Summary

T celler Capture Bakterier av Transinfection fra dendrittiske celler

Published: January 13, 2016
doi:

Summary

Her en protokoll er presentert for å måle bakterie fangst av CD4 + T-celler som oppstår i løpet av antigen-presentasjon via transinfection fra pre-infiserte dendrittiske celler (DC). Vi viser hvordan du utfører de nødvendige skritt: isolering av primærceller, infeksjon i DC, DC / T-celle konjugat formasjon, og måling av bakterie T-celle transfeksjon.

Abstract

Recently, we have shown, contrary to what is described, that CD4+ T cells, the paradigm of adaptive immune cells, capture bacteria from infected dendritic cells (DCs) by a process called transinfection. Here, we describe the analysis of the transinfection process, which occurs during the course of antigen presentation. This process was unveiled by using CD4+ T cells from transgenic OTII mice, which bear a T cell receptor (TCR) specific for a peptide of ovoalbumin (OVAp), which therefore can form stable immune complexes with infected dendritic cells loaded with this specific OVAp. The dynamics of green fluorescent protein (GFP)-expressing bacteria during DC-T cell transmission can be monitored by live-cell imaging and the quantification of bacterial transinfection can be performed by flow cytometry. In addition, transinfection can be quantified by a more sensitive method based in the use of gentamicin, a non-permeable aminoglycoside antibiotic killing extracellular bacteria but not intracellular ones. This classical method has been used previously in microbiology to study the efficiency of bacterial infections. We hereby explain the protocol of the complete process, from the isolation of the primary cells to the quantification of transinfection.

Introduction

Når et patogen infiserer sin vert, er det vanligvis en aktivering av den medfødte og ervervede immunresponser, er nødvendig for bakteriell klaring. Medfødt immunitet er den første forsvarslinje som hindrer de fleste infeksjoner. Medfødt immunitet skille på en presis måte elementer som er bevart blant brede grupper av mikroorganismer (patogen-forbundet molekylære mønstre, PAMPS) 1. Mekanismene for medfødt immunitet inkluderer fysiske barrierer som hud, kjemikalier barrierer (antimikrobielle peptider, lysozym) og medfødte leukocytter, som inkluderer de fagocytter (makrofager, nøytrofile og dendrittiske celler), mastceller, eosinofile, basofile og naturlige drepeceller 2. Disse cellene identifisere og eliminere patogener, enten ved å angripe dem gjennom kontakt eller via fagocytose, som inkluderer patogen engulfing og drap. Dette system tillater ikke livslang forsvar, i motsetning til adaptiv immunitet, som gi immunologisk hukommelse mot pathogens. Den adaptive immunsystem er den andre linjen i forsvaret og er i stand til å gjenkjenne og reagere på spesifikke antigener på multippel mikrobiell og ikke-mikrobielle stoffer 3. De viktigste komponentene i det adaptive immunsystemet er de lymfocytter, som inkluderer B-og T-celler. B-celler er involvert i den humorale respons, som utskiller antistoffer mot patogener eller eksogene proteiner. Imidlertid T-celler representerer cellemediert immunitet, modulering av immunrespons med cytokiner sekresjon eller drepe patogen-infiserte celler 4.

Antigenpresenterende celler (APC) inkludert dendrittiske celler eller makrofager, bestanddeler av den medfødte immunsystemet, kan gjenkjenne fagocyttere patogener og prosesskomponenter i bakterielle antigener, som er presentert på celleoverflaten av hovedhistokompatibilitetskompleks (MHC) 5-7. Etter APC har phagocytized patogener, de vanligvis migrere til drenering lymfeknuter, hvor de samhandler med Tceller. T-lymfocytter kan gjenkjenne spesifikke peptid-MHC komplekser av sine T cellereseptorer. Immun synapse (IS) oppstår i grenseflaten mellom et antigen belastet APC og en lymfocytt i antigenpresentasjon 8,9. Noen bakterier kan overleve fagocytose og spre systematisk innen APC. I denne visningen infiserte APC tjene som bakterielle reservoarer eller "trojanske hester" som letter bakteriespredning 10. Den intime kontakt mellom APC og lymfocytter som finner sted i løpet av IS dannelse også fungere som en plattform for utveksling av deler av membraner, genetisk materiale og exosomes og kan kapret for noen virus for å infisere T-celler; denne prosessen kalles transinfection 11-13.

