A. L., Pinkner, J. S., Caparon, M. G., Hultgren, S. J. EbpA vaccine antibodies block binding of Enterococcus faecalis. to fibrinogen to prevent catheter-associated bladder infection in mice. Science translational medicine. 6, 254ra127 (2014).
  43. Martinez, J. J., Mulvey, M. A., Schilling, J. D., Pinkner, J. S., Hultgren, S. J. Type 1 pilus-mediated bacterial invasion of bladder epithelial cells. The EMBO Journal. 19, 2803-2812 (2000).
  44. Hultgren, S. J., Schwan, W. R., Schaeffer, A. J., Duncan, J. L. Regulation of production of type 1 pili among urinary tract isolates of Escherichia coli.. Infection and immunity. 54, 613-620 (1986).
  45. Chenoweth, C. E., Gould, C. V., Saint, S. Diagnosis, Management, and Prevention of Catheter-Associated Urinary Tract Infections. Infect. Dis. Clin. North Am. 28, 105-+ (2014).
  46. Foxman, B. The epidemiology of urinary tract infection. Nature Reviews Urology. 7, 653-660 (2002).
  47. Justice, S. S., Hunstad, D. A., Seed, P. C., Hultgren, S. J. Filamentation by Escherichia coli. subverts innate defenses during urinary tract infection. Proc Natl Acad Sci USA. 103, (1988).
  48. Song, J., et al. TLR4-mediated expulsion of bacteria from infected bladder epithelial cells. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 106, 14966-14971 (2009).
  49. Wang, H., Min, G., Glockshuber, R., Sun, T., Kong, X. P. Uropathogenic E. coli. adhesin-induced host cell receptor conformational changes: implications in transmembrane signaling transduction. Journal of molecular biology. 392, 352-361 (2009).
  50. Cusumano, C. K., et al. Treatment and prevention of urinary tract infection with orally active FimH inhibitors. Science translational medicine. 3, 109-115 (2011).
  51. Langermann, S., Ballou, W. R. Vaccination utilizing the FimCH complex as a strategy to prevent Escherichia coli. urinary tract infections. J Infect Dis. 183, S84-S86 (2001).
  52. Langermann, S., et al. Vaccination with FimH adhesin protects cynomolgus monkeys from colonization and infection by uropathogenic Escherichia coli. J Infect Dis. 181, 774-778 (2000).
  53. Langermann, S., et al. Prevention of mucosal Escherichia coli. infection by FimH-adhesin-based systemic vaccination. Science. 276, 607-611 (1997).
  54. Alteri, C. J., Hagan, E. C., Sivick, K. E., Smith, S. N., Mobley, H. L. T. Mucosal Immunization with Iron Receptor Antigens Protects against Urinary Tract Infection. Plos Pathogens. 5, (2009).
  55. Russo, T. A., et al. The siderophore receptor IroN of extraintestinal pathogenic Escherichia coli. is a potential vaccine candidate. Infect. Immun. 71, 7164-7169 (2003).
  56. Schwartz, D. J., et al. Positively selected FimH residues enhance virulence during urinary tract infection by altering FimH conformation. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 110, 15530-15537 (2013).
  57. Czaja, C. A., et al. Prospective cohort study of microbial and inflammatory events immediately preceding Escherichia coli. recurrent urinary tract infection in women. J Infect Dis. 200, 528-536 (2009).
  58. Chen, S. L., et al. Genomic Diversity and Fitness of E. coli. Strains Recovered from the Intestinal and Urinary Tracts of Women with Recurrent Urinary Tract Infection. Science Translational Medicine. 5, 2013 (2013).
  59. Schilling, J. D., Mulvey, M. A., Vincent, C. D., Lorenz, R. G., Hultgren, S. J. Bacterial invasion augments epithelial cytokine responses to Escherichia coli. through a lipopolysaccharide-dependent mechanism. Journal of immunology (Baltimore, Md : 1950). 166, 1148-1155 (2001).
  60. Schwartz, D. J., Chen, S. L., Hultgren, S. J., Seed, P. C. Population Dynamics and Niche Distribution of Uropathogenic Escherichia coli. during Acute and Chronic Urinary Tract Infection. Infect. Immun. 79, 4250-4259 (2011).
  61. Chan, C. Y., St John, ., L, A., Abraham, S. N. Mast Cell Interleukin-10 Drives Localized Tolerance in Chronic Bladder Infection. Immunity. 38, 349-359 (2013).
  62. Justice, S. S., Lauer, S. R., Hultgren, S. J., Hunstad, D. A. Maturation of intracellular Escherichia coli. communities requires SurA. Infect. Immun. 74, 4793-4800 (2006).
  63. Justice, S. S., Hunstad, D. A., Seed, P. C., Hultgren, S. J. Filamentation by Escherichia coli. subverts innate defenses during urinary tract infection. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 103, 19884-19889 (2006).
  64. Justice, S. S., et al. Differentiation and developmental pathways of uropathogenic Escherichia coli. in urinary tract pathogenesis. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 101, 1333-1338 (2004).
  65. Guiton, P. S., Hannan, T. J., Ford, B., Caparon, M. G., Hultgren, S. J. Enterococcus faecalis. Overcomes Foreign Body-Mediated Inflammation To Establish Urinary Tract Infections. Infect. Immun. 81, 329-339 (2013).
  66. Thumbikat, P., Waltenbaugh, C., Schaeffer, A. J., Klumpp, D. J. Antigen-specific responses accelerate bacterial clearance in the bladder. Journal of Immunology. 176, 3080-3086 (2006).
  67. Rosen, D. A., Hung, C. -. S., Kline, K. A., Hultgren, S. J. Streptozocin-induced diabetic mouse model of urinary tract infection. Infect. Immun. 76, 4290-4298 (2008).
  68. Daneshgari, F., Leiter, E. H., Liu, G., Reeder, J. Animal Models of Diabetic Uropathy. Journal of Urology. 182, S8-S13 (2009).
  69. Guiton, P. S., et al. Combinatorial Small-Molecule Therapy Prevents Uropathogenic Escherichia coli. Catheter-Associated Urinary Tract Infections in Mice. Antimicrobial Agents and Chemotherapy. 56, 4738-4745 (2012).
  70. Totsika, M., et al. A FimH Inhibitor Prevents Acute Bladder Infection and Treats Chronic Cystitis Caused by Multidrug-Resistant Uropathogenic Escherichia coli. ST131. Journal of Infectious Diseases. 208, 921-928 (2013).

Play Video

Cite This Article
Conover, M. S., Flores-Mireles, A. L., Hibbing, M. E., Dodson, K., Hultgren, S. J. Establishment and Characterization of UTI and CAUTI in a Mouse Model. J. Vis. Exp. (100), e52892, doi:10.3791/52892 (2015).

View Video