Noen av patogene bakterier (Listeria monocytogenes, Salmonella enterica, og Shigella flexneri) er i stand til å invadere T-lymfocytter in vivo og modifisere sin oppførsel 14-16. Vi harnylig beskrevet som T-lymfocytter er også i stand til å fange opp bakterier ved transinfection fra tidligere infiserte dendrittiske celler (DCS) i løpet av antigenpresentasjon 16. T-celle bakteriell fangst av transinfection meget mer effektiv (1,000-4,000x) enn direkte infeksjoner. T celler fangst patogen og ikke-patogene bakterier indikerer enn transinfection er en prosess drevet av T-celler. Påfallende, transinfected T (Tit) celler raskt drept de fangede bakteriene og gjorde det mer effektivt enn profesjonelle fagocytter 16. Disse resultatene, som bryter et dogme for immunologi, viser at cellene i adaptiv immunitet kan utføre funksjoner som var tilsynelatende eksklusivt av medfødt immunitet. I tillegg viste vi at tit celler utskiller store mengder av pro-inflammatoriske cytokiner og beskytte mot bakterielle infeksjoner in vivo.

Her presenterer vi de ulike protokollene som brukes for å studere bakteriell transinfection prosessen musemodell. Denne modellen er basert på bruk av CD4 + T-celler fra transgene mus OTII, som bærer en TCR som er spesifikke for peptid 323-339 av OVA (OVAp) i forbindelse med I-Ab 17 som kommuniserer spesifikt med bakterieinfisert ben marrow- avledet DCs (BMDCs) 18,19 lastet med OVAp, danner stabile immun synapser.

T-celle transinfection kan visualiseres og spores ved hjelp av fluorescens mikroskopi. I tillegg flowcytometri kan brukes for å påvise infiserte celler ved å utnytte fluorescensen avgitt av bakterier som uttrykker grønt fluorescerende protein (GFP) 16,20. Videre kan T-celle transinfection kvantifiseres ved en mer sensitiv tilnærming, gentamicin overlevelse analyse som tillater måling av et stort antall hendelser. Gentamicin er et antibiotikum som ikke kan trenge inn i eukaryote celler. Derfor, ved bruk av dette antibiotikum tillater differensiering av intracellulære bakterier som overlevde antibiotikumet tilsetning frOM ekstracellulære de som ble drept 21.

Protocol

Merk: Eksperimentelle prosedyrene ble godkjent av forskningsetiske komité for av Universidad Autónoma de Madrid og utført under oppsyn av Universidad Autónoma de Madrid Head of Animal Welfare and Health i samsvar med spanske og europeiske retningslinjer. Mus ble avlet i spesifikk patogen gratis (SPF) bolig, og de ​​ble avlivet av fagfolk og ved hjelp av karbondioksid (CO 2) innånding metoden. 1. Mouse benmargavledede DC Differensiering og infeksjons <p class="jove_conte…

Representative Results

Heri beskrev vi hvordan du utfører murine T-celle bakteriell transinfection fra infiserte benmarg avledet-DC og hvordan man kan måle bakterie transinfection via to ulike tilnærminger: flowcytometri og gentamicin overlevelse analyse Figur 1 oppsummerer prosedyren for å skaffe cellene.. DC er generert av inkubasjon av benmargceller med GM-CSF for 9 dager. Deretter blir DCs maturated med LPS å øke MHCII på sin membran for å laste dem senere med en bestemt peptid OVA…

Discussion

T-celler eller T-lymfocytter er en type av leukocytter som spiller en sentral rolle i celle-mediert immunitet, og hører til den adaptive immunrespons 26. T-celler er upåvirkelig for å bli infisert in vitro, men noen rapporter tyder på at de kan være infisert in vivo 14,15. Intime kontakter av APC og T-celler under immun synapse tjene som plattform for utveksling av biologisk materiale 13, inkludert noen virus som HIV 11. Det ble nylig vist at i motsetnin…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

This work was supported by grants BFU2011-29450, BFU2008-04342/BMC from the Spanish Ministry of Science and Innovation and PIES201020I046 from Consejo Superior de Investigaciones Cientìficas (CSIC).

Materials

RPMI Fisher Scientific SH3025501
r-GMCSF Peprotech 315-03
LPS SIGMA L2630-10mg
Na Pyruvate Thermo Scientific SH3023901
2-ME Gibco 31350-010
OVAp OTII (323–339) GenScript
Cell Strainer 70uM BD 352350
 30uM Syringe Filcons Sterile BD 340598
AutoMacs Classic Miltenyi Biotec 130-088-887
Gentamicin Normon 624601.6
Transwell Costar 3415
LB Pronadisa 1231
Agar Pronadisa 1800
Paraformaldehyde 16% Electron Microscopy Sciences 15710
Triton X-100
CD8 biot BD Biosciences 553029
IgM Biot ImmunoStep Clone RMM-1
B220 Biot BD Biosciences 553086
CD19 biot BD Biosciences 553784
MHC-II Biot (I-A/I-E) BD Biosciences 553622
CD11b biot Immunostep 11BB-01mg
CD11c biot Immunostep 11CB3-01mg
DX5 biot BD Biosciences 553856
Gr-1 biot BD Biosciences 553125
CD16/CD32 ImmunoStep M16PU-05MG
anti Salmonella ABD Serotec 8209-4006
CD11cPE BD Biosciences 553802
CD4-APC Tonbo Biosciences 20-0041-U100
Gr-1 APC BD Biosciences 553129
MHC-II (I-A/I-E) FITC BD Biosciences 553623
Alexa-Fluor 647 Goat Anti-Rabbit IgG (H+L) Antibody, highly cross-adsorbed Invitrogen A-21245
CMAC (7-amino-4-chloromethylcoumarin) Life technologies C2110
BSA SIGMA A7030-100G
Streptavidin MicroBeads Miltenyi Biotec 130-048-101
BD FACSCanto II BD Biosciences

References

  1. Medzhitov, R. Recognition of microorganisms and activation of the immune response. Nature. 449 (7164), 819-826 (2007).
  2. Alberts, B., Johnson, A., Lewis, J., Raff, M., Roberts, K., Walter, P. . Molecular biology of the cell. , (1989).
  3. Pancer, Z., Cooper, M. D. The evolution of adaptive immunity. Annual Review of Immunology. 24, 497-518 (2006).
  4. Rhoades, R. A., Bell, D. R. . Medical Phisiology. , (2012).
  5. Cossart, P. Bacterial Invasion: The Paradigms of Enteroinvasive Pathogens. Science. 304 (5668), 242-248 (2004).
  6. Kaufmann, S. H., Schaible, U. E. Antigen presentation and recognition in bacterial infections. Current Opinion in Immunology. 17 (1), 79-87 (2005).
  7. Pizarro-Cerdá, J., Cossart, P. Bacterial Adhesion and Entry into Host Cells. Cell. 124 (4), 715-727 (2006).
  8. Dustin, M. L. T-cell activation through immunological synapses and kinapses. Immunological Reviews. 221, 77-89 (2008).
  9. Calabia-Linares, C., Robles-Valero, J., et al. Endosomal clathrin drives actin accumulation at the immunological synapse. Journal of Cell Science. 124 (5), 820-830 (2011).
  10. Westcott, M. M., Henry, C. J., Cook, A. S., Grant, K. W., Hiltbold, E. M. Differential susceptibility of bone marrow-derived dendritic cells and macrophages to productive infection with Listeria monocytogenes. Cellular Microbiology. 9 (6), 1397-1411 (2007).
  11. Geijtenbeek, T. B., Kwon, D. S., et al. DC-SIGN, a dendritic cell-specific HIV-1-binding protein that enhances trans-infection of T cells. Cell. 100 (5), 587-597 (2000).
  12. Izquierdo-Useros, N., Naranjo-Gòmez, M., et al. HIV and mature dendritic cells: Trojan exosomes riding the Trojan horse. PLoS Pathogens. 6 (3), e1000740 (2010).
  13. Mittelbrunn, M., Sanchez-Madrid, F. Intercellular communication: diverse structures for exchange of genetic information. Nature Reviews. Molecular cell biology. 13 (5), 328-335 (2012).
  14. McElroy, D. S., Ashley, T. J., D’Orazio, S. E. Lymphocytes serve as a reservoir for Listeria monocytogenes growth during infection of mice. Microbial Pathogenesis. 46 (4), 214-221 (2009).
  15. Salgado-Pabon, W., Celli, S., et al. Shigella impairs T lymphocyte dynamics in vivo. Proceedings of the National Academy of Sciences. 110 (12), 4458-4463 (2013).
  16. Cruz Adalia, A., Ramirez-Santiago, G., et al. T cells kill bacteria captured by transinfection from dendritic cells and confer protection in mice. Cell Host and Microbe. 15 (5), 611-622 (2014).
  17. Barnden, M. J., Allison, J., Heath, W. R., Carbone, F. R. Defective TCR expression in transgenic mice constructed using cDNA-based alpha- and beta-chain genes under the control of heterologous regulatory elements. Immunology and Cell Biology. 76 (1), 34-40 (1998).
  18. Matheu, M. P., Sen, D., Cahalan, M. D., Parker, I. Generation of bone marrow derived murine dendritic cells for use in 2-photon imaging. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (17), (2008).
  19. Inaba, K., Inaba, M., et al. Generation of large numbers of dendritic cells from mouse bone marrow cultures supplemented with granulocyte/macrophage colony-stimulating factor. Journal of Experimental Medicine. 176 (6), 1693-1702 (1992).
  20. Thöne, F., Schwanhäusser, B., Becker, D., Ballmaier, M., Bumann, D. FACS-isolation of Salmonella-infected cells with defined bacterial load from mouse spleen. Journal of Microbiological Methods. 71 (3), 220-224 (2007).
  21. Vaudaux, P., Waldvogel, F. A. Gentamicin antibacterial activity in the presence of human polymorphonuclear leukocytes. Antimicrobial Agents and Chemotherapy. 16 (6), 743-749 (1979).
  22. Zhang, X., Goncalves, R., Mosser, D. M., Coligan, J. E. Chapter 14, The isolation and characterization of murine macrophages. Current protocols in immunology. , Unit 14.1 (2008).
  23. Bedoya, S. K., Wilson, T. D., Collins, E. L., Lau, K., Larkin, J. Isolation and th17 differentiation of naïve CD4 T lymphocytes. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (79), e50765 (2013).
  24. Basu, S., Campbell, H. M., Dittel, B. N., Ray, A. Purification of specific cell population by fluorescence activated cell sorting (FACS). Journal of Visualized Experiments: JoVE. (41), (2010).
  25. Foucar, K., Chen, I. M., Crago, S. Organization and operation of a flow cytometric immunophenotyping laboratory. Seminars in diagnostic pathology. 6 (1), 13-36 (1989).
  26. Itano, A. A., Jenkins, M. K. Antigen presentation to naive CD4 T cells in the lymph node. Nature Immunology. 4 (8), 733-739 (2003).
check_url/52976?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Cruz-Adalia, A., Ramírez-Santiago, G., Torres-Torresano, M., Garcia-Ferreras, R., Veiga Chacón, E. T Cells Capture Bacteria by Transinfection from Dendritic Cells. J. Vis. Exp. (107), e52976, doi:10.3791/52976 (2016).

View Video